賀自克,王上增,沈錦濤
(河南省中醫院關節科,河南鄭州450000)
膝骨性關節炎屬于退行性骨關節疾病,在中老年人中患病率較高,嚴重影響患者生活,給家庭、社會帶來一定的負擔[1]。目前國內外學者主要從細胞因子、基質金屬蛋白酶、免疫反應等方面探究膝骨關節炎發病機制,然而尚未有統一定論。近年來發現Hedgehog通路在膝骨關節炎的發生中扮演重要角色,研究顯示Hedgehog通路激活后可誘導大鼠關節軟骨損傷,而抑制Hedgehog通路活化則對軟骨具有保護作用,推測Hedgehog通路在軟骨退變中發揮重要作用[2]。鎮痛藥及非甾體藥物是目前治療膝骨關節炎常用的方法,但僅能緩解關節炎的發展,不能達到治愈的目的,因此減輕膝骨關節炎的軟骨退變,誘導損傷軟骨修復,是治療膝骨關節炎的關鍵[3]。補腎活血方(Bushen-Huoxue prescription,BSHX)主要由熟地黃、丹參等中藥組成,具有活血、鎮痛、消炎、行氣散寒等功效,在骨關節炎治療中應用較多[4],然而具體作用機制目前尚不明確。本研究通過復制膝骨性關節炎動物模型,并給予BSHX干預,旨在探究BSHX對膝骨關節炎退變軟骨的保護作用及可能的作用機制。
30只雄性新西蘭兔,SPF級,10周齡,體質量(2.0±0.2)kg,購于河南省康華藥業股份有限公司,許可證號為SYXK(豫)2017-0015,動物飼養室溫為20~22℃,空氣濕度為40%~60%,飼養1周后造模。
補腎活血方包含:桑寄生、積血、熟地黃、龜板、黃芪、白芍各30 g,阿膠、懷牛膝、補骨脂各20 g,地龍15 g,丹參、仙鶴草、當歸各10 g。加水浸泡上述藥材,溫火煎煮1 h,過濾后加水再次煎煮30 min,收集兩次藥液,濃縮后依據人與兔體表面積換算法,給藥劑量為1.86 g/kg(生藥量)[5]。
Hedgehog通路激活劑 SAG(912545-86-9)購于MCE;TRIzol試劑(DP424)購于北京天根生化科技有限公司;BCA檢測試劑盒(SP900)、RIPA裂解液(PP1901)、免疫組化檢測試劑盒(PV6000)、HE染色試劑盒(C0105)及 TNF-α(PT516)和IL-Iβ(PI130)檢測試劑盒均購于碧云天生物技術研究所;番紅O染色試劑盒(G1371)購于北京索萊寶有限公司;兔抗Shh抗體(SAB2108581)、Ptch1抗體(SAB2501613)、Smo抗體(SAB1412475)、Gli1抗體(HPA068903)和β-actin抗體(A5316)均購于Sigma-Aldrich;兔抗基質金屬蛋白酶13(matrix metalloprotein-13,MMP-13)抗體(ab237604)和II型膠原(collagen type II,Col-II)抗體(ab198200)購于Abcam。2500凝膠成像儀和EPS300垂直電泳儀購自于Bio-Rad。
3.1 動物模型制備 從30只新西蘭兔中隨機抽取6只作為對照(control)組,其余24只參照Hulth法[6]制備膝骨關節炎模型,模型組兔仰臥手術臺,麻醉后去除右肢后方膝關節內側絨毛,于髕骨內制做縱向1 cm切口,逐層剝離后暴露內側副韌帶并剪斷,切開關節囊將內側半月板完全切除,同時將前后交叉韌帶剪斷,用生理鹽水沖洗關節,消毒后縫合切口,采用無菌敷料加壓固定。造模后連續3天注射青霉素(8×104U/d),隔天換藥,2周后拆線,兔出現典型膝骨性關節炎表現(關節腫脹,關節活動度降低,皮溫升高),則視為模型成功。control組兔僅進行麻醉,切開膝關節皮膚,不做其它處理。
3.2 動物分組與給藥 造模8周后,將24只模型兔分為模型組(model組)、BSHX組、SAG組和BSHX+SAG組,每組6只。BSHX組:灌胃BSHX,劑量為1.86 g/kg;SAG組:灌胃SAG溶液,劑量為20 mg/kg[7]。BSHX+SAG組:灌胃 1.86 g/kgBSHX與 20 mg/kg SAG。Control組和model組灌胃等量生理鹽水。各組均連續給藥8周。
3.3 兔膝關節寬度則定 末次給藥結束后,由兩名工作人員用標尺測量各組兔膝關節寬度,記錄數據,重復測量3次,求取平均值。
3.4 膝關節大體情況觀察 各組兔處死后獲得右膝關節,觀察軟骨表面顏色、光滑度、光澤、潰瘍等變化,依據Pelletier評分[8]對軟骨退變情況進行評定;參照軟骨分級標準[9],將軟骨表面狀態分為4個等級,等級越高代表軟骨退變越嚴重。
3.5 軟骨組織病理形態學觀察 截取脛骨近端1/4處到股骨遠端1/4處膝關節,一部分膝關節軟骨組織置于-80℃保存,另一部分膝關節軟骨組織10%多聚甲醛固定。取出固定軟骨組織,經脫鈣、水合、透明、石蠟包埋后制備膝關節軟骨組織石蠟切片,厚度為5 μm,參照試劑盒進行HE染色和番紅O染色。依據Mankin評分[10]對兔膝關節軟骨組織細胞、潮線、基質染色等情況進行評定,評分為0~13分,評分越高,代表軟骨組織退變越嚴重。
3.6 酶聯免疫法檢測軟骨組織勻漿中TNF-α和IL-1β水平 從-80℃冰箱取出軟骨組織,稱取1 mg,添加9 mg/L生理鹽水,在勻漿器內制備組織勻漿液,5 000×g離心10 min,收集上清,采用酶聯免疫檢測試劑盒對TNF-α和IL-1β水平進行測定。
3.7 免疫組化法檢測軟骨組織中MMP-13和Col-II蛋白表達 將石蠟切片烘烤后,經脫蠟、水合后在熱檸檬酸鹽緩沖液中修復2 min,添加3%過氧化氫室溫下反應15 min,添加山羊血清封閉抗原后,室溫下加入I抗(1∶500稀釋),4℃冰箱中孵育16~18 h,添加II抗(1∶5 000稀釋)室溫下孵育1 h,DAB顯色后,水洗添加蘇木素染色、溫水返藍,切片經脫水、透明、中性樹脂封片后在顯微鏡下觀察蛋白染色情況,MMP-13和Col-II主要定位在細胞質內,細胞質內出現棕黃色或棕褐色視為陽性染色細胞。采用ImageJ軟件定量評估陽性表達率,陽性表達率(%)=細胞陽性數/細胞總數×100%。
3.8 Western blot法檢測軟骨組織中Shh、Ptch1、Smo和Gli1蛋白表達 采用RIPA裂解液提取膝關節軟骨組織全蛋白,BCA法檢測總蛋白濃度,經SDSPAGE后,將目的蛋白轉移至PVDF膜上,用脫脂奶粉封閉膜后,I抗(抗Shh、Ptch1、Smo和Gli1抗體,均1∶500稀釋)4℃孵育膜過夜,用II抗室溫孵育膜1 h,經ECL發光液顯色后,在凝膠成像儀中采集保存圖像,以β-actin為內參照,利用ImageJ軟件分析蛋白相對表達量。
本研究數據采用SPSS 22.0軟件進行分析。計量資料以均數±標準差(mean±SD)描述,多組間均數比較采用單因素方差分析,進一步兩兩對比采用SNK-q檢驗。當P<0.05時認為差異有統計學意義。
肉眼觀察可見,control組兔膝關節大體正常,未出現畸形、腫脹等;model組兔膝關節出現腫脹,皮膚充血,行走出現輕微跛行;經BSHX治療后,膝關節腫脹和皮膚充血均得到一定緩解,無明顯跛行;SAG干預后兔膝關節腫脹、充血更為嚴重,出現較明顯跛行;BSHX+SAG組兔膝關節得到緩解,但效果不顯著。與control組相比,model組膝關節寬度顯著增大(P<0.05);與model組相比,BSHX組膝關節寬度顯著減小,SAG組膝關節寬度顯著增大(P<0.05);BSHX+SAG組膝關節寬度顯著小于SAG組(P<0.05),見表1。

表1 各組兔膝關節寬度對比Table 1.Comparison of knee joint swelling in rabbits of each group(Mean±SD.n=6)
與control組相比,model組軟骨退變評分和軟骨分級顯著升高(P<0.05);與model組相比,BSHX組軟骨退變評分和軟骨分級顯著降低,SAG組軟骨退變評分和軟骨分級顯著升高(P<0.05);BSHX+SAG組軟骨退變評分和軟骨分級顯著低于SAG組(P<0.05),見表2。

表2 各組兔軟骨退變情況比較Table 2.Comparison of cartilage degeneration in rabbits in each group(Mean±SD.n=6)
HE和番紅O染色均顯示,control組軟骨組織結構清晰,骨膜完整光滑,細胞排列整齊,潮線完整清晰,染色均勻;model組軟骨組織結構不清晰,細胞排列紊亂,體積增大,潮線不清晰,細胞質基質染色變淺;經BSHX干預后軟骨組織及細胞形態均得到一定改善,細胞質基質染色變深;SAG組軟骨表層損傷較嚴重,細胞成簇增殖,形態不規則,潮線不完整或消失,細胞質基質染色不均;BSHX+SAG組軟骨組織及細胞形態損傷有所減輕,但變化不顯著,見圖1、2。

Figure 1.The pathological changes of cartilage tissues observed by HE staining(scale bar=50 μm).The articular cartilage is indicated by the box.A:control group;B:model group;C:BSHX group;D:SAG group;E:BSHX+SAG group.圖1 HE染色觀察軟骨組織病理學變化
與control組相比,model組Mankin評分顯著升高(P<0.05);與model組相比,BSHX組Mankin評分顯著降低,SAG組Mankin評分顯著升高(P<0.05);BSHX+SAG組Mankin評分顯著低于SAG組(P<0.05),見表3。

Figure 2.The pathological changes of cartilage tissues observed by safranine O staining(scale bar=50 μm).A:control group;B:model group;C:BSHX group;D:SAG group;E:BSHX+SAG group.圖2 番紅O染色觀察軟骨組織病理形態學

表3 各組軟骨組織Mankin評分比較Table 3.Comparison of Mankin score of cartilage tissue in each group(Mean±SD.n=6)
與control組相比,model組軟骨組織中TNF-α和IL-1β 水平顯著升高(P<0.05);與 model組相比,BSHX組軟骨組織中TNF-α和IL-1β水平顯著降低,SAG組軟骨組織中TNF-α和IL-1β水平顯著升高(P<0.05);BSHX+SAG組軟骨組織中TNF-α和IL-1β水平顯著低于SAG組(P<0.05),見表4。

表4 各組軟骨組織中TNF-α和IL-1β水平比較Table 4.Comparison of TNF-α and IL-1β levels in cartilage tissue of each group(ng/L.Mean±SD.n=6)
與control組相比,model組軟骨組織中MMP-13陽性表達率顯著升高,而Col-II陽性表達率顯著降低(P<0.05);與 model組相比,BSHX 組軟骨組織中MMP-13陽性表達率顯著降低,Col-II陽性表達率顯著升高,SAG組軟骨組織中MMP-13陽性表達率顯著升高,Col-II陽性表達率顯著降低(P<0.05);BSHX+SAG組軟骨組織中MMP-13陽性表達率顯著低于SAG組,Col-II陽性表達率顯著高于SAG組(P<0.05),見圖3及表5。

Figure 3.Immunohistochemical staining for MMP-13 and Col-II expression in cartilage tissues(SP method,scale bar=100 μm).A:control group;B:model group;C:BSHX group;D:SAG group;E:BSHX+SAG group.圖3 免疫組化檢測軟骨組織中MMP-13和Col-II的表達

表5 各組軟骨組織MMP-13和Col-II陽性表達率的比較Table 5.Comparison of positive expression rates of MMP-13 and Col-II in cartilage tissue of each group(%.Mean±SD.n=6)
與control組相比,model組軟骨組織中Shh、Ptch1、Smo和Gli1蛋白表達顯著升高(P<0.05);與model組相比,BSHX組軟骨組織中Shh、Ptch1、Smo和Gli1蛋白表達顯著降低,SAG組軟骨組織中Shh、Ptch1、Smo和Gli1蛋白表達顯著升高(P<0.05);BSHX+SAG組軟骨組織中Shh、Ptch1、Smo和Gli1蛋白表達顯著低于SAG組(P<0.05),見圖4及表6。

Figure 4.The protein expression of Shh,Ptch1,Smo and Gli1 in cartilage tissues detected by Western blot.A:control group;B:model group;C:BSHX group;D:SAG group;E:BSHX+SAG group.圖4 Western blot檢測軟骨組織中Shh、Ptch1、Smo和Gli1蛋白表達

表6 各組軟骨組織中Shh、Ptch1、Smo和Gli1蛋白表達比較Table 6 Comparison of protein expression of Shh,Ptch1,Smo and Gli1 in cartilage tissue of each group(Mean±SD.n=6)
膝骨關節炎是以軟骨變性、關節周圍骨質增生為特征的慢性關節炎癥性疾病[11]。本研究通過采用Hulth手術造模法復制兔膝骨關節炎模型,手術切除膝關節前交叉韌帶、關節內側副韌帶等造成關節力學失穩,誘發膝骨關節炎,與臨床發病機制相似[12]。本研究結果表明,與control組相比,model組兔出現膝關節腫脹、寬度增加、活動減小等膝骨關節炎典型特征。關節軟骨退變為膝骨關節炎的主要病理特征,關節負重前側軟骨發生糜爛后,軟骨細胞密度增高,隨后軟骨結構紊亂,潮線消失或上移。本研究顯示,model組軟骨退變評分和軟骨分級顯著升高,HE染色觀察到軟骨表面不平滑、粗糙,出現一定潰瘍,結構不清晰,細胞排列紊亂,體積增大,潮線不清晰,細胞質基質染色變淺,Mankin評分顯著升高,與以往膝關節炎動物病理檢測結果相似[13],提示兔膝骨關節炎模型制備成功。
膝骨關節炎在中醫中屬于骨痹、痹癥、瘀證等范疇,中醫認為膝部受風寒后滯于患處,長久凝集使筋脈損傷、痙攣,造成關節功能障礙,此外體虛、肝腎功能較弱會影響機體氣血運行,造成氣凝滯于關節,因此治療該病的關鍵在于補腎活血[14]。補腎活血方主要由桑寄生、積血、熟地黃、龜板等組成,該方中熟地黃具有滋陰補血功效,丹參具有活血消腫的功效,整方具有補腎活血之功效。研究表明,BSHX能夠提高骨性關節炎治療效果,顯著減輕患者關節疼痛程度[15]。本研究表明,與model組相比,BSHX組兔膝關節退變評分、軟骨分級降低,HE染色顯示關節軟骨組織、細胞形態均得到一定緩解,細胞質基質染色變均勻,提示BSHX可減輕兔膝關節炎軟骨損傷,延緩關節軟骨退變,然而具體機制尚不清楚。
關節軟骨細胞微環境由多型膠原、關節液及細胞外基質組成,其中Col-II是含量最高的膠原之一,正常生理狀態下軟骨細胞主要分泌Col-II,I型膠原(collagen type I,Col-I)分泌極少,而軟骨受損后,細胞微環境發生變化,會導致膠原蛋白變化,造成Col-II含量降低,Col-I含量升高,進而改變軟骨結構[16]。本研究顯示model組Col-II蛋白陽性表達率顯著降低,給予BSHX后Col-II蛋白陽性率明顯升高,提示膝骨關節炎兔軟骨組織結構發生異常,BSHX可以通過上調Col-II含量而促進軟骨修復。炎癥因子與膝骨關節炎的發生、發展密切相關。有研究證實,TNF-α和IL-Iβ活化后放大炎癥反應,降低軟骨組織中Col-II含量,誘導基質中MMP-13的釋放,降解完整的Col-II[17]。本研究顯示,model組 TNF-α和IL-Iβ 水平及MMP-13陽性表達率升高,給予BSHX后TNF-α和IL-Iβ水平及MMP-13陽性表達率降低,提示BSHX可能通過減弱軟骨組織炎癥反應,維持細胞外基質膠原平衡,發揮對軟骨組織的保護作用。
Hedgehog通路與軟骨組織的發育、增殖、分化等密切相關。該通路主要由4個部分組成,包括:Hh蛋白家族(Shh、Dhh和Ihh),跨膜受體Ptch1和Smo,轉錄因子Gli1。正常情況下Ptch1與Smo相互作用后抑制Smo活性,當Hh蛋白與Ptch1結合后能夠解除Ptch1對Smo的抑制,引發通路活化,激活轉錄因子Gli1進入細胞核調節下游靶基因轉錄[18]。既往研究表明,Hedgehog通路異常激活與骨性關節炎的發生及軟骨損傷程度相關[19]。Thompson 等[20]的研究表明,Shh蛋白在正常人的軟骨中幾乎不表達,在軟骨損傷初期,該蛋白水平明顯升高。動物研究報道,TGF-β II型受體顯性負突變體小鼠軟骨組織中Shh蛋白表達升高,同時小鼠出現軟骨細胞肥大等與人骨關節炎損傷相似的表現[21]。Zhou等[22]通過動物研究表明,Hh通路蛋白表達越高,膝骨關節損傷越嚴重,而采用Hh信號通路抑制劑處理后大鼠軟骨損傷減輕。本研究顯示,與control組相比,model組Shh、Ptch1、Smo和Gli1蛋白表達顯著升高,給予BSHX干預后Shh、Ptch1、Smo和Gli1蛋白降低,推測BSHX可能通過抑制Hedgehog通路的活化,進而發揮對膝骨關節炎軟骨損傷的保護作用。為證實這一推測,本研究采用Hedgehog通路激活劑SAG處理兔模型組,其結果表明,SAG組膝關節軟骨損傷更嚴重,關節軟骨退變評分和Mankin病理評分進一步升高,TNF-α、IL-1β和MMP-13表達升高,Hedgehog通路蛋白表達升高;而給予SAG聯合BSHX處理后,兔膝關節軟骨損傷有所減輕,關節軟骨退變得到緩解,TNF-α、IL-1β和MMP-13表達降低,提示BSHX可通過抑制Hedgehog通路進而緩解膝骨關節炎兔軟骨退變,抑制軟骨細胞外基質膠原失衡,減弱炎癥反應,發揮對軟骨組織的保護作用。
綜上所述,補腎活血方可抑制Hedgehog通路活化,延緩膝骨關節軟骨退變,減弱關節炎癥反應,維持軟骨細胞外基質膠原平衡。這可能為膝骨關節炎治療提供新的思路。然而膝骨關節炎發生機制較復雜,補腎活血方具體通過Hedgehog通路下游哪些靶基因發揮作用,尚待后續深入探究。