基于MAPK/ERK信號通路探討電針分娩鎮痛機制?

蔣秋燕，王夢瑩，王美麗，蔣桂秀，唐乾利，李妹燕△

(1. 廣西中醫藥大學第一附屬醫院，南寧 530023； 2. 右江民族醫學院, 廣西 百色 5330001)

針刺鎮痛效果明顯，歷史悠久，中國傳統醫學認為通則不痛、榮則不痛是針刺鎮痛的作用機制。目前現有的研究證實，絲裂原活化蛋白激酶(mitogen-activated protein kinases，MAPK) 信號通路可被應激刺激激活，將胞外刺激信號轉換至胞核內產生生物學效應，而脊髓背脊中的細胞外信號調節激酶(extracellularsignal-regulated protein kinase，ERK)在疼痛早期活化,參與疼痛的產生和維持[1]。本研究通過對分娩大鼠應用電針及Real-timePCR、Westernblot檢測，從MAPK /ERK 信號通路探討電針分娩鎮痛作用機制，現報道如下。

1 材料與方法

1.1 實驗儀器及試劑

電針儀由北京華衛公司生產的韓氏穴位神經刺激儀LH202H；針灸毫針是天津杏林書院醫療器械有限公司生產漢醫牌0.17 mm × 7 mm；鎮痛藥物由宜昌人福藥業有限責任公司生產的鹽酸瑞芬太尼(批準文號國藥準字H20030197)。Roche LightCycler? 480 熒光定量PCR儀，LightCycler? 480 DNA SYBR Green I Master，由生工生物工程上海(股份)有限公司設計與合成Real-time PCR引物，購于invitrogen公司的TRIzol試劑及購于ABI公司DNA Marker的定量PCR試劑ABI SybrGreen PCR Master Mix(2X)，氯仿、異丙醇、無水乙醇、第一鏈cDNA合成試劑盒(AMV First Strand cDNA Synthesis Kit)DEPC H2O，6×DNA Loading Dye，10×TAE，(400mM Tris-acetate and 10mM EDTA，pH8.0)等試劑均購于生工生物工程(上海)股份有限公司。

1.2 動物造模及分組

通過廣西中醫藥大學倫理委員會批準這項研究(reference no. 201302026),所有實驗過程都是遵循國立健康研究院有關實驗動物護理和使用指導原則(動物合格證號SCXK桂2009-0002)。性成熟未交配，3月齡健康SD大鼠，體質量(300±50)g。雌鼠140只，雄鼠20只。按雌、雄1∶1比例合籠，每日上午檢查托盤，發現陰栓取出編號，并連續2 d對大鼠進行陰道脫落細胞涂片檢查發現卵圓體即確定妊娠[2]。對造模成功的120例孕鼠采用隨機數字表法分為瑞芬太尼組、電針三陰交加合谷組、電針夾脊穴組及空白對照組各30只。所有孕鼠在妊娠第19天開始灌服蓖麻引產餐誘發大鼠啟動產程[3]。

1.3 治療方法

1.3.1 空白對照組 自然分娩，未行任何處理。

1.3.2 電針夾脊穴組 大鼠產程啟動至產下最后1個鼠仔期間，將大鼠固定在自制的木板上，在大鼠雙側L2、L4夾脊穴，相當脊柱正中旁開0.3 cm之處取穴[4], 直刺0.3寸左右,電針儀強度為0.1 mA，頻率2/100HZ交替疏密波，以能引起大鼠肢體輕微抖動為針刺得氣，電針20 min，每隔2 h再電針1次，左右各1組，同側的L2、L4為1組。

1.3.3 電針三陰交加合谷組 在兩前肢第一、二掌骨之間取合谷穴直刺1 mm，在兩后肢內踝尖直上10 mm處取三陰交穴直刺3 mm。兩穴接電針治療儀,頻率為2/100 Hz交替疏密波，強度0.1 mA，電壓9 V，波寬0.2～0.6 mS，左右各1組，同側的合谷、三陰交為1組。

1.3.4 瑞芬太尼組 孕鼠產程啟動后， 尾靜脈持續泵注射鹽酸瑞芬太尼5 μg/kg/min，直至產下最后1個仔鼠為止[5]。

1.4 大鼠痛閾測定方法

熱水甩尾痛閾測定，各組大鼠在干預措施前后分別以(50±0.5)℃熱水浸燙鼠尾4 cm，記錄入水至甩尾出水的間隔時間(測量3次，取其均數，時間按秒計算[6])。

1.5 標本采集方法

大鼠分娩結束后，按0.4 ml/100 g劑量10%的水合氯醛腹腔注射麻醉下斷頭處死，生理鹽水洗干凈，取大鼠大腦灰質頂葉區、脊髓腰膨大段組織及子宮肌層組織，在-80 ℃冰箱標號保存，3個月時間內完成Western blot 及Real-time PCR檢測。

1.6 實驗步驟

1.6.1 Western blot檢測大鼠中樞ERK通路信號分子C-Raf、 ERK-1、CREB蛋白及其磷酸化水平，靶器官ERK通路效應分子Dyn蛋白表達 將大鼠大腦灰質、脊髓腰椎膨大段及子宮肌層組織總蛋白提取，稱取120 mg加入預冷500 μL細胞裂解液，裂解30 min，4℃ 12000 r/min離心20 min，蛋白定量。將蛋白上樣緩沖液稀釋，煮4 min置-80℃ 備用。經SDS-PAGE電泳分離，至溴酚藍剛跑出分離膠時停止電泳(250 mA，90 min)轉膜， 5%脫脂奶粉封閉PVDF膜，在室溫下振搖1～2 h，滴加一抗在封閉的膜內，4℃過夜。次日PBS漂洗15 min，將膜用TBST清洗4次，每次5 min，再與二抗室溫下孵育1 h。TBST清洗后，將顯影劑滴加到PVDF膜正面，分析目標蛋白灰度值采用凝膠圖像系統。Biovision公司提供BCA蛋白濃度測定試劑盒，由CST公司提供的抗Raf、ERK、CREB，由Santa Cruz Biotechnology公司提供DYN抗體，由Thermo Fisher Scientific公司提供二抗及化學發光試劑盒，檢測操作按試劑盒說明書進行。

1.6.2 Real-time PCR檢測大鼠中樞ERK通路信號分子C-Raf、 ERK-1、CREB及靶器官效應分子Dyn 等mRNA表達 表1顯示，根據廠家說明書用TRIzol試劑盒(Invitrogen Life Technologies，Carlsbad，California，USA)從速凍大鼠腦灰質頂葉區、脊髓腰膨大段及子宮肌層提取總RNA，將RNA逆轉錄為cDNA，-20 ℃保存備用。GAPDH為內參基因進行校準。ABI Step One 型熒光定量PCR儀系統檢測相關基因表達量，相對基因表達量采用定量real-time PCR分析。反應條件如下：起始階段，95 ℃，10 min；循環階段，變性，94 ℃，15 s，退火和延伸，72 ℃，10 s。擴增反應在ABI Step One detection system進行，使用引物序列。

表1 引物序列

1.7 統計學方法

2 結果

2.1 電針對4組大鼠行為學影響

表2顯示，方差分析結果顯示，4組大鼠治療前組間痛閾值比較差異無統計學意義(P>0.05)；治療后組間比較差異有統計學意義(P<0.01)。進一步LSD法多重比較顯示，與空白對照組比較，藥物鎮痛組、電針夾脊穴組與電針三陰交加合谷組痛閾值均明顯升高(P<0.01)，電針三陰交加合谷組與電針夾脊穴組比較差異無統計學意義(P>0.05)，痛閾值由高到低依次為藥物鎮痛組>電針三陰交加合谷組 /電針夾脊穴組>空白對照組。

表2 4組大鼠治療前后痛閾值比較

注：與治療前比較：**<0.01;與對照組比較:##P<0.01;與瑞芬太尼比較：&&P<0.01

2.2 MAPK/ERK通路信號分子mRNA在大鼠中樞及靶器官表達

表3顯示，ERK通路信號分子Raf-1、ERK-1、CREB mRNA在大腦灰質組織細胞中表達組間無明顯差異性，而在脊髓膨大段組織細胞中表達組間比較差異有統計學意義(P<0.01)；進一步LSD多重比較顯示，藥物組、電針夾脊穴組與電針三陰交加合谷組均顯著低于空白對照組(P<0.01)，電針夾脊穴組與電針三陰交加合谷組比較差異無統計學意義(P>0.05)，Raf-1、ERK-1、CREB mRNA表達依次為：空白對照組>電針三陰交加合谷組/ 電針夾脊穴組>藥物鎮痛組。單因素方差分析各組大鼠子宮肌層組織細胞中效應分子DYN mRNA表達，組間比較差異有統計學意義(P<0.01)；LSD法兩兩比較顯示，藥物鎮痛組、電針夾脊穴組與電針三陰交加合谷組DYN mRNA表達量均顯著高于空白對照組(P<0.01)，依次為藥物鎮痛組>電針三陰交加合谷組 /電針夾脊穴組>空白對照組。同樣電針三陰交加合谷組與電針夾脊穴組比較差異無統計學意義(P>0.05)。

表3 ERK通路信號分子及效應分子mRNA在大鼠中樞及靶器官表達水平比較

注：與對照組比較：**P<0.01;與電針夾脊穴組比較:##P<0.01，#P<0.05;與電針三陰交加合谷組比較:&&P<0.01

2.3 MAPK/ERK通路信號分子及效應分子蛋白在大鼠中樞及靶器官表達

表4圖1、2顯示，Western Blot檢測ERK信號分子及效應分子蛋白在大鼠中樞及靶器官蛋白灰度值結果顯示，ERK通路信號分子C-Raf、ERK 1、P- ERK 1、CREB、P-CREB蛋白在大腦灰質表達組間無明顯差異性， 脊髓膨大段組織細胞中組間比較差異有統計學意義(P<0.01)；進一步LSD多重比較顯示，藥物組、電針夾脊穴組與電針三陰交加合谷組均低于空白組(P<0.01)，C-Raf、ERK 1、P- ERK 1、CREB、P-CREB蛋白在組間表達依次為空白對照組>電針三陰交加合谷組/電針夾脊穴組 >藥物鎮痛組; 單因素方差分析各組大鼠子宮肌層組織細胞中DYN蛋白表達，組間比較差異有統計學意義(P<0.01)；LSD法兩兩比較顯示，藥物鎮痛組、電針夾脊穴組與電針三陰交加合谷組DYN蛋白表達均顯著高于空白對照組(P<0.01)，依次為藥物鎮痛組> 電針三陰交加合谷組/電針夾脊穴組>空白對照組，而電針三陰交加合谷組與電針夾脊穴組比較差異無統計學意義(P>0.05)。

表4 ERK通路信號分子及效應分子蛋白及其磷酸化水平在大鼠中樞及靶器官表達比較

注：與對照組比較：**P<0.01;與電針夾脊穴組比較：##P<0.01，#P<0.05;與電針三陰交加合谷組比較：&&P<0.01

圖1 大鼠中樞ERK通路信號分子蛋白電泳圖

圖2 大鼠靶器官ERK通路效應分子DYN蛋白電泳圖

3 討論

分娩鎮痛是現代文明的標志，無副作用的鎮痛方法更是人們追求的目標。針灸穴位鎮痛歷史悠久，由于操作方法簡單、鎮痛效果明顯，無創傷且無副作用的優勢而被臨床廣泛應用，但其鎮痛機制一直是人們研究的熱點問題。隨著對針刺鎮痛作用機制研究的不斷深入，對MAPK /ERK 信號通路，被應激刺激激活調控疼痛的發生發展越來越受到學界的關注。

MAPK 信號通路廣泛存在于真核細胞內，它通過高度保守的激酶、磷酸酯酶兩位點磷酸化和去磷酸化的聯級反應，可以將胞外刺激信號信息傳導至細胞核內產生生物學效應[8-9]。細胞外信號調節激酶(extracellularsignal-regulated protein kinase，ERK) 是 MAPK 家族依賴于 Ras途徑激活的一個蛋白激酶[10]，ERK 信號通路通過底物水平磷酸化而激活，屬于蛋白轉錄后修飾過程[11]。絲/蘇氨酸蛋白激酶Raf是MAPK級聯反應的第一個分子，啟動三級酶促級聯反應即MAPKKK-MAPKK (MKK)-MAPK[12]，MAPK通路中的分子開關Ras介導細胞外信號傳導， Raf在活化的Ras作用下產生磷酸化而激活MEK，進而激活ERK，被激活的ERK一方面在胞漿內激活其他蛋白激酶，如RSK2或影響脊髓背角神經元膜上離子通道Kv4.2及A-typek +電流(IA)，Kv4.2和IA在中樞敏化的神經元興奮性中發揮著重要作用[13-14]。另一方面活化的ERK可從細胞漿易位到細胞核激活RSK2,使轉錄因子cAMP反應元件結合蛋白(CREB)在絲氨酸133上磷酸化, cAMP反應元件(CRE) DNA與磷酸化的CREB結合在一起啟動區域位點，從而啟動基因的轉錄。轉位進入磷酸化轉錄因子CREB，調節目的基因表達，如強啡肽、內啡肽、c-fos、NK-1、神經肽Y、促生長激素及TrkB等，在痛覺敏化中發揮作用[15-16]。

強啡肽(dynorphin，DYN) 是中樞神經系統內的一個重要阿片肽，介導高強刺激鎮痛，且鎮痛作用部位主要在脊髓水平，脊髓水平的疼痛信息調控是在脊髓節段內完成的，不依賴于脊髓與其以上腦結構之間的完整聯系[17]。課題組在前期臨床中，對產婦在分娩時使用電針穴位發現能夠減輕分娩疼痛并能使產婦血清中強啡肽含量增加[18]。同時又對120例SD大鼠在分娩過程中應用穴位電針并與藥物鎮痛組及空白組對照觀察，結果顯示，電針穴位可提高大鼠痛閾值，使血清dyn量升高及脊髓Pdyn、Oprk1 mRNA與蛋白表達水平升高[19]。Ji等發現，ERK的激活導致前強啡肽原mRNA和P物質受體神經激肽(NK-1)表達增加，從而增加佐劑性關節炎大鼠對熱傷害刺激和機械傷害刺激的痛敏[20]。電針可能通過對ERK1/2活化的抑制， 進而抑制其下游致痛產物發揮即刻鎮痛效應[21]。有文獻證實，神經損傷后，ERK信號通路激活可引起下游CREB的表達增加，使用MEK抑制劑PD98059可以減少CREB的表達，從而減輕痛覺過敏現象[22]。

本實驗結果顯示，電針夾脊穴組及電針三陰交加合谷穴組均能有效提高分娩大鼠痛閾值，降低大鼠脊髓Raf/ERK/CREB蛋白與基因表達，并能進一步抑制 ERK-CREB通路的磷酸化與增加DYN蛋白與基因表達。電針夾脊穴組與電針三陰交加合谷組比較，2電針組間比較差異無統計學意義，提示在電針作用下，Raf/ERK/CREB蛋白表達及其磷酸化水平與DYN蛋白表達存在負反饋作用，呈負相關性關系。由此推測，電針對分娩鎮痛機制可能是通過抑制大鼠脊髓Raf/ERK/CREB通路信號分子蛋白表達及降低其磷酸化水平，提高DYN蛋白表達水平實現的。本研究結果可以為電針分娩鎮痛提供科學依據和理論基礎。