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干擾PTX3表達對甲狀腺癌細胞TPC-1增殖、侵襲及TLR4/NF-κB通路蛋白表達的影響

2020-05-21 04:06:44路慧彬
鄭州大學學報(醫學版) 2020年3期
關鍵詞:信號水平檢測

程 遠,向 森,路慧彬

1)駐馬店市中心醫院內分泌科 河南駐馬店 463000 2)駐馬店市中心醫院腫瘤一科 河南駐馬店 463000 3)鄭州大學第一附屬醫院介入科 鄭州 450052

甲狀腺癌發病率與地區、種族、性別有一定關系;女性發病較多,男女發病比例為1∶(2~4);任何年齡均可發病,但以青壯年多見[1-2]。Pentraxin 3(PTX3)是一種進化保守的模式識別分子,是先天免疫的重要組成部分[3],其表達受多種信號通路的調控,如NF-κB、JNK和PI3K/Akt信號通路[4]。PTX3參與癌癥的發生和發展,已被視為一種反映癌癥進展的標志[5-6]。然而,目前對PTX3在甲狀腺癌中的作用尚未形成定論。TLR4/NF-κB信號通路是主要的炎癥途徑之一。Toll樣受體(TLR)是一類天然免疫受體,其適度表達維持了機體的防御功能,在抵抗和清除病原微生物、維持機體免疫系統的穩定狀態方面具有重要意義[7-8]。TLR4的激活可誘導促炎因子的生成,從而引發自身免疫性疾病或炎癥性疾病[9]。NF-κB能夠調節自身免疫性疾病、慢性炎癥和多種惡性腫瘤的疾病過程[10-11]。本探究利用si-PTX3干擾甲狀腺癌細胞TPC-1中PTX3的表達,觀察TPC-1細胞增殖、侵襲能力,以及炎癥因子IL-6、NO和TNF-α水平的變化,探討PTX3與甲狀腺癌的關系,為甲狀腺癌的診斷和治療提供新思路。

1 對象與方法

1.1甲狀腺癌組織中PTX3表達的檢測

1.1.1 標本來源 收集2015年6月至2018年12月我院收治的甲狀腺乳頭狀腺癌患者32例,留取患者腫瘤組織標本及距離腫瘤組織3~6 cm的癌旁正常組織(均經病理證實)。

1.1.2 組織中PTX3 mRNA的檢測 采用實時熒光定量PCR檢測組織中PTX3 mRNA表達水平。RNA提取試劑盒、反轉錄試劑盒、PCR試劑盒購自北京全式金生物技術有限公司,引物由北京擎科生物技術有限公司合成。PTX3正向引物序列 5’-CAT TCTCACTCGACACACGAT-3’,反向5’-GCCGAG GCGTTGACCTAGAGC-3’。內參GAPDH正向引物序列5’-GGAGCGAGATCCCTCCAAAAT-3’,反向5’-GGCTGTTGTCATACTTCTCATGG-3’。細胞裂解液購自陜西科源生物科技有限公司。將待測組織研磨成粉末狀,加入裂解液混合均勻,30 min后離心取上清;提取總RNA,經反轉錄得cDNA;以cDNA為模板,進行熒光定量PCR。反應條件為:95 ℃ 10 min;95 ℃ 20 s,60 ℃ 1 min,35個循環。采用2-ΔΔCt法計算PTX3 mRNA表達水平。

1.1.3 組織中PTX3蛋白的檢測 采用Western blot法檢測組織中PTX3蛋白的表達。PTX3一抗、內參GAPDH一抗、HRP標記的二抗均購自北京索萊寶生物科技有限公司。將待測組織研磨成粉末狀,加入裂解液混合均勻,30 min后離心提取總蛋白,4 ℃12 000×g離心15 min,收集上清,BCA法測定蛋白濃度。取50 μg蛋白上樣進行SDS-PAGE,電轉移至PVDF膜上,加50 g/L脫脂奶粉封閉液3 mL室溫條件下于搖床上封閉1 h,TBST溶液清洗膜10 min×3次;加入一抗(1∶500)4 ℃孵育過夜,回收一抗;TBST洗膜10 min×3次;加入HRP標記的二抗(1∶2 000)室溫孵育1 h;TBST洗膜10 min×3次。最后,取適量發光液(A和B液等體積混勻)孵育膜3 min,于凝膠成像系統中曝光,用Quantity-One軟件分析蛋白表達水平。目的蛋白表達水平=目的蛋白條帶灰度值/內參GAPDH條帶灰度值。

1.2TPC-1細胞來源及分組甲狀腺癌細胞TPC-1來源于中國科學院細胞庫;DMEM培養基和胎牛血清購自北京索萊寶生物科技有限公司。將TPC-1細胞用含有體積分數10%胎牛血清的DMEM細胞培養液,于37 ℃、體積分數5% CO2培養箱中培養,當達到60%~70%融合時用2.5 g/L胰酶消化處理,以1∶3的比例進行傳代。將TPC-1細胞以1×105個/孔的密度接種于6孔培養板,細胞約鋪滿培養板70%時,用無血清培養基培養24 h。然后分3組處理,si-PTX3組和si-NC組脂質體法轉染si-PTX3或對照si-NC(北京擎科生物科技有限公司),空白對照組不轉染。脂質體來源于北京索萊寶生物科技有限公司。37 ℃培養4~6 h后,將無血清培養基更換為完全培養基繼續培養24 h。利用實時熒光定量PCR和Western blot法檢測3組細胞中PTX3 mRNA和蛋白表達水平(方法同前),以判定si-PTX3的干擾效率。

1.33組TPC-1細胞凋亡的檢測收集3組細胞,離心并重懸于結合緩沖液中,加入5 μL的Annexin V-FITC輕輕吹打混勻,再加入5 μL的PI輕輕吹打混勻,室溫下暗中溫育5~15 min,然后使用FACSCalibur流式細胞儀進行分析。實驗重復3次。Annexin V-FITC/PI試劑盒購自北京索萊寶生物科技有限公司。

1.43組TPC-1細胞增殖的檢測將3組細胞以1×105個/孔的密度接種在96孔板中,于37 ℃、體積分數5% CO2培養箱中培養24 h;BRDU法檢測細胞增殖,按試劑說明操作。試劑來源于北京索萊寶生物科技有限公司。細胞增殖率=(1-實驗組細胞數/空白對照組細胞數)×100%。

1.53組TPC-1細胞侵襲能力的檢測將3組細胞以1×105個/孔接種于6孔板中,于37 ℃、體積分數5% CO2培養箱中培養24 h;消化、離心,用無血清培養基稀釋成2×104個/mL的細胞懸液。按照200 μL/孔將細胞懸液加入Transwell小室上室,同時在下室加入10%TBS和500 μL培養基,于37 ℃、體積分數5% CO2培養箱中培養。24 h后取出小室,吸去上室中的液體,用PBS清洗3次,用棉棒在上室中輕輕轉動,吸干水分并擦去膜內側的細胞;在上室中加入結晶紫染液,5 min后回收染液,用流水緩緩沖洗,再次用棉棒吸干水分;于正置顯微鏡下拍照;在100倍視野下計數3個視野的侵襲細胞數。細胞侵襲率=(1-實驗組細胞數/空白對照組細胞數)×100%。

1.63組細胞中Caspase-3、MMP-1、磷酸化TLR4(p-TLR4)、p-P65和 NF-κB 蛋白的檢測收集3組細胞,采用Western blot法檢測凋亡相關蛋白Caspase-3,侵襲相關蛋白MMP-1,以及TLR4/NF-κB信號通路蛋白p-TLR4、p-P65和NF-κB的表達情況,以GAPDH為內參,具體操作同前。抗體均購自北京索萊寶生物科技有限公司。Caspase-3、p-TLR4、p-P65一抗稀釋度為1∶1 000,MMP-1和NF-κB一抗稀釋度為1∶800。

1.73組細胞中IL-6、NO和TNF-α水平的檢測收集3組細胞,按照ELISA試劑盒(北京索萊寶生物科技有限公司)指導說明操作,檢測細胞中IL-6、NO和TNF-α水平。

1.8統計學處理采用SPSS 20.0對數據進行分析。甲狀腺癌和癌旁正常組織中PTX3 mRNA和蛋白表達水平的比較采用配對t檢驗;2組細胞增殖率、侵襲率的比較采用兩獨立樣本t檢驗;3組細胞凋亡率,Caspase-3、MMP-1、p-TLR4、p-P65和NF-κB蛋白表達水平及細胞中IL-6、NO和TNF-α水平的比較采用單因素方差分析,組間比較采用LSD-t檢驗。檢驗水準α=0.05。

2 結果

2.1甲狀腺癌組織中PTX3的表達甲狀腺癌組織中PTX3 mRNA和蛋白的表達水平均高于癌旁正常組織,見表1。

2.23組TPC-1細胞中PTX3mRNA和蛋白表達水平的比較見表2。si-PTX3組細胞中PTX3 mRNA和蛋白表達水平低于空白對照組和si-NC組,提示si-PTX3可成功干擾TPC-1細胞中PTX3的表達。

表1 甲狀腺癌和癌旁正常組織中PTX3 mRNA和蛋白表達水平的比較

表2 3組TPC-1細胞中PTX3 mRNA和蛋白表達水平的比較

*:與空白對照組和si-NC組比較,P<0.05

2.33組TPC-1細胞增殖、凋亡和侵襲能力的比較見圖1、表3和圖2、表4。與空白對照組或si-NC組相比,si-PTX3組細胞增殖率和侵襲率降低,凋亡率升高(P<0.05);細胞凋亡蛋白Caspase-3表達升高,而侵襲相關蛋白MMP-1表達降低(P<0.05)。

圖1 3組TPC-1細胞BRDU染色(上)和侵襲實驗(下)結果

組別n增殖率/%凋亡率/%侵襲率/%空白對照組3-5.0±0.2-si-NC組355±44.5±0.148±2si-PTX3組322±215.0±1.0*25±1t/F344.850300.7101 037.400P<0.001<0.001<0.001

*:與空白對照組和si-NC組比較,P<0.05

圖2 3組TPC-1細胞中Caspase-3和MMP-1蛋白的表達

組別nCaspase-3 MMP-1空白對照組30.58±0.060.55±0.05si-NC組30.62±0.070.59±0.06si-PTX3組31.98±0.15*0.21±0.05*F184.41045.630P<0.001<0.001

*:與空白對照組和si-NC組比較,P<0.05

2.43組TPC-1細胞中TLR4/NF-κB信號通路蛋白表達的比較見圖3和表5。si-PTX3組細胞中p-TLR4和p-P65表達水平低于空白對照組和si-NC組;3組NF-κB蛋白表達差異無統計學意義。

2.53組TPC-1細胞中促炎細胞因子水平的比較si-PTX3組細胞中IL-6、NO和TNF-α水平較空白對照組和si-NC組降低,見表6。

圖3 3組TPC-1細胞中TLR4/NF-κB信號通路蛋白的表達

表5 3組TPC-1細胞中TLR4/NF-κB信號通路蛋白表達的比較

*:與空白對照組和si-NC組比較,P<0.05

表6 3組TPC-1細胞中促炎細胞因子水平的比較

*:與空白對照組和si-RNA組比較,P<0.05

3 討論

甲狀腺癌約占全身惡性腫瘤的1%;除髓樣癌外,絕大部分甲狀腺癌起源于濾泡上皮細胞[12]。研究[5-6,13-15]發現,PTX3參與癌癥的發生和發展過程,其在肺癌、胰腺癌、膠質瘤和乳腺癌等多種腫瘤組織中表達均顯著增加,與腫瘤的分化程度相關。PTX3也是炎癥反應的效應因子,在炎癥條件下可以激活效應器,是先天免疫的重要組成[7]。因此,PTX3可能是腫瘤相關炎癥和惡性腫瘤的標志物[16]。TLR4是一種天然免疫受體。近年來,TLR4/NF-κB信號通路在腫瘤炎癥反應中的作用逐漸引起人們的重視。Tang等[17]報道,沉默PCSK9可以抑制TLR4/NF-κB信號通路,進而抑制炎癥因子的水平,從而抑制胃癌的進展。Yan等[18]報道,miR-223可以抑制TLR4/NF-κB信號通路,進而抑制肺癌細胞的增殖活性和遷移能力,抑制肺癌的進一步惡化。

本研究發現,甲狀腺癌組織中PTX3 mRNA和蛋白表達水平均高于癌旁正常組織。干擾PTX3可抑制甲狀腺癌細胞TPC-1的增殖活性和侵襲能力,促進細胞凋亡。進一步的研究結果表明si-PTX3可顯著抑制TPC-1細胞中TLR4/NF-κB信號通路蛋白的表達及炎癥因子水平。以上結果表明PTX3可能通過激活TLR4/NF-κB信號通路,誘導炎癥反應;促進甲狀腺癌細胞TPC-1的增殖活性和侵襲能力,抑制其凋亡。

綜上所述,本研究證明PTX3可能通過激活TLR4/NF-κB信號通路,促進甲狀腺癌細胞TPC-1的增殖和侵襲,PTX3有可能成為狀腺癌治療的新靶點。

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