基于金納米粒子粒徑變化的細菌檢測方法

許哲瑋，陳坤，胡長鷹,2*

1(暨南大學 包裝工程學院，廣東 珠海，519070)2(暨南大學 食品科學與工程系，廣東 廣州，510632) 3(華南理工大學 軟物質科學與技術高等研究院，廣東 廣州，510640)

目前因食品在生產、運輸以及銷售過程中受污染造成的食物中毒及傳染病造成了嚴重的公共衛生問題[1-2]。據世界衛生組織估計，世界上每年有6億人因食用受污染的食物患病，其中42萬人因此而喪命[3]。其中細菌總數是反映食品安全的指標之一，實現一類食品微生物的快速檢測對食品安全有重要意義。目前，平板計數法是細菌檢測的金標準，但該方法勞動密集且依賴于操作者的經驗[4]?；诰酆厦告準椒磻募毦鶧NA檢測同樣因假陽性以及檢測廣譜性問題而受到限制[5-6]。近年來，通過適配體[7-10]、抗生素[11-13]以及抗體[14-16]等對細菌或細菌代謝產物的特異性結合實現了細菌的快速靈敏檢測，其中部分方法對操作者經驗依賴性較小且能避免假陽性。

溶菌酶(lysozyme, LZM)是一種含有129個氨基酸殘基的堿性蛋白質[17-18]，其在食品保藏中有一定的應用[19-21]。通過對細胞壁中N-乙?；谒崤cN-乙?；咸前分g的β-1,4糖苷鍵水解[22-23]，LZM可以使不溶性肽聚糖轉化為可溶性糖肽，從而起到殺菌作用[24]。LZM蛋白質一級結構中大量的游離氨基使其帶有大量的正電荷，LZM與帶檸檬酸配體金納米粒子(gold nanoparticles, GNPs)之間的靜電作用可以使GNPs聚集從而發生比色變化。另一方面，革蘭氏陽性菌細胞壁與LZM的特異性結合可以屏蔽這一靜電作用。LZM對GNPs與目標微生物之間的競爭結合可以實現細菌的定量檢測。

比色法通過GNPs粒徑變化產生的顏色變化實現目標物質的定量[25]，但是目標物質與識別分子之間的結合常數過小將可能會導致GNPs的尺寸變化不夠明顯，檢測的靈敏度也將受到限制。激光光散射儀可通過粒子布朗運動引起的光強波動檢測粒子尺寸信息，目標物質濃度可通過與GNPs的流體力學半徑(Rh)之間的線性關系實現定量。本研究通過激光光散射儀以及紫外光譜建立了革蘭氏陽性菌的廣譜檢測方法，并且激光光散射儀法的檢測靈敏度相比紫外光譜法實現了一個數量級的提高。

1 材料與方法

1.1 實驗材料

1.1.1 實驗試劑

四氯金酸水合物、無水檸檬酸鈉、溶菌酶(來源于雞蛋白)、牛血清蛋白，上海阿拉丁生化科技股份有限公司；營養肉湯，北京索萊寶科技有限公司，實驗用水，實驗室自制一級水；塑料托盤，當地超市。

1.1.2 實驗菌種及培養基

大腸桿菌(ATCC8739)、金黃葡萄球菌(ATCC 6538)、單增李斯特菌(ATCC 19115)、枯草芽孢桿菌(ATCC 6633)試管斜面菌種，上海魯微技術有限公司；所用培養基為營養肉湯。

1.1.3 儀器與設備

UV-1800 紫外光譜，日本島津公司；BI-200SM 激光光散射儀，美國布魯克海文儀器公司；TEM 1400透射電子顯微鏡，日本JOEL公司。

1.2 實驗方法

1.2.1 GNPs合成

GNPs根據BASTUS等報道的方法合成[26]。將100 mL 5.94 mmol/L檸檬酸鈉水溶液加入燒瓶中，加熱并強力攪拌至溶液沸騰后，向溶液中加入 38 μL 2.94 mol/L四氯金酸水溶液，溶液顏色由無色變為藍色繼而變為紫紅色最終呈現紅色。繼續加熱反應15分鐘后停止加熱，待溶液冷卻后儲存于4 ℃冰箱。

制得的GNPs通過紫外-可見光(ultraviolet-visible，UV-Vis)光譜、激光光散射儀(dynamic light scattering，DLS)以及透射電子顯微鏡(transmission electron microscope，TEM)進行表征。

1.2.2 檢測條件優化

1.2.2.1 孵育時間

將500 μL制得的GNPs與50 μL 0.14 mg/mL的LZM水溶液混合，并用純水補充溶液體積至2 mL，并用UV-Vis光譜記錄523、600 nm處吸光值的變化。

1.2.2.2 孵育pH

基于1.2中所優化的檢測條件，將500 μL制得的GNPs與50 μL 0.14 mg/mL的LZM水溶液混合，分別用pH為5.0、6.0、7.0、8.0的10 mmol/L磷酸鹽緩沖液(phosphate buffer solution, PBS)補充體積至2 mL，孵育15 min后測試樣品400～800 nm的UV-Vis光譜。

1.2.2.3 孵育溫度

基于1.2中所優化的檢測條件，將500 μL制得的GNPs與50 μL 0.14 mg/mL的LZM水溶液混合，用pH為8.0的10 mmol/L PBS補充體積至2 mL。將溶液分別放置于30、35、40、45、50 ℃條件下孵育15 min后，測試樣品400～800 nm的UV-Vis光譜，信號強度計算如公式(1)所示：

(1)

式中：A600，A523分別代表樣品在600、523nm處的吸光值。

1.2.2.4LZM添加量

基于1.2中所優化的檢測條件，將500μL制得的GNPs分別與0～70μL0.14mg/mL的LZM水溶液混合，并用pH為8.0的10mmol/LPBS補充體積至2mL。溶液常溫下孵育15min后分別通過UV-Vis光譜以及DLS測試各樣品400～800nm的UV-Vis光譜和Rh。

1.2.3 檢測體系選擇性

大腸桿菌(Escherichiacoli,E.coli)，金黃色葡萄球菌(Staphylococcusaureus,S.aureus)、枯草芽孢桿菌(Bacillussubtilis,B.subtilis)以及單增李斯特菌(Listeriamonocytogenes,L.monocytogene)在37 ℃下用營養肉湯孵育17 h。所得菌液在3 000×g離心15 min后，除去上清液并重懸于pH為8.0的10 mmol/L PBS中，重復3次并最終控制菌液在波長為600 nm處的吸光值為1 (109CFU/mL)。后續實驗進一步稀釋以達到所需濃度。

基于文中所優化的檢測條件，取1 mL濃度為108CFU/mLE.coli、S.aureus、B.subtilis、L.monocytogene、0.05 mg/mL的牛血清蛋白(bovine serum albumin, BSA)，并以1 mL pH為8.0的PBS作為空白對照，依次加入40 μL 0.14 mg/mL的LZM溶液以及500 μL GNPs，并用pH為8.0的10 mmol/L PBS補充體積至2 mL。樣品常溫下孵育15 min后測試各樣品400～800 nm的UV-Vis光譜，測試結果通過公式(1)轉化為信號強度。對于通過DLS檢測的樣品Rh(信號強度)，除了LZM溶液添加量為20 μL以及樣品在測試前以0.22 μL醋酸纖維素濾膜過濾外，其余操作相同。所得信號強度通過公式(2)歸一化：

(2)

式中：In為歸一化后的信號強度；IB為測試樣品的信號強度；ICK為空白對照組的信號強度；IH為上述5組中信號強度的最大值。

1.2.4 線性關系建立

分別取1 mL細菌濃度在105～ 108CFU/mL的S.aureus，根據1.2.3所述的2種方法進行檢測。各細菌濃度重復3個平行樣。

1.2.5 真實體系檢測

為確定該體系在真實樣品檢測中的可行性及靈敏度，進行加標回收實驗。分別取1 mL濃度為107CFU/mL及108CFU/mL的S.aureus涂抹于塑料托盤表面5 cm×5 cm的矩形內，待菌液在常溫下干燥后，通過棉拭子取樣。用浸泡在pH為8.0的無菌10 mmol/L PBS中的棉拭子在接種有細菌的矩形范圍內來回涂抹10次，去除棉拭子木柄后將棉拭子放入含有10 mL pH為8.0的無菌PBS中。將液體搖勻后通過1.2.3所述的2種方法進行檢測，各細菌濃度重復3個平行樣并計算平均濃度、回收率及相對標準偏差(relative standard deviation, RSD)。

2 結果與分析

2.1 GNPs表征

如圖1所示，通過檸檬酸鈉還原法制得了直徑約為12 nm且單分散的GNPs。由于表面等離子體效應，GNPs的UV-Vis光譜在523 nm處有一吸收峰，這為后續生物傳感器的構建提供了良好的基礎。

A-GNPs TEM圖；B-GNPs粒徑分布；C-GNPs UV-Vis光譜圖1 GNPs表征Fig.1 Characterization of GNPs

2.2 GNPs-LZM競爭結合檢測體系可行性

LZM是一種堿性蛋白質，通過靜電作用可以使得帶有負電的GNPs發生聚集。由圖2可知，隨著LZM的添加，GNPs半徑逐漸增大，吸收峰由523 nm紅移到570 nm處；而單獨添加S.aureus并不能引起紫外吸收峰的紅移。當體系同時存在LZM和S.aureus時，由于細菌對LZM的電荷的屏蔽，GNPs的吸收峰無明顯紅移。這一結果證明該競爭結合體系可用于革蘭氏陽性細菌檢測。

A-GNPs UV-Vis吸收光譜；B-不同LZM添加量下GNPs粒徑圖2 檢測體系可行性Fig.2 Feasibility of detection system

2.3 檢測條件優化

對孵育時間、孵育pH、孵育溫度以及LZM添加量4個條件進行優化，實驗結果如圖3所示。吸光度在前3 min內快速變化并逐漸趨于平緩(圖3-A)，紫外吸收峰變化在pH為8.0的條件下最顯著(圖3-B)，孵育溫度對信號強度無明顯影響(圖3-C)。因此后續檢測條件設定為孵育時間15 min，體系pH=8.0，孵育溫度為常溫。

由于細菌所能結合的LZM數量有限，過多的LZM會導致體系檢測限過高。由圖3-D可知，LZM添加量為40 μL時吸收峰變化明顯且LZM添加量適中，因此后續UV-Vis光譜檢測中LZM的添加量設定為40 μL。DLS對GNPs的Rh變化表現出了更高的靈敏度，這一特點可以在產生足夠信號強度的同時減少LZM的添加量，因此DLS檢測中LZM的添加量設定為20 μL。

2.4 檢測體系選擇性

在真實環境中，革蘭氏陰性與陽性細菌可能同時存在，因此檢測體系需要在對目標細菌有明顯響應的同時實現對非目標細菌盡可能小的響應以實現選擇性檢測。2種檢測方式對革蘭氏陰性以及陽性細菌檢測的歸一化信號強度如圖4所示。相比于革蘭氏陰性菌，2種檢測方式均體現出對革蘭氏陽性菌良好的選擇性響應，并且能抵抗體系中存在的蛋白質干擾，實現革蘭氏陽性菌的廣譜檢測。

A-孵育時間;B-孵育pH;C-孵育溫度;D-不同LZM添加量下GNPs UV-Vis光譜;E-不同LZM添加量下GNPs Rh圖3 檢測條件優化Fig.3 Optimization of detect condition

2.5 GNPs-LZM競爭結合檢測體系標準曲線的建立

選取S.aureus用于建立標準曲線，通過UV-Vis光譜進行檢測的回歸方程為Y=0.69X-3.70，相關系數R2=0.993，定量限為1.26×107CFU/mL。通過DLS進行檢測的回歸方程為Y=-2.28X+30.08，相關系數R2=0.954，定量限為6.87×105CFU/mL。

A-UV-Vis光譜檢測法選擇性，B-DLS檢測法選擇性圖4 兩種檢測方法的選擇性Fig.4 Selectivity of the two detections system

2.6 GNPs-LZM競爭結合檢測體系在真實樣品中的檢測

為評估該體系檢測真實樣品的可行性及靈敏度，選取S.aureus作為代表，通過1.2.3所述的檢測條件進行檢測，即進行加標回收實驗。其中1、3樣品的加標細菌濃度為108CFU/mL，2、4樣品的加標細菌濃度為107CFU/mL，1、2樣品通過DLS進行檢測，3、4通過UV-Vis光譜檢測，檢測結果如表1所示。從實驗結果可以看出，2種檢測方法均能實現真實樣品中細菌的檢測，且DLS法體現出了更高的靈敏度。這一結果也證明了通過DLS進行定量對實現更靈敏的檢測存在價值。相比于平板計數法24 h及以上的培養時間，該方法僅需15 min孵育時間，且單個樣品檢測可在30 min內完成，能夠實現革蘭氏陽性菌總數的快速檢測。

表1 GNPs-LZM競爭結合檢測體系在真實樣品中對S. aureus的檢測Table 1 S. aureus detection in real sample

注：-表示通過該方法未檢出

3 結論

本研究通過LZM對革蘭氏陽性菌和GNPs的競爭結合建立了革蘭氏陽性菌的廣譜檢測方法。通過UV-Vis光譜優化了孵育時間、孵育pH以及孵育溫度，并分別通過UV-Vis光譜以及DLS兩種方法實現革蘭氏陽性菌的定量檢測。相比紫外光譜檢測的定量限(1.26×107CFU/mL)，DLS體現出對GNPs尺寸變化更高的敏感性，并實現定量限一個數量級的降低(6.87×105CFU/mL)。與革蘭氏陰性菌相比，2種檢測方式對革蘭氏陽性菌均體現出良好的選擇性響應，并能用于真實體系的檢測。相比于紫外光譜，DLS對粒子尺寸變化體現出了更高的敏感性，這一策略有助于提高比色法檢測的靈敏度。此外，細菌總數是反映食品新鮮程度的指標之一，該方法可實現革蘭氏陽性菌的定量檢測，對食品安全有一定意義。