劉超英 董骎 高洪 嚴玉霖 富國文 單春蘭



摘要:為了探討泛素(ubiquitin,簡稱Ub)對TLR4/NF-κB信號通路中關鍵分子表達的影響,通過脂質體將短發夾RNA(shRNA)質粒轉染豬小腸上皮細胞,使其泛素基因沉默,于轉染后6、12、24、48 h收集細胞及其上清。應用熒光定量PCR檢測細胞內TLR4/NF-κB信號通路中關鍵分子TLR4、NF-κB、MyD88、IκB-α的mRNA表達水平,應用酶聯免疫吸附測定法(ELISA)檢測NF-κB、IκB-α及炎性因子TNF-α、IL-1含量的變化。結果顯示,shRNA質粒有效地抑制了泛素基因的表達,轉染shRNA質粒后,TLR4/NF-κB信號通路中TLR4、NF-κB、MyD88和IκB-α的mRNA表達量及NF-κB、IκB-α、TNF-α和IL-1含量均普遍呈下降的趨勢,說明泛素在炎性因子的釋放中起著至關重要的作用,泛素基因的沉默能夠抑制該通路的活化。
關鍵詞:泛素;基因沉默;信號通路;炎性因子
中圖分類號: S188文獻標志碼: A
文章編號:1002-1302(2019)08-0037-04
泛素-蛋白酶體途徑是一種廣泛存在于真核細胞中的非常重要的、依賴于腺嘌呤核苷三磷酸(ATP)的蛋白質降解途徑,可以從多個環節參與調控NF-κB信號通路[1-3]。泛素(ubiquitin,簡稱Ub)作為該途徑的重要組成部分,可以降解TLR4/NF-κB信號通路中的IκB,使NF-κB游離到細胞核內參與炎性因子的合成,從而誘發炎癥反應[4-6]。當該途徑受到抑制時,會導致活性NF-κB的產生量減少,抗凋亡蛋白的水平隨之降低,使細胞出現凋亡[7]。
短發夾RNA(short hairpin RNAs,簡稱shRNAs)是能夠形成發夾結構的非編碼小RNA分子,因其具有特殊的莖環結構,在哺乳動物細胞中可以長期甚至穩定地發揮RNA干擾作用,而不引起非特異性反應。因此,目前shRNA介導的RNA干擾技術已經成為研究哺乳動物細胞內外基因功能強有力的工具[8-10]。為了研究泛素基因對TLR4/NF-κB信號通路的作用,本研究利用shRNA干擾技術對豬小腸上皮細胞的泛素基因進行沉默,并對TLR4/NF-κB信號通路中關鍵分子的表達情況進行檢測,不僅可以為基因沉默的相關研究提供理論依據,還可以為從蛋白降解角度尋找治療炎癥類疾病的新思路奠定基礎。
1材料與方法
1.1試驗材料
豬小腸上皮細胞(IPEC-J2),購自廣州吉尼歐生物有限公司;焦碳酸二乙酯(DEPC)、2×Easy Taq PCR Super Mix,購自北京百泰克生物有限公司;Lipofectamine 3000轉染試劑,購自Lifetechnologies公司;胎牛血清(FBS)、胰蛋白酶溶液[025% 胰酶-乙二胺四乙酸(EDTA)],購自Gibico公司;DMEM高糖培養基,購自Hyclone公司。本試驗于云南農業大學動物醫學院動物病理實驗室完成。
1.2試驗方法
1.2.1豬小腸上皮細胞的培養于37 ℃水浴,使IPEC-J2盡量在1 min內完全融化,于4 000 r/min離心5 min,加入 1 mL DMEM培養液將底部細胞吹打均勻后,注入含有6 mL DMEM培養液和10%胎牛血清的細胞培養瓶內,輕緩搖晃使細胞均勻分布,然后置于37 ℃、5% CO2的溫箱內培養。
1.2.2shRNA質粒的設計及構建根據美國國立生物技術信息中心(NCBI)網站中的豬泛素基因的核苷酸序列,設計針對豬泛素基因保守區的shRNA序列UBC-sus-263(5′-GAGAACGTCAAGGCGAAGATC-3′),并設計陰性對照 UBC-shNC(5′-GTTCTCCGAACGTGTCACGT-3′),質粒載體為U6/GFP/Neo,帶綠色熒光標記,由上海吉瑪制藥公司合成。將質粒DNA溶液于-20 ℃保存,對應的甘油菌液于 -80 ℃ 保存。
1.2.3泛素基因沉默在六孔板中培養IPEC-J2細胞,當匯合度達到80%左右時將培養液換為2 mL無血清、無抗生素的DMEM培養基,開始轉染。轉染分為空白細胞對照組、shRNA質粒轉染組和空白質粒轉染組,于37 ℃、5% CO2培養箱中培養,分別在培養6、12、24、48 h時收集細胞及其上清。
1.2.4引物設計本試驗選用β-actin作為內參基因,在NCBI網站中查找公開發表的β-actin、TLR4、NF-κB、MyD88和IκB-α基因序列,遵循實時熒光定量PCR(Real-Time PCR)的引物設計原則,利用Primer 6.0軟件設計引物,并由深圳華大基因股份有限公司合成,引物序列如表1所示。
1.2.5Real-Time PCR提取細胞總RNA,然后按照反轉錄說明書于冰上配制反應液,反轉錄結束后按下列組分配制熒光定量PCR反應液:12.5 μL SYBR Premix Ex Taq Ⅱ(Tli RnaseH Plus)(2×),各0.7 μL PCR上下游引物(10 μmol/L),2.0 μL模板,9.1 μL dH2O,將上述反應液加入0.2 mL八聯排管中混勻,離心,在Bio-Rad Real-Time PCR儀上進行反應,反應程序設置如下:95 ℃ 30 s;95 ℃ 5 s,Tm 20 s,72 ℃ 30 s,40個循環;溶解曲線55 ℃ 30 s,81個循環。結束后保存數據,并計算各指標的mRNA相對表達量。
1.2.6酶聯免疫吸附試驗(ELISA)檢測采集不同時期各處理組的細胞培養上清液,用ELISA試劑盒檢測IκB-α、NF-κB 及炎性因子 IL-1、TNF-α的含量。
1.2.7數據處理本試驗中的所有數據均用SPSS 16.0進行統計分析,試驗結果以平均值±標準差(x[TX-*5]±s)表示,用單因素方差分析比較各組均值的差異顯著性。
2結果與分析
2.1轉染shRNA質粒后IPEC-J2細胞中泛素基因的表達情況
根據24、48 h的反應循環數(CT值),計算shRNA質粒轉染IPEC-J2細胞后Ub基因的mRNA相對表達量。如圖1所示,UBC-sus-263的shRNA質粒對泛素基因的沉默效果較好,在2個時間點中,其表達量均僅為空白細胞組的2%,表現出極顯著差異(P<0.01)。
2.2IPEC-J2細胞中TLR4、NF-κB、IκB-α 及MyD88的mRNA表達量
由圖2-A可以看出,shRNA質粒轉染IPEC-J2后,細胞內的TLR4表達量明顯降低,相較于對照組顯示出極顯著差異,在24 h時降至最低值。而空白質粒組轉染后細胞內的TLR4表達量較空白細胞組略微升高,6 h時差異極顯著,24 h時差異顯著,其他時間點差異不明顯。由圖2-B可以看出,shRNA質粒表達載體轉染IPEC-J2后,細胞內的 NF-κB 表達量明顯降低,相較于對照組表現出極顯著差異,在12 h時降至最低值。而空白質粒組轉染后細胞內的NF-κB表達量較空白細胞組升高,在6 h時與對照組相比差異顯著,12、48 h與空白對照組相比表現出極顯著差異。由圖2-C可以看出,shRNA質粒轉染IPEC-J2后,細胞內的IκB-α表達量明顯降低,相較于對照組表現出極顯著差異,在24 h時降至最低值。而空白質粒組轉染后細胞內的IκB-α表達量較空白細胞組呈上升趨勢,12、24 h時與空白對照組差異顯著,48 h 時差異極顯著。由圖2-D可以看出,shRNA質粒轉染IPEC-J2后,細胞內的MyD88表達量明顯降低,相較于對照組顯示出極顯著差異,在48 h時降至最低值。而空白質粒組在6、48 h時細胞內的MyD88表達量較空白細胞組略微升高,而12、24 h時的表達量略微降低,與空白對照組間差異不顯著。
2.3IPEC-J2細胞中細胞因子的ELISA檢測結果
由圖3-A可以看出,在各時間點,shRNA質粒轉染組細胞中的NF-κB含量明顯低于空白細胞組、空白質粒轉染組,6 h時與空白組間差異極顯著,其余時間均顯示出顯著差異。由圖3-B可以看出,在轉染12~48 h,shRNA質粒轉染組細胞中的IκB-α含量明顯低于空白細胞組、空白質粒轉染組,并在12、48 h時與空白對照間顯示出顯著差異,24 h時差異極顯著。由圖3-C可以看出,在各時間點,shRNA質粒轉染組細胞中的TNF-α含量明顯低于空白細胞組、空白質粒轉染組,并在6、24、48 h時與空白對照組間顯示出極顯著差異,12 h時差異顯著。由圖3-D可以看出,在各時間點,shRNA質粒轉染組細胞中的IL-1含量明顯低于空白細胞組、空白質粒轉染組,并在24、48 h時與對照組顯示出極顯著差異,在6、12 h時與空白對照組間差異顯著。
3討論
在TLR4/NF-κB信號通路中,泛素扮演著重要的角色,研究認為,很多泛素化抑制因子可以作為治療許多疾病的新靶點[11-14]。Marfella等的研究表明,通過免疫組織化學方法和酶聯免疫分析的方法,應用羅格列酮抑制泛素-蛋白酶體途徑,可以通過減少IκB(轉錄核因子κB抑制子)的降解,從而抑制與NF-κB相關的炎癥過程[15]。目前,針對泛素蛋白酶體系統的生物學靶點已經在蛋白酶體抑制劑與E1(泛素活化酶)、E2(泛素結合酶)、E3(泛素連接酶)方面得到擴展。在大多數腫瘤細胞中,泛素分子都呈高表達狀態[16]。Choongseob等通過降低泛素UBB基因的表達量而成功抑制了體內、外腫瘤細胞的生長,其機制是通過促進細胞凋亡及調節NF-κB分子通路實現的[17-18]。因此可見,泛素化是調節NF-κB活化的一種重要機制。
在本試驗中,通過構建shRNA質粒對泛素基因進行沉默,下調或終止其表達,可以達到抑制泛素蛋白合成的目的,研究轉染該質粒后對豬小腸上皮細胞中TLR4/NF-κB信號通路的作用。結果顯示,細胞內TLR4的mRNA表達量比空白對照組和空白質粒轉染組低,隨著轉染時間增加,表達量逐漸降低,并在24 h時降至最低值;NF-κB的mRNA表達量也明顯低于空白細胞組和空白質粒轉染組,在12 h時降至最低值后逐漸升高,但仍低于空白細胞組中的NF-κB含量;IκB-α、MyD88的mRNA表達量也都低于同組的空白細胞組和空白質粒轉染組,并且隨著轉染時間的增加,mRNA的表達量逐漸降低,均在24 h時出現最小值。試驗結果表明,泛素基因沉默以及泛素的表達量下調,對TLR4/NF-κB信號通路起到了抑制作用,各下游分子的表達量均出現降低,其抑制作用很可能是通過抑制泛素化降解IκB而實現的。
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