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miRNA-146a靶向干預改善晚期APP/PS1雙轉基因模型小鼠認知功能的實驗研究

2020-05-14 06:41:28范煒豪陳雄金廣東醫科大學附屬醫院神經病學研究所神經內科廣東湛江5400
廣東醫科大學學報 2020年2期
關鍵詞:海馬小鼠實驗

麥 暉 , 范煒豪 , 陳雄金 , 趙 斌 (廣東醫科大學附屬醫院 . 神經病學研究所;. 神經內科,廣東湛江 5400)

阿爾茨海默病(Alzheimer’s Disease,AD)是發生于老年和老年前期的一種漸進性的神經退行性疾病,是老年人中最常見的癡呆性疾病。據統計,65歲以上老年人約有5%患有AD,至2015年我國AD患者超過900萬人,患病人數居世界第一,預計至2050年我國老齡化人口將超過4億人[1]。AD發病后難以治愈,目前主要的療法只限于短期緩解發病癥狀。臨床藥物如膽堿酯酶抑制劑或谷氨酸受體拮抗劑只能改善癥狀,不能徹底治愈,而治療AD的藥物臨床試驗進展不盡人意,AD的發病機制、實際治療策略及新的治療靶點均有待進一步研究[2]。MicroRNA(miRNA)是一類在生命進程中具有保守性及穩定性的內源性非編碼RNA。miRNA通常被認為是細胞命運的決定因素,是各種腦部疾病的關鍵調節因子,有望成為治療神經退行性疾病的靶點[2-3]。miRNA-146a是AD與炎癥有關的一種miRNA,它可以調控先天免疫。AD腦解剖病理結果提示,在海馬和顳葉皮層,miRNA-146a表達上調;而在未受影響的區域miRNA-146a 水平保持不變[4]。此外,miRNA-146a不僅參與調節先天免疫,還影響造血功能和細胞分化等[5-6]。前期研究發現,miRNA-146a在AD發病過程中具有重要的作用,可能是AD的一個潛在新靶點[7]。目前大眾對AD 的認識普遍不足,臨床上確診的AD患者大多已處于晚期,給社會和家庭帶來了沉重的負擔。本研究試圖通過實驗研究明確miRNA-146a是否能改善晚期APP/ PS1雙轉基因模型小鼠的行為認知功能,是否為AD 的潛在治療靶點,為AD患者新型藥物的研究提供新的思路。

1 材料和方法

1.1 試劑

miRNA-146a agomir 和DEPC(diethyl pyrocarbonate) 為廣州艾基生物技術有限公司產品;Aβ42 ELISA試劑盒為美國invitrogen公司產品;六氟異丙醇(HFIP) 為美國Sigma公司產品;OCT包埋劑為美國櫻花SAKURA公司產品;Aβ抗體、Aβ42抗體、P-tau T181、tau 46、β-actin 抗體、HRP標記二抗為美國CST公司產品;Flour 488熒光二抗、DAPI(4',6-diamidino-2-phenylindole)、 P-tau S396抗 體 、 P-tau T205抗體為英國abcam公司產品;脫脂奶粉為美國BD公司產品。

1.2 實驗動物

SPF(specific pathogen free)級18月齡APP/PS1雙轉基因小鼠12只,18月齡相同背景非轉基因野生型小鼠(C57BL/6型,簡稱C57小鼠)6只,均為雄性。試驗動物由廣東省實驗動物中心提供,飼養于廣東醫科大學實驗動物中心SPF級房,22~26 ℃,濕度為55%~65%,12 h光暗周期條件下飼養(早上7點打開照明裝置,19時關閉照明裝置),自由獲取食物和水源。本實驗已通過廣東醫科大學倫理委員會審核,遵循相應動物實驗操作規范。

1.3 實驗方法

1.3.1 動物分組 隨機將18月齡AD小鼠分為AD組和ADI組(干預組),每組6只,18月齡C57小鼠6只作為CON組。

1.3.2 動物給藥 實驗動物按照Hanson等[8]方法予小鼠鼻腔滴注給藥。(1) 將實驗劑量1 nmol miRNA-146a agomir溶于24 μL無酶的DEPC水中,冰盒中保存。(2) 在正式實驗前2周,用2.5 μL移液槍給小鼠用生理鹽水滴鼻。正式實驗時,ADI組給予miRNA-146a agomir,每次1 μL,兩個鼻孔交替滴注,總量達8 μL 后,給予小鼠休息5 min, miRNA-146a agomir充分吸收后,再進行下一個輪回,3個輪回將24 μL滴注完。隔天干預1次,共15次。AD組和CON組小鼠均給予同等體積的載體DEPC水。

1.3.3 Morris水迷宮檢測 30 d給藥結束后,全部小鼠開始進行Morris水迷宮測試,用于考察實驗小鼠的學習記憶情況。Morris水迷宮行為檢測系統由圓形水槽、平臺和數據采集系統組成。(1)定位航行實驗:定位航行實驗用于測量小鼠對水迷宮學習和記憶的能力,共歷時5 d,平臺固定在NW象限下1 cm,每天每只小鼠連續訓練4次。訓練時每次將小鼠從不同象限邊緣中點位置面向池壁放入水中,觀察并記錄小鼠在90 s內找到平臺的時間(平臺上停留時間超過10 s),即為逃避潛伏期。如果小鼠在90 s內未能找到平臺則人為引導至平臺,停留10 s后移開,逃避潛伏期記為90 s。每次訓練完后,用干毛巾擦干小鼠,防止低體溫造成的應激干擾結果。(2)空間搜索實驗:空間搜索實驗用于測量小鼠學會尋找平臺后,對平臺空間位置記憶的能力。實驗第6天時撤除平臺,選SE象限將小鼠面向池壁放入水中,記錄90 s內小鼠穿越平臺所在位置次數、在平臺所在象限的停留時間及游泳路程百分比。

1.3.4 Y迷宮檢測 Y迷宮主要應用于動物的辨別性學習、工作記憶和參考記憶的測試。Y迷宮用醫用有機板制作,內外壁貼黑色膠紙,共3個臂,各臂夾角為120°,每一臂尺寸為30 cm×8 cm×15 cm(長×寬×高),中央處各有1個可移動的隔板,在迷宮各個臂內貼上不同的幾何圖形,作為視覺標記。每個Y迷宮的3個臂被隨機設為新異臂、起始臂和其他臂。新異臂:在實驗的第一階段即訓練時期用隔板擋住,在第二階段即測試期打開;起始臂:小鼠進入迷宮所在的臂。整個實驗過程中起始臂和其他臂都是一直打開,動物可以自由出入。迷宮內鋪墊木屑,每次訓練或測試結束后,混勻各個臂的木屑,以防止動物殘留氣味干擾。迷宮上方1.5 m處安置攝像頭,全過程錄像。檢測小鼠自發性交替反應和空間識別能力。

1.3.5 小鼠海馬組織樣品的準備 磁共振檢測完成后,各組小鼠用10%水合氯醛(按照0.35 mL/100 g)腹腔注射,麻醉后心臟右心耳小剪刀剪開小口,左心室快速灌注4 ℃預冷的生理鹽水,至右心耳流程清亮液體,肝臟發白后,改用4 ℃預冷4 %多聚甲醛快速灌注,隨后斷頭取腦,腦組織沿矢狀面一分為二。其中一側腦組織迅速分離出海馬組織置于-80 ℃保存備用,進行后續分析;另一側腦組織置于4 ℃預冷的4 %多聚甲醛-PBS(phosphate buffer saline)溶液(pH=7.4)中固定過夜,OTCB包埋,然后按冠狀面將組織切成25 μm厚的冰凍薄片,用貼片法將腦片吸附于防脫片玻片上,按不同實驗組將片放置于切片盒-80 ℃低溫冰箱保存備用。

1.3.6 免疫熒光檢測 冰凍切片免疫熒光檢測小鼠顱內Aβ/Aβ42蛋白含量。具體步驟如下:將腦組織片從-80 ℃冰箱取出,放置在片架上置入37 ℃溫箱30 min,用免疫組化筆做好標記后置入玻璃染缸中給予PBS(pH 7.2~ 7.4),室溫下洗3次,每次5 min。隨后加10 %同源羊血清(與二抗同來源)于濕盒中常溫封閉1 h。封閉結束后將其中的封閉液吸干,滴加一抗,置入濕盒中4 ℃冰箱孵育過夜。第2天,從4 ℃冰箱中取出濕盒,室溫下復溫1 h,隨之置入玻璃染缸中給予PBS,室溫下洗3次,每次5 min。避光用移液槍滴加配制好的熒光二抗(采用封閉液稀釋),后將濕盒置入37 ℃恒溫箱中孵育1 h,從溫箱取出后予PBS室溫下洗3次,每次5 min。待片子干后,滴加DAPI,避光室溫孵育3 min,隨后置入玻璃染缸中室溫下PBS洗3次,每次5 min,風干后加入放猝滅劑并蓋上玻片。TCS SPE5 萊卡共聚焦顯微鏡下觀察海馬區熒光表達情況。Aβ一抗1:100稀釋、Aβ42一抗1:1 600稀釋,二抗均按1:1 000稀釋。

1.3.7 ELISA法檢測Aβ42含量 按照說明書要求進行ELISA檢測Aβ42含量,具體步驟如下:從-80 ℃冰箱取出各月齡小鼠每個樣本海馬組織(約30 mg),沖洗干凈后,按每100 mg樣本加入含1×蛋白水解酶抑制劑1.0 mL的PBS進行勻漿,4 ℃ 15 000 r/min離心30 min后收集上清,分裝、標記。在離心后的沉淀物中加入1 g/L六氟異丙醇200 mL后震蕩混勻,離心收集上清,分裝、標記。然后按照操作手冊分別檢測可溶性和不可溶性Aβ42水平。

1.3.8 Western blotting檢測 按等質量取已提純的海馬組織蛋白30 μg進行SDS-聚丙烯酰胺凝膠電泳分離,接著將目標蛋白從凝膠中轉移至PDVF(polyvinylidene fluoride)膜上,用TBST(Tris-Buffered Saline Tween-20)溶液洗滌:每次5 min,共3次;將PVDF膜放入 5%脫脂奶粉溶液中常溫封閉2 h(搖床中慢搖);用 1%的脫脂奶粉稀釋一抗(兔抗P-tau S396,1:500稀釋;兔抗P-tau T205,1:1 000稀釋;兔抗P-tau T181,1:500稀釋;兔抗tau46,1:500稀釋;內參β-actin,1:1 000稀釋),4 ℃搖床過夜;次日常溫復溫40 min,用TBST洗滌3次,每次5 min;洗完后用1 %的脫脂奶粉稀釋二抗(HRP標記的羊抗兔二抗,1:20 000稀釋),37 ℃搖床孵育2 h。用TBST溶液洗滌3次,每次10 min;暗房避光,ECL法化學發光顯影、定影。膠片曝光后用掃描儀進行條帶掃描,灰度分析結果。

1.4 統計學處理

采用 Graphpad Prism 6.0 統計軟件進行分析。數據以均數±標準差表示,采用one-way ANOVA及q檢驗分析各組樣品數值間的差異。P<0.05表示差異有統計學意義。

2 結果

2.1 行為學檢測結果

2.1.1 Morris水迷宮檢測結果 如圖1A所示,在定位航行訓練實驗中,隨著訓練時間的增加,各組小鼠找到平臺的時間(即逃避潛伏期)逐漸縮短。與AD組小鼠相比,ADI組小鼠在定位航行實驗2、3、4、5 d的逃避潛伏期明顯縮短,定位巡航運動軌跡也同樣明顯縮短,差異均有統計學意義(P<0.01)。圖1B~D所示,與AD組小鼠相比,ADI組小鼠在原平臺所在象限停留時間及游泳路程百分比都明顯增加,差異有統計學意義(P<0.05或0.01);而穿越原平臺次數雖略有增多,但差異無統計學意義(P>0.05)。

2.1.2 Y迷宮方法檢測結果 在自發交替反應中,ADI組小鼠正確率較同月齡AD組小鼠雖略有增加,但差異無統計學意義(P>0.05);ADI組小鼠在新異臂的停留時間以及在穿越新異臂的次數均比同月齡AD組小鼠明顯增加,差異有統計學意義(P<0.05或0.01)。詳見圖1E~G。

2.2 miRNA-146a agomir對 APP/PS1小 鼠 腦 組 織Aβ和Aβ42沉積的影響

ADI組小鼠與AD組比較,海馬區Aβ和Aβ42沉積斑數量(綠色熒光)均顯著降低(圖2A),兩組海馬可溶性和不可溶性Aβ42含量的比較差異亦有統計學意義(P<0.05或0.01,圖2B~C)。

2.3 miRNA-146a agomir對APP/PS1小鼠海馬區tau蛋白異常磷酸化水平的影響

圖1 18月齡3組小鼠行為學檢測結果

如圖3所示,AD組小鼠與CON組相比,海馬組織中P-tau S396、 P-tau T181和P-tau T205蛋白異常磷酸化水平明顯增加;ADI組小鼠與AD組相比,海馬海馬組織中P-tau S396、P-tau T181和P-tau T205蛋白異常磷酸化水平明顯減少,差異均有統計學意義(P<0.05或0.01)。

3 討論

AD是一種錯綜復雜的多病因和多發病機制的神經退行性疾病,由多個基因、通路以及蛋白的失調引起,到目前為止其發病機制尚不明確。研究表明,神經內分泌免疫網絡失調也是AD發病的機制之一,且在AD的發病機制中處于核心地位[9-10]。身體的免疫系統炎癥與AD密切相關,而先天性免疫系統對腦代謝、神經保護和修復等方面是至關重要的。一旦免疫系統和炎癥信號途徑被激活,機體就會產生過量的氧自由基,同時促炎性細胞因子以及前列腺素也會大量表達,進而引發炎癥級聯反應,Aβ異常沉積及tau過度磷酸化,最終導致突觸降解和神經元死亡,從而導致神經退行性疾病和AD的發生和進展[10-12]。

miRNAs已經成為基因表達的關鍵調控因子,并且被證明可影響多種細胞生物學過程,包括增殖、分化、存活和遷移等[13-15]。中樞神經系統中也有自己獨特的miRNA,參與神經系統疾病的生理、病理及生物反饋過程,如神經細胞發育、膠質細胞增生、神經細胞凋亡及壞死等。在AD患者海馬中檢測到多種 miRNA, 如 miRNA-16、 miRNA-34c、 miRNA-107、miRNA-128a和miRNA-146a[3,16]。miRNA-146a免疫炎癥相關的靶基因,包括IRAK1、TRAF6、CXCR4、CFH、COX2、ROCK1、EGFR、Notch1和STAT1[17-18],參與了多種病理、生理過程和疾病相關的免疫炎癥反應[5,19-21]。miRNA-146a還可作用于APP金屬蛋白酶10(ADAM10)的關鍵調節因子跨膜四旋TSPAN12,從而影響Aβ的代謝[22]。而β樣淀粉蛋白在腦內沉積對神經細胞的毒性是AD發病的關鍵因素[23]。近年來也有研究認為Aβ是tau的上游調節途徑,其毒性引起tau功能異常。換而言之,tau過度磷酸化通常被認為是淀粉樣變性的結果,而不是該疾病發病機制中的一個獨立事件[24]。反之異常磷酸化的tau也可增加Aβ的毒性[25],兩者相輔相成。

圖2 miRNA-146a agomir干預后 APP/PS1小鼠腦組織海馬區Aβ的沉積情況

圖3 miRNA-146a agomir干預后APP/PS小鼠海馬中tau蛋白磷酸化情況

Morris水迷宮是目前評價動物學習與記憶的應用最廣范的模型,可用于測試實驗動物對空間位置覺和方向覺(空間定位)的學習記憶能力。Y迷宮實驗模型用來研究嚙齒類動物的空間識別記憶能力。相對于被動回避等實驗,這種迷宮利用了嚙齒類動物對新異環境天然探究的自然習性,不需要動物學習任何的規則來趨利避害,能夠有效地反映動物對新異環境的識別記憶能力。在本研究中2個迷宮測試結果均有力證實了miRNA-146a agomir 靶向干預后,明顯改善了晚期AD模型小鼠的行為認知能力。分子層面上,我們發現干預后的AD模型小鼠其海馬區Aβ、Aβ42蛋白的沉積及tau蛋白的異常磷酸化水平與AD 正常小鼠相比明顯降低。結合目前公認的AD典型神經退行性病變的主要表現為:(1)學習記憶力功能減退及損傷;(2)不同腦區(包括海馬、皮質等)Aβ聚集形成老年斑(SP);(3) tau 蛋白過度磷酸化聚集形成神經原纖維纏結(NFTs);(4)大量神經元損傷和數目的減少,突觸功能紊亂以及嚴重的軸突和樹突骨架的破壞[26-27]。某種程度上可以說,miRNA-146a agomir干預后全面緩解了AD模型小鼠的病理、生理進程,在活體動物實驗中表現為行為認知能力得到明顯改善。

綜上所述, miRNA-146a agomir靶向干預可改善晚期AD小鼠的行為認知功能障礙,降低AD小鼠海馬區Aβ、Aβ42蛋白的沉積及tau蛋白的異常磷酸化水平,緩解AD病理、生理進程。本研究為尋找AD治療的新靶點提供了新的線索和思路。

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