土霉素完全抗原的制備及ELISA檢測方法的建立

曹金博 - 胡驍飛 - 王 耀 李燕虹 - 曹夕丹 -邢云瑞 - 孫亞寧 - 鄧瑞廣 - 張改平,3 -,3

(1. 河南省農業科學院動物免疫學重點實驗室，河南 鄭州 450002；2. 河南科技大學食品與生物工程學院， 河南 洛陽 471003；3. 河南農業大學，河南 鄭州 450000)

土霉素(Oxytetracycline，OTC)屬于四環素類抗生素中的一種，其化學結構式如圖1所示[1]。由于具有廣譜抗菌性，且價格低廉，因此被廣泛用于禽畜各種感染性疾病的治療，適量添加在動物飼料或飲水中還可有助于禽畜生長和疾病預防[2-3]。但由于禽畜養殖過程中長期、大量違規添加四環素類抗生素，導致其在動物源性食品以及環境中過量殘留，對人類健康造成極大威脅[4-5]。中國農業部235號公告明確規定：牛奶和肌肉中四環素類抗生素最高殘留量不得超過100 μg/g，腎臟、肝臟、蛋中分別不得超過600，300，200 μg/g。

圖1 OTC分子結構式

目前，高效液相色譜法、氣相色譜—質譜法等檢測方法存在儀器昂貴、操作繁瑣、檢測不及時等局限，因而不適合樣品的現場篩查[6-8]。相比之下，酶聯免疫吸附試驗(Enzyme-linked immunosorbent assay，ELISA)、免疫層析試紙(Immunochromatographic assay，ICA)等免疫學快速檢測方法操作簡單、迅速，同樣具有良好的靈敏度和特異性，在大批量樣品現場篩查方面具有顯著優勢[9-11]。該類方法依賴高效抗體對抗原進行靈敏特異識別，但土霉素分子量小，無免疫原性，必需與載體蛋白偶聯制備完全抗原才能刺激機體免疫應答產生抗體。目前，關于OTC完全抗原的制備雖有報道[12]，但所獲得多抗血清的敏感性和特異性有待提高。試驗擬采用重氮化法和碳二亞胺法合成OTC完全抗原，制備并鑒定OTC多抗血清，以期為后期制備OTC單克隆抗體及建立免疫學快速檢測方法提供參考。

1 材料與方法

1.1 材料與儀器

1.1.1 材料與試劑

土霉素(OTC)、金霉素(CTC)、四環素(TC)、沙拉沙星(SARA)、環丙氨嗪(CA)等標準品：純度≥99%，美國Sigma公司；

1-(3-甲氨基丙基)-3-乙基碳二亞胺(EDC)、N-羥基琥珀酰亞胺(NHS)、對氨基苯甲酸：純度98%，上海阿拉丁生化科技股份有限公司；

弗氏完全佐劑(FCA)、弗氏不完全佐劑(FIA)、牛血清蛋白(BSA)、雞卵清蛋白(OVA):純度≥99%，美國Sigma公司；

氯化鈉、氯化鉀、碳酸鈉、碳酸氫鈉等：分析純，國藥集團化學試劑有限公司。

1.1.2 儀器與設備

電子天平：ME204E型，梅特勒—托利多儀器有限公司；

紫外—可見分光光度計：UV-5100H型，美國Thermo Fisher公司；

電泳儀：DYY-6C型，大連捷邁科貿有限公司；

凝膠成像儀：ChemiDocTMXRS+型，美國Bio-Rad公司；

傅立葉變換紅外光譜儀：NicoletTMiSTM5型，日本島津公司。

1.1.3 試驗動物

BALB/c小鼠：6周齡SPF級，濟南朋悅實驗動物繁育有限公司。

1.2 方法

1.2.1 OTC半抗原合成與鑒定 OTC半抗原合成路線圖見圖2。參照Fleeker等[13]的重氮化法，具體操作步驟為：稱取4.3 mg對氨基苯甲酸溶于4 ℃預冷的2 mL 0.2 mol/L的稀鹽酸溶液中，稱取4.0 mg NaNO2溶于1 mL 4 ℃預冷的雙蒸水后緩慢滴加到對氨基苯甲酸溶液中，4 ℃避光反應1 h。稱取10 mg OTC溶于2 mL 4 ℃預冷的四硼酸鈉緩沖液(pH 8.5)，將上述反應液緩慢滴加到該溶液中，4 ℃避光攪拌2 h，反應液呈深紅色，用6 mol/L 的濃鹽酸調節其pH至1.5以下，室溫靜置10 min，產生沉淀，5 000 r/min離心3 min，去除上清，用4 ℃預冷的雙蒸水洗4遍，真空冷凍干燥后取部分樣品進行紅外掃描鑒定。

1.2.2 OTC完全抗原合成 采用同樣的方法合成免疫原OTC-BSA和包被原OTC-OVA，其合成路線(以OTC-BSA為例)見圖3。具體操作步驟為：稱取OTC半抗原5 mg溶于1 mL PBS中，加入1.8 mg NHS，4 ℃避光反應2 h。稱取6.5 mg BSA溶于2 mL PBS后慢滴加到上述反應液中，同時加入3 mg EDC，4 ℃避光攪拌24 h。最后在4 ℃條件下用PBS攪拌透析3 d，離心去除沉淀得OTC完全抗原。

1.2.3 OTC完全抗原鑒定

(1) 紫外掃描鑒定：用PBS配制與完全抗原溶液濃度一致的BSA溶液和OTC標品溶液，用紫外—可見分光光度計分別掃描其在220～350 nm的吸收光譜，通過對比各溶液的特征吸收峰判斷偶聯效果[14]。

(2) 紅外掃描鑒定：將OTC完全抗原溶液真空冷凍干燥，對OTC完全抗原、BSA和OTC進行紅外掃描，以掃描波數為橫坐標，透過率為縱坐標，得到紅外掃描光譜并進行對比。

圖2 OTC半抗原合成路線

圖3 OTC-BSA合成路線圖

(3) SDS-PAGE鑒定：參照文獻[15]制得12%的分離膠和5%的濃縮膠，其電壓分別為60，90 V，樣品加入量為20 μL(含OTC-BSA 5 μg)，用考馬斯亮藍染液染色6 h，乙酸脫色液脫色6 h，通過凝膠成像系統拍照，對比BSA與OTC-BSA電泳條帶的位置差異判斷偶聯效果。

1.2.4 OTC多抗血清的制備與鑒定 選擇4只6周齡的BALB/c小鼠，以30 μg/200 μL/只的劑量背部皮下多點注射免疫4次，每次間隔3周。首次免疫將OTC-BSA與等量FCA混合，后3次為加強免疫，將OTC-BSA與等量FIA混合。免疫完成后10 d斷尾取血，獲得OTC多抗血清。

(1) OTC多抗血清效價測定：采用間接ELISA法[16]。用CBS將OTC-OVA稀釋并包被于96孔聚苯乙烯板，37 ℃孵育2 h，PBST洗板后加封閉液，37 ℃孵育1 h。向已包被抗原的聚苯乙烯板中加入倍比稀釋的抗體，37 ℃孵育15 min，洗板后加入羊抗鼠酶標二抗，37 ℃孵育30 min，洗板后加入顯色液，10 min后終止顯色并讀取OD450 nm值，當OD450 nm/空白孔OD450 nm≥2.1時，判定為陽性孔。

(2) OTC多抗血清敏感性鑒定：采用間接競爭ELISA法[17]。向已包被抗原的聚苯乙烯板中加入效價測定中OD450 nm值為1.0左右的血清稀釋液和具有梯度濃度的OTC標品溶液，其他步驟同效價測定操作方法。通過計算抑制率，以B/B0為縱坐標(B為OTC不同濃度的OD450 nm值，B0為OTC零濃度的OD450 nm值)，OTC濃度對數值為橫坐標繪制抑制曲線，得到線性回歸方程，并以半數抑制濃度(IC50)來評定多抗血清敏感性。

1.2.5 OTC ELISA檢測方法的建立

(1) 確定最佳包被濃度和工作濃度：將OTC-OVA分別稀釋500，1 000，2 000，4 000，8 000倍進行包被，間接ELISA測定各包被濃度下抗體效價，選取效價測定中OD450 nm值1.0左右對應的稀釋度作為多抗血清工作濃度，采用間接競爭ELISA測定各包被濃度下IC50，選擇IC50最低一組所對應的包被濃度為最佳包被濃度，對應的多抗血清稀釋度為最佳工作濃度。

(2) 建立標準曲線：配置不同濃度的OTC標品溶液，并根據已確定的最佳工作濃度，建立間接競爭ELISA方法。以B/B0為縱坐標，以OTC濃度對數值為橫坐標，繪制標準曲線。

(3) 檢測限(LOD)：取不含OTC標品的空白樣品，通過建立的間接競爭ELISA方法重復測定10次，計算10次OD450 nm值的平均值(X)以及標準差(SD)，然后計算X-2SD，將所得值代入標準曲線線性回歸方程，計算出標準品濃度，即為檢測限。

(4) 樣品前處理：將新鮮牛奶樣品，8 000 r/min離心10 min，除去上層脂肪，4 ℃保存備用。

(5) 回收率測定：將OTC標準品加入新鮮牛奶樣品中，使其濃度分別為10，50，100 ng/mL，將加標樣品進行前處理后，對每個濃度重復測定4次，根據所建立方法的標準曲線得到測定值，并計算其回收率。

(6) 特異性鑒定：選擇CTC、TC、SARA、CA、BSA、OVA作為競爭物，利用所建立的間接競爭ELISA法測定各競爭物對多抗血清的IC50。以OTC的IC50與各競爭物的IC50的百分比作為交叉反應率，交叉反應率越低，則特異性越強[18]。

1.3 數據處理

對所得的數據利用Excel 2003進行處理(包括回歸分析和顯著性檢驗)，對分子結構式及合成路線圖用ChemDraw Pro 18.0進行繪制。

2 結果與分析

2.1 OTC半抗原鑒定

OTC分子結構上含有一個酰胺基和一個活潑酚羥基。有研究[19]從酰胺基考慮，采用戊二醛法和碳二亞胺法使其與載體蛋白偶聯，前期試驗同樣采用過此方法，但合成的人工抗原免疫效果差，不能滿足后續試驗需求。采用戊二醛法若不嚴格控制反應物加入順序和反應時間，極易發生分子之間的自聯，從而影響小分子抗原決定簇充分暴露，進而影響免疫效果[20]。因此試驗從OTC分子上活潑的酚羥基考慮偶聯，首先采用重氮化法合成OTC的半抗原，然后采用紅外掃描(IR)法對OTC半抗原進行鑒定。圖4、5分別為OTC和改造后OTC紅外光譜圖，改造后OTC除了含有OTC中原有化學基團外，在1 682.36 cm-1處出現羧基特征吸收峰，在2 360.46 cm-1處出現偶氮鍵特征吸收峰，證明OTC半抗原成功引入羧基基團。

2.2 OTC完全抗原鑒定

2.2.1 紫外掃描 OTC半抗原改造完成后，采用改進碳二亞胺法使其與載體蛋白偶聯，合成完全抗原，首先利用紫外掃描(UV)法對完全抗原進行鑒定。OTC-BSA、BSA、OTC的紫外掃描圖如圖6所示，BSA在278 nm處出現特征吸收峰，而OTC-BSA的吸收光譜相比BSA發生了變化，特征吸收峰稍向左偏移，并未與BSA最大吸收峰重疊，初步說明OTC和BSA發生偶聯。

圖4 OTC紅外光譜圖

圖5 改造后OTC紅外光譜圖

圖6 OTC-BSA、BSA、OTC紫外掃描圖

2.2.2 紅外掃描 采用紅外掃描法對完全抗原進行進一步鑒定，圖7、8分別為BSA和OTC-BSA紅外光譜圖，合成的完全抗原OTC-BSA在1 652.51 cm-1處出現蛋白質中氨基酸的特征峰，在858.05，950.04，1 073.54，1 162.24，1 392.30 cm-1處，出現明顯的OTC特征峰。結果進一步表明完全抗原偶聯效果良好。

2.2.3 SDS-PAGE鑒定 圖9為完全抗原OTC-BSA的SDS-PAGE鑒定結果，OTC-BSA電泳條帶出現明顯拖尾現象，其遷移速率小于BSA，說明OTC-BSA分子量大于BSA，也能夠表明OTC和BSA偶聯產生了較好的效果。

圖7 BSA紅外光譜圖

圖8 OTC-BSA紅外光譜圖

圖9 OTC-BSA的SDS-PAGE鑒定結果

2.3 多抗血清鑒定

2.3.1 效價測定 表1為OTC多抗血清效價測定結果，4只免疫小鼠多抗血清效價均達到1∶12 800，說明偶聯的免疫原具有較好的免疫效果。

2.3.2 敏感性鑒定 表2為OTC多抗血清間接競爭ELISA測定結果，可以看出OTC對4只小鼠多抗血清均起到抑制作用，其中對2號小鼠血清抑制效果最好，其抑制曲線如圖10所示，IC50為40.44 ng/mL，說明多抗血清敏感性良好。

表1 OTC多抗血清效價測定結果

表2 OTC多抗血清間接競爭ELISA測定結果

圖10 2號小鼠多抗血清抑制曲線

2.4 OTC ELISA檢測方法的建立

2.4.1 最佳包被濃度和工作濃度的確定 表3為OTC-OVA不同包被濃度下2號小鼠多抗血清效價結果，圖11為OTC-OVA不同包被濃度下抗體的IC50，由表3測量結果選擇不同包被濃度下抗體工作濃度分別為：1∶2 000，1∶2 000，1∶1 000，1∶1 000，1∶100，并利用間接競爭ELISA測定OTC-OVA不同包被濃度下抗體的IC50，如圖11所示當包被原為1∶1 000倍稀釋，抗體為1∶2 000倍稀釋時，其IC50最低，敏感性最好。

2.4.2 標準曲線的建立 根據已確定的最佳包被濃度和抗體工作濃度，建立間接競爭ELISA檢測方法并繪制標準曲線，如圖12所示。根據線性回歸方程計算IC50為32.92 ng/mL。

2.4.3 檢測限 通過建立的間接競爭ELISA方法測定空白樣品，平行測定10次，OD450 nm分別為0.968，1.003，0.986，1.015，1.101，0.987，0.993，1.031，0.976，1.003，平均值(X)為1.006，標準差(SD)為0.038，計算X-2SD值(0.93)，再根據標準曲線求得LOD為1.3 ng/mL。

表3 不同包被濃度的效價測定結果

圖11 不同包被濃度所對應的抗體IC50

圖12 OTC間接競爭ELISA檢測試劑盒標準曲線

2.4.4 回收率測定 間接競爭ELISA方法測定不同濃度OTC的牛奶樣品結果如表4所示，回收率在84.70%～87.45%，變異系數在9.3%～11.5%，變異系數<15%，說明方法具有良好的準確度。

2.4.5 特異性鑒定 ELISA方法的特異性鑒定結果如表5所示，與CTC、TC的交叉反應率分別為5.27%，4.10%，與其他競爭物交叉反應率<0.4%，說明所建立的ELISA方法與CTC、TC存在微弱交叉反應，但與其他獸藥及載體蛋白均無交叉反應，具有較強的特異性。

表4 回收率測定結果

表5 OTC多抗血清與競爭物的交叉反應

3 結論

試驗采用重氮化法和碳二亞胺法成功合成OTC的完全抗原，所制備的小鼠多抗血清具有良好的敏感性，在此基礎上初步建立OTC間接競爭ELISA檢測方法，IC50為32.92 ng/mL，LOD為1.3 ng/mL，牛奶樣品中添加回收率在84.70%～87.45%，與CTC、TC的交叉反應率分別為6.46%，5.01%，與其他競爭物交叉反應率<0.4%，具有良好的檢測效果，可為監控OTC殘留提供一定的技術支撐。