張鄰川, 鄭武揚, 唐文明△
(1廈門大學附屬第一醫院杏林分院心內科, 福建 廈門 361022; 2廈門大學附屬第一醫院心內科, 福建 廈門 361000)
心血管疾病是一種缺血性或出血性疾病,具患病率高、死亡率高和致殘率高的特點。據統計,從1990年~2016年,我國心血管疾病致死人數由251萬增加到397萬,患病人數從4 060萬上升到9 400萬[1],已成為嚴重威脅人類健康和生命的主要疾病[2]。心肌缺氧是指各種原因引起冠狀動脈血流量降低,致使心肌氧等物質供應不足和代謝產物清除減少為主的病理過程[3]。作為臨床上常見的心血管疾病之一[4],心肌缺氧損傷會引起心肌細胞凋亡,最終導致心肌壞死[5]。然而,關于缺氧心肌損傷的相關機制尚不明確。微小RNAs(microRNAs,miRNAs,miR)是一種高度保守的非編碼RNA,參與缺氧心肌細胞損傷過程[6]。資料顯示, miR-323在缺氧誘導豬心肌組織中表達上調[7],miR-323通過靶向BRI3調控缺血/再灌注損傷誘導的神經元細胞死亡[8],但miR-323對缺氧誘導心肌細胞損傷的影響鮮見報道。因此,本研究構建體外缺氧心肌H9C2細胞損傷模型,觀察miR-323是否通過調控成纖維細胞生長因子9(fibroblast growth factor 9,FGF9)表達來影響缺氧誘導的心肌細胞凋亡,為心肌缺氧的臨床診治提供潛在生物標志物。
心肌H9C2細胞購自ATCC。DMEM培養基和胎牛血清購自Gibco;胰酶和RIPA裂解液購自北京索萊寶公司;miR-323、anti-miR-323、miR-con、pcDNA-FGF9和si-FGF9購自廣州銳博生物有限公司;青霉素、鏈霉素和Lipofectamine 2000購自賽默飛世爾有限公司;miRNA提取試劑盒購自Qiagen;逆轉錄試劑盒和qPCR試劑盒購自Applied Biosystems;MTT購自Sigma;Annexin V-FITC/PI細胞凋亡檢測試劑盒購自江蘇凱基生物公司;抗FGF9、β-肌動蛋白(β-actin)、cleaved caspase-3、c-Jun氨基末端激酶(c-Jun N-terminal kinase,JNK)和p-JNK抗體購自Cellular Signaling Technology;辣根過氧化物酶標記的II 抗和ECL發光檢測試劑盒購自碧云天生物技術研究所;螢光素酶報告基因載體購自上海吉瑪生物公司;細胞培養瓶購自上海生工科技有限公司。ABI 7500熒光定量PCR儀購自ABI;離心機購自Eppendorf;酶標儀購自Bio-Rad;FACSCalibur流式細胞儀購自BD。
2.1細胞培養與分組 H9C2細胞培養于DMEM培養液,其中包含10%胎牛血清、1×105U/L青霉素和100 mg/L鏈霉素,放入37 ℃、5% CO2的培養箱,待細胞融合度大于80%,加入適量胰酶消化,進行接種傳代。將H9C2細胞隨機分為正常對照(normal control,NC)組(常氧培養H9C2細胞)和不同處理時間的缺氧(hypoxia)組(缺氧培養H9C2細胞0 h、12 h、24 h和48 h),其中,37 ℃、5% CO2環境為常氧培養條件,1% O2、94% N2、5% CO2為缺氧培養條件[9]。
2.2細胞轉染 調整H9C2細胞密度為1×108/L,將其接種于6孔板,待細胞生長至70%融合度時,根據Lipofectamine 2000試劑說明書的指示開始轉染。將anti-miR-323、pcDNA-FGF9和si-FGF9以及相應的陰性對照轉染入H9C2細胞,并在缺氧條件下培養48 h備用。
2.3qPCR檢測miR-323的表達 根據miRNA提取試劑盒說明書,提取細胞中的總miRNA,按逆轉錄試劑盒說明書操作,將miRNA合成為cDNA,并以cDNA為模板,用實時定量PCR儀進行擴增反應。條件為:95 ℃ 2 min;95 ℃ 15 s、60 ℃ 30 s、72℃ 8 min,循環40次;然后檢測擴增曲線和熔解曲線。收集Ct值,以2-ΔΔCt法計算miR-323的相對表達量。
2.4Western blot實驗 使用RIPA裂解液充分裂解各組H9C2細胞提取總蛋白,加緩沖液于沸水變性10 min,進行10%的SDS-PAGE,并轉移到PVDF膜,用5%脫脂奶粉常溫封閉1 h,加入 I 抗(1∶1 000稀釋),4 ℃孵育過夜,隨后用Tris-HCl-Tween緩沖鹽溶液洗膜3次,每次10 min,加入 II 抗(1∶2 000稀釋),室溫孵育1 h,TBST洗膜3次,每次10 min,ELC顯色,以β-actin為內參照,進行蛋白灰度分析。
2.5MTT比色法檢測細胞活力 收集各組H9C2細胞,用PBS沖洗3次,棄上清,使用胰酶消化,將細胞以每孔1×104個的密度接種于96孔板,每組設置3個復孔,各孔加入MTT工作液100 μL,37 ℃孵育4 h,棄上清液,加入二甲基亞砜200 μL,37 ℃搖床孵育10 min,置酶標儀測定各孔細胞在490 nm處的吸光度(A)。細胞相對活力(%)=A實驗組/A對照組×100%。
2.6流式細胞術檢測細胞凋亡 使用胰酶消化各組H9C2細胞,收集1×108/L細胞,加入500 μL緩沖液懸浮細胞,加入5 μL Annexin V-FITC混勻,加入5 μL PI 混勻,在室溫避光條件下反應15 min,置流式細胞儀檢測細胞凋亡情況。
2.7靶基因預測及雙螢光素酶報告基因實驗 TargetScan數據庫(http://www.targetscan.org/vert_71/)預測miR-323和FGF9的3’-非翻譯區(3’-untranslated region,3’UTR)部分堿基可形成互補配對。分別構建含有miR-323結合位點的FGF9-3’UTR野生型(FGF9-WT)及FGF9-3’UTR突變型(FGF9-MUT)報告基因載體,并分別轉染miR-323或miR-con,培養48 h后,收集H9C2細胞,參照雙螢光素酶報告基因檢測試劑盒說明書,測定雙螢光素酶活性。
采用SPSS 22.0軟件對實驗結果進行統計分析。數據以平均值±標準差(mean±SD)表示。兩組數據的比較用t檢驗,多組間數據比較用單因素方差分析,各組均數間的兩兩比較用SNK-q檢驗,以P<0.05代表差異有統計學意義。
MTT法檢測缺氧對心肌H9C2細胞活力的影響,與0 h組相比,缺氧處理H9C2細胞12 h、24 h和48 h后,細胞活力顯著下降(P<0.05),并呈時間依賴性,見圖1A。對細胞凋亡的檢測結果發現,與0 h組相比,缺氧處理H9C2細胞12 h、24 h和48 h后,細胞凋亡率逐漸增加(P<0.05),并呈時間依賴性,見圖1B。qPCR檢測缺氧對心肌H9C2細胞中miR-323表達的影響,發現缺氧不同時間(12 h、24 h和48 h)較0 h組顯著增加H9C2細胞中miR-323的表達量(P<0.05),見圖1C。Western blot檢測結果顯示,缺氧不同時間(12 h、24 h和48 h)較0 h組明顯減少FGF9蛋白的表達,提高cleaved caspase-3蛋白的水平(P<0.05),表現出一定的時間依賴性,見圖1D。
Figure 1. The effects of hypoxic exposure for different time on the viability and apoptosis of H9C2 cells. A: the viability of H9C2 cells exposed to hypoxia for different time detected by MTT assay; B: the apoptosis of the H9C2 cells exposed to hypoxia for different time analyzed by flow cytometry; C: the expression of miR-323 in the H9C2 cells exposed to hypoxia for different time detected by qPCR; D: the protein expression of FGF9 and cleaved caspase-3 in the H9C2 cells exposed to hypoxia for different time determined by Western blot. Mean±SD.n=9.*P<0.05vs0 h group.
圖1 缺氧不同時間對心肌H9C2細胞活力和凋亡的影響
qPCR檢測結果表明,與hypoxia+anti-miR-con組比較,轉染anti-miR-323顯著降低缺氧處理H9C2細胞中miR-323表達量(P<0.05),說明轉染成功,見圖2A。對細胞活力和凋亡的檢測結果顯示,下調miR-323表達較hypoxia+anti-miR-con組增強缺氧處理的H9C2細胞活力,降低細胞凋亡率和cleaved caspase-3蛋白的水平(P<0.05),見圖2B~D。
Figure 2. The effects of anti-miR-323 transfection on the viability and apoptosis of H9C2 cells exposed to hypoxia. A: the effects of transfection with anti-miR-323 on the miR-323 expression in H9C2 cells exposed to hypoxia; B: the effects of the anti-miR-323 transfection on the viability of H9C2 cells exposed to hypoxia; C: the effects of anti-miR-323 transfection on the apoptotic rate of H9C2 cells exposed to hypoxia; D: the effects of anti-miR-323 transfection on the protein level of cleaved caspase-3 in H9C2 cells exposed to hypoxia. Mean±SD.n=9.*P<0.05vsNC group;#P<0.05vshypoxia+anti-miR-con group.
圖2 轉染anti-miR-323對缺氧處理心肌H9C2 細胞活力和凋亡的影響
生物信息學信息預測FGF9的3’UTR含有與miR-323互補的核苷酸序列,見圖3A,推測miR-323對FGF9表達具有一定的調控作用。雙螢光素酶報告基因實驗結果顯示,miR-323明顯減弱FGF9-WT報告基因的螢光素酶相對活性(P<0.05),而對FGF9-MUT報告基因的螢光素酶相對活性無明顯影響,見圖3B。轉染miR-323顯著降低FGF9蛋白表達,轉染anti-miR-323顯著提高FGF9蛋白表達(P<0.05),見圖3C。
與hypoxia+pcDNA組比較,轉染pcDNA-FGF9顯著促進缺氧處理的H9C2細胞中FGF9的表達(P<0.05),提示pcDNA-FGF9轉染成功,見圖4C。與hypoxia+pcDNA組比較,過表達FGF9大幅提升缺氧處理心肌細胞的存活率,見圖4A,減少細胞凋亡率,見圖4B,降低cleaved caspase-3蛋白表達的水平(P<0.05),見圖4C。
與hypoxia+anti-miR-con+si-con組比較,anti-miR-323和si-FGF9共轉染顯著降低缺氧處理的H9C2細胞活力(P<0.05),見圖5A,提高細胞凋亡率和cleaved caspase-3的蛋白水平,降低FGF9的蛋白水平(P<0.05),見圖5B、C。
Figure 3. miR-323 specifically regulated the expression of FGF9 in the H9C2 cells. A: the 3’UTR of FGF9 contained nucleotide sequences complementary to miR-323; B: dual-luciferase reporter assay; C: the effect of miR-323 on the protein expression of FGF9 determined by Western blot. Mean±SD.n=9.*P<0.05vsmiR-con group.
圖3 miR-323靶向調控H9C2細胞FGF9的表達

Figure 4. Over-expression of FGF9 promoted the viability of H9C2 cells exposed to hypoxia and inhibited cell apoptosis. A: the changes of the cell viability; B: the changes of the apoptosis rate; C: the results of Western blot for determining the effects of FGF9 over-expression on the protein levels of FGF9 and cleaved caspase-3 in H9C2 cells exposed to hypoxia. Mean±SD.n=9.*P<0.05vsNC group;#P<0.05vspcDNA group.
圖4 過表達FGF9增強缺氧處理的心肌H9C2細胞活力和抑制細胞凋亡

Figure 5. The effects of FGF9 and anti-miR-323 on the viability and apoptosis of hypoxia-treated H9C2 cells. A: the effects of FGF9 and anti-miR-323 on the viability of H9C2 cells under hypoxia; B: the effects of FGF9 and anti-miR-323 on the apoptosis of hypoxic-treated H9C2 cells; C: the results of Western blot for determining the effects of FGF9 and anti-miR-323 on the protein levels of FGF9 and cleaved caspase-3 in hypoxia-treated H9C2 cells. Mean±SD.n=9.*P<0.05vsNC group;#P<0.05vshypoxia+anti-miR-con group;&P<0.05vshypoxia+anti-miR-con+si-con group.
圖5 FGF9和anti-miR-323對缺氧處理心肌H9C2細胞活力和凋亡的影響
Western blot檢測H9C2細胞中JNK和p-JNK的蛋白水平,發現缺氧處理、下調miR-323表達或下調FGF9表達均不影響細胞中JNK表達,但缺氧處理組和hypoxia+anti-miR-con+si-FGF9組較相應的對照組細胞中p-JNK表達量顯著增加,下調miR-323表達較hypoxia+anti-miR-con組明顯降低缺氧處理H9C2細胞中p-JNK的蛋白水平(P<0.05),見圖6。
miRNA約有22個核苷酸長度,通過與下游靶基因3’UTR序列特異性結合,調控基因表達,參與細胞生長、分化和周期等生物學過程[10]。越來越多的證據表明,miRNA在缺氧誘導心肌細胞損傷的發生發展中扮演著重要角色[11-12]。高表達miR-22可以保護體外培養的缺氧心肌細胞損傷,提高細胞活力,減少細胞凋亡[13]。miR-145-5p可作為心肌細胞保護分子,通過調節CD40改善缺氧誘導心肌細胞的炎癥反應,減輕細胞凋亡[14]。下調miR-122保護心肌 H9C2細胞免受缺氧誘導的凋亡,增強缺氧誘導的H9C2細胞的活力[15]。本研究發現缺氧處理以時間依賴方式抑制H9C2細胞的活力,促進細胞凋亡。miR-323在缺氧12 h、24 h和48 h處理的H9C2細胞中表達上調。下調miR-323表達顯著提高缺氧處理H9C2細胞活力,降低細胞凋亡率,與下調miR-122表達的作用[15]一致。另外,下調miR-323表達明顯提高缺氧處理H9C2細胞后cleaved caspase-3的水平。這些結果說明下調miR-323表達可以保護心肌H9C2細胞免受缺氧損傷。

Figure 6. The protein levels of JNK and p-JNK in H9C2 cells detected by Western blot. Mean±SD.n=9.*P<0.05vsNC group;#P<0.05vshypoxia+anti-miR-con group;&P<0.05vshypoxia+anti-miR-con+si-con group.
圖6 Western blot檢測心肌H9C2細胞中miR-323調控FGF9對JNK和p-JNK蛋白水平的影響
FGF9是成纖維細胞生長因子(fibroblast growth factors,FGFs)家族一員,FGFs主要包括23個成員[16],多個成員如FGF2、FGF19和FGF21等具有保護心肌的作用[17-20],其中,FGF9與缺氧心肌細胞損傷密切相關,可能成為缺氧心肌細胞損傷的潛在治療靶點。FGF9在缺血缺氧心肌細胞中表達下調,抑制FGF9表達可以促進缺血缺氧損傷的心肌細胞凋亡;FGF9通過PI3K/AKT信號通路激活來抑制心肌細胞凋亡[21]。FGF9可以拮抗小鼠糖尿病心肌梗死[22]。本實驗中,缺氧處理H9C2細胞后,FGF9蛋白表達顯著下調,過表達FGF9明顯增加缺氧處理H9C2細胞活力,降低細胞凋亡率和cleaved caspase-3蛋白水平,提示FGF9參與缺氧誘導心肌H9C2細胞損傷進程,并且過表達FGF9可減輕缺氧心肌H9C2細胞的損傷,這與前人的研究結果[21-22]相符。
研究表明,miRNA通過靶向其下游靶基因,調節缺氧誘導的心肌細胞增殖、凋亡等過程,如miR-503通過靶向IGF-1R促進缺氧條件下心肌H9C2細胞凋亡[23],過表達miR-150通過靶向葡萄糖調節蛋白-94抑制缺氧誘導的人心肌細胞的凋亡[24]。為了進一步研究下調miR-323表達見清缺氧H9C2細胞損傷的分子機制,我們運用生物學信息結合雙螢光素酶基因報告實驗證實FGF9是miR-323的靶基因。在細胞中上調或下調miR-323表達顯著調控FGF9表達。過表達FGF9與下調miR-323表達對缺氧處理H9C2細胞的作用結果相同。另外,下調FGF9表達逆轉了下調miR-323表達對缺氧處理H9C2細胞活力的促進作用,以及逆轉對細胞凋亡、cleaved caspase-3蛋白水平的抑制作用,說明FGF9是miR-323影響缺氧處理H9C2細胞凋亡的功能性靶基因。JNK信號通路是影響細胞凋亡的主要信號通路之一,當受到外界刺激時,JNK發生磷酸化,形成p-JNK,參與細胞生長、發育和凋亡等生理過程[25-27]。缺氧復氧處理H9C2細胞p-JNK的水平升高[28],丁香酸下調p-JNK的水平,抑制JNK信號通路活性可減輕缺氧復氧損傷后H9c2細胞凋亡[29]。miR-486通過靶向NDRG2滅活JNK/c-Jun信號通路,從而減輕缺氧誘導的心肌細胞H9C2損傷[30]。本研究中,下調miR-323表達明顯抑制JNK信號通路p-JNK的水平,下調FGF9表達可逆轉這種抑制作用,表明miR-323對缺氧導致心肌H9C2細胞凋亡的影響與FGF9表達、JNK信號通路密切相關。
綜上所述,miR-323通過靶向調控FGF9表達,并調控JNK信號通路,從而影響缺氧誘導心肌細胞H9C2凋亡。