陸巖,陸丹丹,劉瑞月,肖佳,宮曉范,甄宗圓 *
1. 安徽科技學院食品藥品學院(鳳陽 233100);2. 棗莊學院食品科學與制藥工程學院(棗莊 277160)
蛹蟲草屬于子囊菌門中的蟲草屬,亦名北蟲草[1],是鱗翅目昆蟲的蛹被真菌寄生而形成復(fù)合體包括子座和菌核,在中國華北、西南等地區(qū)都有生長[2]。蛹蟲草中含有多種生物有效成分,如蟲草多糖和蟲草素等,人工蛹蟲草質(zhì)量可以用蟲草素含量衡量[3-4]。蟲草素具有多種藥理作用,如抗氧化[5]、抗癌[6-8]等。外國學者通過研究發(fā)現(xiàn)蟲草素能有效降低大鼠磨損模型的黏附力,其在醫(yī)藥及保健品行業(yè)有廣泛應(yīng)用[9-10],所以提高其提取率亟待解決。為提高其產(chǎn)率,在培養(yǎng)條件上加以優(yōu)化[11],研究表明低氧條件更適合于液體表面培養(yǎng)中蟲草素的生產(chǎn)[12],也有研究在生物合成途徑分析基礎(chǔ)上,通過代謝調(diào)控提高蟲草素和蟲草酸的產(chǎn)量[13]。另外,溶解性較好的蟲草素制劑被應(yīng)用于臨床[14],蟲草素納米粒還可作為蟲草素緩釋劑的載體,為治療肺癌提供一種有效材料[8]。
蟲草素提取方法有加速溶劑萃取法、微波輔助乙醇/硫酸銨雙水相提取等[15-16],但關(guān)于采用纖維素酶提高蛹蟲草中蟲草素得率的報道很少見。酶解技術(shù)是利用酶能降解細胞壁中的一些物質(zhì),破壞植物細胞的細胞壁,使植物細胞壁中的生物活性物質(zhì)流出。以蛹蟲草為原料,采用纖維素酶輔助單因素試驗,研究提取時間、酶添加量、pH、提取溫度對蟲草素提取率的影響,在此基礎(chǔ)上,通過響應(yīng)面分析4種因素及其相互作用對蟲草素含量的影響,最終得到蟲草素的最佳提取方法,為提取蛹蟲草中蟲草素的工業(yè)化生產(chǎn)提供依據(jù)。
蛹蟲草(福建省古田縣大豐工貿(mào)有限公司),罐裝密封備用、蟲草素標準品(CAS 73-03-0,上海聯(lián)邁生物工程有限公司)、維素酶(≥50 000 U/g,產(chǎn)品編號RY01008,江蘇銳陽生物科技有限公司);甲醇(色譜純);其余化學試劑(分析純);蒸餾水和超純水(18.2 MΩ·cm、25 ℃)。
Agilent 1290超高液相色譜儀,色譜柱Agilent ZORBAX Eclipse Plus C18(3.0 mm×150 mm,3.5 μm,美國安捷倫公司);KS-300 Ei型超聲波清洗器(寧波海曙科生超聲設(shè)備有限公司);YP 100001和FA 1104電子天平(上海越平科學儀器有限公司);HH-S6數(shù)顯恒溫水浴鍋(常州普天儀器制造有限公司);PHS-3C型PH計(上海儀電科學儀器股份有限公司);DUG-92464型電熱恒溫鼓風干燥箱(上海精宏實驗設(shè)備有限公司);WHY-2型數(shù)顯水浴恒溫振蕩(常州普天儀器制造有限公司);DFY-250型250 g搖擺式高速萬能粉碎機(溫嶺市林大機械有限公司);SHZ-DⅢ型循環(huán)水真空泵(鞏義市予華儀器有限責任公司)。
1.3.1 蟲草素提取工藝流程及操作要點
蛹蟲草子實體→干燥→粉碎→稱取2.00 g→加水70 mL→加酶量2%→調(diào)pH 5→水浴振蕩酶解浸提→靜置→取上清液→定容稀釋→0.22 mm濾膜過濾除雜→蟲草素待測液
1) 蛹蟲草子實體從密封包裝中取出,使用85 ℃,烘干2 h,放入干燥器中冷卻至室溫。
2) 水浴振蕩法浸提。將子實體粉末與水混勻后于50 ℃下進行水浴振蕩浸提120 min。
3) 酶種類及酶添加量的選擇。添加纖維素酶含量2%。
4) 靜置。將浸提后的酶解液于冰水中冷卻靜置5 min。
5) 0.22 mm濾膜微濾條件。操作壓力0.12 MPa,操作溫度10 ℃。
1.3.2 蟲草素測定
1.3.2.1 UPLC測定蟲草素含量條件的確定
參考文獻[17]確定合適的色譜條件:流動相,甲醇-水(15∶85,V/V);檢測波長260 nm;流速0.5 mL/min;進樣量10 mL,室溫;色譜柱Agilent ZORBAX Eclipse Plus C18(3.0 mm×150 mm,3.5 μm)。
1.3.2.2 標準品的配制
精密稱取蟲草素標準品20 mg于50 mL干凈燒杯中溶解并轉(zhuǎn)移定容至100 mL容量瓶中,得到原溶液,依次用超純水稀釋成0.01,0.02,0.03,0.04和0.05 mg/mL質(zhì)量濃度的標準品溶液,備用。
1.3.3 蟲草素提取率的計算

式中:M1為依據(jù)標準曲線計算出的被測液中蟲草素質(zhì)量,mg;M2為稱取的子實體粉末質(zhì)量,g;V1為待測液分取的體積,mL;V2為待測液的總體積,mL。
1.4.1 最適提取時間的篩選
準確稱取干燥后的子實體粉末2.00 g于100 mL錐形瓶中,加水70 mL,調(diào)節(jié)pH 5,加纖維素酶量2%,混勻,用保鮮膜封口后于50 ℃下分別酶解60,90,120,150和180 min,共5組,每組3個平行,時間結(jié)束后立即冷卻,靜置,取上清液量其體積,按1.3.2的方法測定蟲草素含量,并計算蟲草素提取率,確定最適提取時間。
1.4.2 最適酶添加量的篩選
準確稱取干燥后的子實體粉末2.00 g于100 mL錐形瓶中,加水70 mL,調(diào)節(jié)pH 5,分別加纖維素酶量為0,1.5%,2.0%和2.5%,混勻,用保鮮膜封口后于50 ℃下酶解120 min,共4組,每組3個平行,時間結(jié)束后立即冷卻,靜置,取上清液量其體積,按1.3.2的方法測定蟲草素含量,并計算蟲草素提取率,確定最適酶添加量。
1.4.3 最適酶pH的篩選
準確稱取干燥后的子實體粉末2.00 g于100 mL錐形瓶中,加水70 mL,分別調(diào)節(jié)pH 4.0,4.5,5.0和5.5,加纖維素酶量2%,混勻,用保鮮膜封口后于50℃下酶解120 min,共4組,每組3個平行,時間結(jié)束后立即冷卻,靜置,取上清液量其體積,按1.3.2的方法測定蟲草素含量,并計算蟲草素提取率,確定最適酶pH。
1.4.4 最適提取溫度的篩選
準確稱取干燥后的子實體粉末2.00 g于100 mL錐形瓶中,加水70 mL,調(diào)節(jié)pH 5,加纖維素酶量2%,混勻,用保鮮膜封口后分別于30,40,50和60 ℃酶解120 min,共4組,每組3個平行,時間結(jié)束后立即冷卻,靜置,取上清液量其體積,按1.3.2的方法測定蟲草素含量,并計算蟲草素提取率,確定最適提取溫度。
在單因素試驗基礎(chǔ)上,依據(jù)Design-Expert 8.0.6.1軟件中的Box-Behnken試驗設(shè)計原理,選取提取時間(X1)、酶添加量(X2)、pH(X3)和提取溫度(X4)為4個考察因素,蟲草素提取率(Y)為響應(yīng)值,進行四因素三水平的試驗設(shè)計,確定蛹蟲草中蟲草素最佳提取工藝條件。
在1.3.2.1的色譜條件下測定蟲草素標準品及樣品,其結(jié)果顯示兩者時間基本吻合,并且能夠和周邊物質(zhì)分離開。標準品液相色譜圖如圖1所示,樣品液相色譜圖如圖2所示。

圖1 標準品液相色譜圖

圖2 樣品液相色譜圖
利用UPLC在1.3.2.1的色譜條件下測定制備的標準溶液,分析得回歸方程為y=69 778x+19.663,R2=0.999 8。標準品曲線圖見圖3。

圖3 標準曲線
2.2.1 提取時間對蛹蟲草子實體中蟲草素提取率的影響結(jié)果如圖4所示,隨提取時間推移,蟲草素提取率先上升后下降,提取率最高時,提取時間為120 min,故最佳提取時間為120 min。

圖4 提取時間對蟲草素的影響
2.2.2 酶添加量對蛹蟲草子實體中蟲草素提取率的影響
結(jié)果見圖5,隨酶添加量增加,蟲草素提取率先增加后減少,提取率最高時,酶添加量為2%,故最佳酶添加量為2%。

圖5 酶添加量對蟲草素的影響
2.2.3 酶pH對蛹蟲草子實體中蟲草素提取率的影響
結(jié)果見圖6,隨著pH增大,蟲草素提取率先升高后下降,提取率最高時pH為4.5,故最佳pH 4.5。
2.2.4 提取溫度對蛹蟲草子實體中蟲草素提取率的影響
結(jié)果如圖7所示,隨提取溫度升高,蟲草素提取率先上升后下降,提取率最高時,提取溫度為50 ℃,故最佳提取溫度為50 ℃。

圖6 pH對蟲草素的影響

圖7 提取溫度對蟲草素的影響
在分析單因素結(jié)果后,利用Box-Behnken試驗設(shè)計原理,選擇提取時間(A)、酶添加量(B)、pH(C)、提取溫度(D)為因素,并分別選取低、中、高3個水平得到四因素三水平的因素水平表,見表1,并以蟲草素提取率(Y)為響應(yīng)值,試驗方案設(shè)計和結(jié)果見表2。
運用Design-Expert 8.0.6對試驗結(jié)果進行回歸擬合,得到回歸方程為:Y=0.17+2.875E-003A+3.942E-003B-4.275E-003BC-8.260E-003A2-7.435E-003C2。
運用Design-Expert 8.0.6對其結(jié)果進行分析,方差分析結(jié)果見表3,驗證回歸方程的有效性。對其可信度進行分析,其模型的R2=0.838 4,接近于1,變異系數(shù)(C.V.%)為2.48,說明模型的擬合程度和置信度都較好。方差分析后,模型的F=5.19,對應(yīng)的p=0.002<0.01,表明模型極顯著;方程失擬項的F=2.2,對應(yīng)的概率p=0.233>0.05,表明失擬項不顯著,回歸模型與實際值的擬合程度較好。
由結(jié)果可知,時間(A2,p<0.000 2)、酶添加量(B,p=0.003 6<0.01))、pH(C2,p=0.000 3<0.01)等對蟲草素提取率的有極顯著的影響,時間(A,p=0.023 2<0.05)、酶添加量與pH的交互作用(BC,p=0.046 1<0.05)對蟲草素提取率有顯著的影響,時間、pH、酶添加量、酶添加量與pH交互作用對蟲草素提取率的影響逐漸減小。
觀察圖8~圖10,可以直觀反映各因素其交互作用對響應(yīng)值Y的影響結(jié)果。利用模型擬合出響應(yīng)值對應(yīng)的響應(yīng)面三維圖形,三維空間圖形有助于各個因素之間交互作用的研究[18]。等高線呈現(xiàn)橢圓形狀時表示顯著,否則相反,所以憑借對等高線外觀的觀察,可以反映各個因素之間交互作用大小[3]。響應(yīng)面坡度越陡,表明因素對綜合得率的影響越大,否則相反[19]。由圖8可以看出,隨著酶添加量和提取時間增大,蟲草素提取率先上升后下降,隨著時間推移,蟲草素提取率升高和下降均明顯,由此判斷時間對其的影響較顯著,但兩者交互作用不顯著。由圖9可以看出,隨提取時間和pH增加,提取率先上升后下降,且隨著時間推移,蟲草素提取率的變化較明顯,所以時間對其的影響較大,但兩者交互作用不顯著。由圖10可以看出,響應(yīng)面的曲面陡峭,隨pH和酶添加量的增大,提取率先升后降,兩者交互作用顯著。

表1 Box-Behnken試驗因素水平表

表2 Box-Behnken試驗設(shè)計及結(jié)果

表3 方差分析

圖8 提取時間和酶添加量對蟲草素提取率影響的等值線和響應(yīng)面

圖9 提取時間和pH對蟲草素提取率影響的等值線和響應(yīng)面

圖10 酶添加量和pH對蟲草素提取率影響的等值線和響應(yīng)面
利用響應(yīng)面分析,蟲草素最佳提取方法為:時間123.84 min,酶添加量2.50%,pH 4.36,溫度40 ℃。在此預(yù)測條件下,蟲草素提取率為0.170 5%。因其預(yù)測條件下所得提取率低于試驗設(shè)計中的第4組,又因條件相似,所以提取最優(yōu)工藝為:時間120 min,酶添加量2.5%,pH 4.5,溫度40 ℃,在此條件下提取率為0.174 5%。經(jīng)過3次重復(fù)試驗,得到平均值為0.172 6%,略低于0.174 5%,表明確定的最優(yōu)工藝條件穩(wěn)定可靠。
經(jīng)查閱文獻,蟲草的品種不同,蟲草素提取率也不同,如蟲草1、蟲草2、蟲草3等3個不同品種的蟲草,其蟲草素提取率依次為0.159 2%,0.108 8%和0.018 4%[20]。蟲草素可以通過不同人工培養(yǎng)方法進行生物合成,包括固體基質(zhì)發(fā)酵和液體培養(yǎng)等[9],由于不同菌株的培養(yǎng)對蛹蟲草人工子實體含量影響極大,所以不同品種的蛹蟲草中的蟲草素含量差距會很大[21],另外不同生長期對應(yīng)的蟲草素含量也不同,有研究利用氣相色譜質(zhì)譜(GC-MS)分析發(fā)現(xiàn)蛹蟲草衰老期(第4階段)蟲草素顯著富集[22]。試驗結(jié)果與其他文獻中結(jié)果存在差異。有研究通過UPLC-MS/MS檢測蟲草素,并取得良好效果,但是方法通常用于測定少量標記化合物濃度[23]。另外有研究建立快速、可靠、重現(xiàn)性好的超高效液相色譜-質(zhì)譜法(UPLC-IMS)對麥冬的8種包括蟲草素在內(nèi)的天然核苷進行檢測[24]。由于UPLC法有操作簡單、高效快速、價廉、能夠有效分離所要物質(zhì)的特點[25],所以運用UPLC法對蟲草素含量進行檢測。
利用響應(yīng)面分析中Box-Behnken試驗設(shè)計方法對試驗結(jié)果進行分析,所得回歸方程為Y=0.17+2.875E-003A+3.942E-003B-4.275E-003BC-8.260E-003A2-7.435E-003C2。纖維素酶輔助提取蟲草素的最佳工藝條件為:提取時間120 min,酶添加量2.5%,pH 4.5,溫度40 ℃。在此條件下蟲草素的提取率為0.172 6%。試驗結(jié)果與回歸方程得到的最優(yōu)得率相近,說明此工藝可行。