宋 梅
(武警內蒙古總隊醫院風濕免疫科,內蒙古 呼和浩特 010010)
骨質疏松癥是一種骨量減少、骨組織纖維結構破壞為特征,導致骨脆性增加,從而易發生骨折的代謝性骨病。臨床主要表現骨骼疼痛和骨密度降低,骨折危險性明顯增加,嚴重影響骨質疏松患者的生活質量。形成骨質疏松的原因與破骨細胞功能亢進,成骨細胞作用相對不足有關。降鈣素是一種強有力的作用破骨細胞的抑制劑,可快速、廣泛抑制骨吸收[1],因而臨床上常被用于治療高鈣血癥、原發性甲旁亢和重度骨質疏松癥等。近年來,降鈣素作為抗骨質吸收藥,應用在骨質疏松癥的臨床治療中,取得了一定的臨床療效。短期應用具有良好的緩解骨痛作用,并顯著降低骨轉換率。一些體外實驗和體內實驗提示,其在抑制骨破壞的同時[2-3],也可以促進成骨細胞的形成、骨骼發育和再生修復,從而改善骨代謝[4]。骨形成發生蛋白(BMP-2)是有效的成骨細胞分化誘導因子,能夠促進成骨細胞分化、誘導體外成骨的能力,同時可以使成骨細胞的前體細胞定向分化為成骨細胞[5-6]。因此,BMP-2在成骨細胞的增殖分化中發揮重要作用。但是,鮭魚降鈣素促進成骨細胞的形成與再生修復是否與BMP-2有關,國內外至今尚少見研究。本研究采用分子生物學手段從蛋白水平,研究不同劑量的鮭魚降鈣素對小鼠MC3T3-E1細胞BMP-2蛋白表達水平的影響,從而為鮭魚降鈣素對骨代謝提供重要理論依據。
1.1 一般材料:小鼠MC3T3-E1成骨細胞系,是由協和醫科大學基礎研究所提供。鮭魚降鈣素試劑購自瑞士諾華制藥公司。兔抗鼠BMP-2多克隆抗體,北京鼎國生物技術中心。兔抗鼠GAPDH多克隆抗體,北京鼎國生物技術中心。HRP-羊抗兔IgG,博士德生物技術中心。蛋白Marker,美國Santa Cruz公司。
1.2 方法
1.2.1 細胞鑒定:取生長良好、80%融合的小鼠MC3T3-E1細胞爬片,通過HE染色、堿性磷酸酶(ALP)染色(Kaplow氏法),監測成骨細胞性質。
1.2.2 實驗分組:取生長滿培養瓶壁的小鼠MC3T3-E1細胞,用PBS洗滌2遍,再用0.25%胰蛋白酶消化5 min,按1×105/mL密度的細胞懸液接種于培養瓶內;保證各組瓶中的培養液均為2 mL,放置在CO2培養箱中培養24 h后。隨機分為對照組、低劑量組鮭魚降鈣素2.5 ng/mL、中劑量組:鮭魚降鈣素5 ng/mL、高劑量組:鮭魚降鈣素10 ng/mL,每組各設8瓶,按照不同濃度鮭魚降鈣素量,加入培養液中,放置于CO2培養箱中培養24 h。
1.2.3 細胞提取:繼續培養24 h后,各組收集培養瓶細胞,PBS洗滌2次,0.25%胰蛋白酶消化5 min,4 ℃ 400×g離心10 min,棄上清。每個EP管中加入100 μL細胞裂解液用于提取細胞總蛋白,在冰浴中裂解15 min,4 ℃ 20000×g離心15 min,取出上清,用于測定蛋白含量。總蛋白含量測定采用考馬斯亮藍法。
1.2.4 蛋白質印跡:制備樣品并進行SDS-PAGE電泳,蛋白充分變性后,各組取30 μg樣品,恒壓80 V(電流為20~40 mA),1 h后調至150 V,電泳2.5 h至溴酚藍距離凝膠底部1 cm時,停止電泳。4 ℃條件下恒壓(100 V)電轉膜2.5 h。封閉PVDF膜,室溫振蕩1 h。分別加入TBS配制的BMP-2和GAPDH兔抗小鼠單克隆抗體(1∶100稀釋),4 ℃孵育過夜,TBS洗膜3次,在轉移脫色搖床上平緩搖動,每次10 min。將PVDF膜控干水分,放進雜交袋,分別加TBS配制的HRP標記的山羊抗兔IgG二抗(1∶100稀釋),37 ℃孵育1 h,用TBS漂洗膜3次,每次10 min,平緩搖動。將NC膜平鋪在保鮮膜上,采用化學發光法顯色1 min,在暗盒中曝光1 min,顯影,定影。
1.2.5 圖像分析:以上方法得到的凝膠,用ImageJ凝膠分析軟件對已經顯影條帶進行半定量分析,AU(Darea·Ddensity)代表條帶的面積、灰度值,BMP2/GAPDH的AU比值表示蛋白相對含量。
1.2.6 統計學處理:用SPSS 16.5的統計軟件進行統計學分析。計量資料采用均數±標準差(±s)表示,各組均數比較行單因素方差分析(ANOVA),用最小顯著差異法(LSD)作兩兩比較,P<0.05有顯著性差異。
蛋白質印跡顯示,各濃度鮭魚降鈣素與對照組相比,BMP-2活性明顯高于對照組,其中低劑量組(0.5620±0.020)與對照組(0.5386±0.028),中劑量組(0.6228±0.012)與對照組(0.5386±0.028)相比蛋白含量有增高,但無統計學意義。高劑量(0.7813±0.010)與對照組(0.5386±0.028)相比蛋白含量明顯增高,且有統計學意義(P<0.01),見圖1、表1。

表1 小鼠MC3T3-E1成骨細胞BMP-2蛋白相對含量分析表
在研究治療骨質疏松的過程中,降鈣素具有明顯抑制骨吸收,顯著減少骨折發生率,增加腰椎骨密度的作用。自1985年美國食品藥物管理局批準用于治療骨質疏松以來,現臨床廣泛運用并取得滿意療效。一定劑量的降鈣素能改變破骨細胞形態。通過與破骨細胞表面的降鈣素受體結體后抑制破骨細胞功能。也有研究報道,降鈣素能增加成骨細胞活性,從而起到改善骨質,糾正骨質疏松。但何種劑量的降鈣素可以影響成骨細胞的增殖,及通過何種轉移因子影響成骨細胞的表達活性,目前不得而知。
BMP-2具有誘導成骨細胞分化和誘導體外成骨的能力。正常骨基質中含有少量的BMP-2,主要存在于成骨細胞、骨細胞膜和骨髓細胞中,并通過自分泌或旁分泌形式誘導成骨細胞分化,形成新的成骨[7]。將重組rhBMP-2植入到大鼠肌肉組織中,可以促進異位骨形成。離體BMP-2可誘導成骨細胞前體細胞分化為較成熟的成骨樣細胞,并抑制肌原細胞的分化。Fromigue等[8]研究中發現rhBMP-2可在mRNA水平,增強堿性磷酸酶活性、骨鈣素和細胞外間質的鈣儲備。另有研究[9],在人的新生成骨細胞前顱蓋骨細胞中,加入rhBMP-2(50 μg/L),培養3~7 d,可以影響不成熟的顱蓋骨細胞,加速細胞生長,增強堿性磷酸酶活性。2~3周時,基質礦化明顯增加,在第3周時骨鈣素mRNA和蛋白表達增強,鈣在基質中的含量明顯增加,提示成骨細胞完全分化。由此認為,BMP-2含量的多少直接影響著成骨細胞的分化,決定著骨重建的結局。
本研究采用小鼠MC3T3-E1細胞,根據臨床常用鮭魚降鈣素濃度,配制低、中、高濃度組鮭魚鈣素,加藥24 h,通過Western-blot技術,觀察BMP-2的蛋白表達水平變化。研究發現,低中劑量組鮭魚降鈣素與對照組相比,表達呈逐漸上升趨勢,但無統計學意義。高劑量組與對照組相比,蛋白表達水平最高,有統計學意義 (P<0.01)。表現出明顯的劑量刺激關系。本試驗說明鮭魚降鈣素可以通過刺激BMP-2蛋白表現,促進成骨細胞增殖,降鈣素與BMP-2通過多種作用機制相互配合,協同促進骨形成和重建,從而改善骨基質,這為骨質疏松的臨床治療提供了新的理論依據。