miR-142-3p對子宮內膜癌細胞增殖、遷移及侵襲的影響

孫沙沙，李玉華

子宮內膜癌是女性生殖系統常見的惡性腫瘤之一，其發病率逐年上升，嚴重影響患者的身心健康，甚至危及生命［1，2］。目前，子宮內膜癌的治療雖然取得了較大進展，但其預后較差且5年生存率＜40%［3］。因此，尋找有效的治療靶點對子宮內膜癌的治療具有重要意義。微小RNA（miRNA）是一種內源性單鏈非編碼小分子RNA，可調控腫瘤細胞增殖、凋亡、遷移和侵襲等生物學功能［4-6］，與癌癥進展密切相關。研究發現 miR-142-3p在乳腺癌、胰腺癌、結直腸癌、肺癌等多種癌癥中表達降低，可參與抑制癌細胞增殖、侵襲及遷移等過程［7-10］。有研究發現miR-142-3p在子宮內膜癌組織中的表達顯著降低［11］，提示miR-142-3p可能是診斷治療子宮內膜癌的一個重要靶點。筆者通過上調子宮內膜癌細胞miR-142-3p的表達，探究miR-142-3p對子宮內膜癌細胞增殖，遷移及侵襲的影響。

1 材料與方法

1.1材料及主要試劑人子宮內膜癌細胞系（Ishikawa和HEC-1A）和正常子宮內膜細胞系（HEC-251）（中國科學院上海生物化學與細胞生物學研究所）。Lipofectamine 3000和Trizol試劑盒（美國Invitrogen公司），MTT試劑盒 （北京 solaibio公司），Tranwell小室（美國 Corning公司），逆轉錄試劑盒和實時熒光定量聚合酶鏈反應技術檢測試劑盒（日本TaKaRa公司），MMP-2和MMP-9一抗（美國Cell Signal公司），miR-142-3p mimics及相關引物由上海生工生物工程公司合成。

1.2方法

1.2.1 細胞培養 用含10%胎牛血清和1%青霉素/鏈霉素的 RPMI-1640培養基在37℃、5%CO2的培養箱中培養Ishikawa，HEC-1A和HEC-251細胞。取對數期生長的細胞進行實驗。

1.2.2 細胞轉染 分別將miR-142-3p mimics及其陰性對照（miR-NC）利用 Lipofectamine 3000試劑盒法瞬時共轉染HEC-1A，分為3組：空白對照組（Control）、陰性對照組（miR-NC）、miR-142-3p過表達組（miR-142-3p mimics）。

1.2.3 MTT法 將轉染后的HEC-1A細胞制成單細胞懸液，接種于96孔板中，每孔接種4×103個細胞。于 37℃，5%CO2培養箱培養 0h、24h、48h、72h、96 h 后，每孔加 20 μL MTT 液（5 mg/ml）呈色。 繼續培養箱孵育4 h，棄去培養液。隨后，每孔加入DMSO（150 μl），避光孵育 10 min。 酶標儀測定各組HEC-1A細胞在490 nm處的OD值。

1.2.4 Transwell實驗 將轉染的HEC-1A細胞置于以Matrigel基底膠包被或不包被的Transwell小室上室、下室中加入500 μl含10%胎牛血清的培養基，在37℃，5%CO2培養箱中培養48 h后，用棉簽擦去上室面上的細胞，4%多聚甲醛固定15 min，結晶紫染色15 min，隨機取6個視野顯微鏡下拍照，計數遷移和侵襲細胞數。

1.2.5 熒光定量PCR檢測 采用Trizol試劑抽提總RNA。經微量核酸定量儀測定RNA濃度和純度后，將RNA反轉錄合成cDNA。用ABI7500定量PCR儀進行熒光定量PCR實驗，反應條件為95℃預變性 10 min，95℃變性10 s，60℃退火 20 s，72℃延伸 34 s，40 個循環。以 U6 為內參，采用 2-ΔΔCt法計算細胞中miR-142-3p的相對表達量。引物設計如下：miR-142-3p F：5’-GGGTGTAGTGTTTCCTACT-3’，R：5’-CAGTGCGTGTCGTGGAGT-3’；U6 F：5’-TGCGGGTGCTCCGCTTCGGCAGC-3’，R：5’-CAG TGCAGGGTCCGAGGT-3’。

1.2.6 Western blot檢測 蛋白樣品按照 50 μg/孔上樣，經10%SDS-PAGE電泳分離后、電轉移到PVDF膜上，經5%脫脂奶粉PBST溶液封閉后，加入一抗（MMP-2，1∶1000；MMP-9，1∶1000；β-actin，1∶1000）4℃孵育過夜。加入HRP標記的二抗，室溫孵育1 h，ECL顯色。

1.3統計學分析實驗數據的結果以（±s）表示，使用GraphPad Prism 8.0進行數據統計學分析。兩組之間的比較采用t檢驗，多組之間的比較采用單因素方差分析。P＜0.05為差異具有統計學意義。

2 結果

2.1 miR-142-3p在子宮內膜癌細胞中低表達qRT-PCR結果表明，與HEC-251細胞比較，miR-142-3p在Ishikawa細胞尤其是HEC-1A細胞中的表達明顯下調（P＜0.05）（圖 1）。因此，選 HEC-1A 細胞進行后續實驗。

圖 1qRT-PCR 檢測 miR-142-3p在HEC-251、Ishikawa和HEC-1A細胞中的表達與HEC-251比較（＊P＜0.05）

2.2 miR-142-3p mimics增加HEC-1A細胞中miR-142-3p的表達qRT-PCR檢測發現，miR-142-3p轉染后HEC-1A細胞中miR-142-3p的表達水平明顯高于Control組和miR-NC組 （P＜0.05）（圖2）。證明miR-142-3p被成功轉入HEC-1A細胞中。

圖2qRT-PCR檢測miR-142-3p在各組HEC-1A細胞中的表達與Control組和miR-NC組比較（＊P＜0.05）

2.3 miR-142-3p過表達抑制HEC-1A細胞增殖MTT實驗表明，與Control組和miR-NC組比較，轉染 24 h、48 h、72 h 及 96 h 后，miR-142-3p 組HEC-1A細胞的吸光度值顯著降低 （P＜0.05）（圖3），表明miR-142-3p過表達能夠抑制子宮內膜癌細胞HEC-1A的增殖。

圖3見封三。

圖3 MTT檢測miR-142-3p對HEC-1A細胞增殖的影響與Control組和miR-NC組比較（＊P＜0.05）

圖6 Western blot檢測miR-142-3p對HEC-1A細胞中MMP-2和MMP-9蛋白水平的影響與Control組和miR-NC組比較（＊P＜0.05）

2.4 miR-142-3p過表達抑制HEC-1A細胞的遷移和侵襲Transwell實驗結果表明，與Control組和miR-NC組比較，miR-142-3p組HEC-1A細胞的遷移率和侵襲率均顯著降低 （P＜0.05）（圖4和5），表明miR-142-3p過表達能夠抑制子宮內膜癌細胞HEC-1A的遷移和侵襲。

2.5 miR-142-3p過表達抑制HEC-1A細胞中MMP-2和MMP-9的表達Western blot實驗結果表明，miR-142-3p轉染后 HEC-1A細胞中MMP-2和MMP-9的表達水平明顯低于Control組和 miR-NC 組（P＜0.05）（圖 6），進一步證實 miR-142-3p過表達能夠抑制子宮內膜癌細胞HEC-1A的遷移和侵襲能力。

圖6見封三。

3 討論

研究表明，miR-142-3p能夠通過調控細胞生物學功能在癌癥中發揮重要作用。朱翔宇等［12］發現miR-142-3p在結直腸癌組織及癌細胞中表達水平明顯低于正常組織和細胞，且發現miR-142-3p高表達能夠抑制結直腸癌細胞增殖。國外學者Behzad Mansoori等［13］證實 miR-142-3p 作為一種抑癌miRNA通過靶向Bach-1抑制乳腺癌細胞的侵襲和遷移能力。此外，高建連等［14］研究發現miR-142-3p在卵巢癌組織及癌細胞中低表達。該研究同時也表明miR-142-3p能夠通過靶向調控sirtuin 1抑制卵巢癌細胞增殖。有研究發現miR-142-3p在子宮內膜癌中低表達［11］，但其對子宮內膜癌生物學行為的影響尚無報道。

該研究發現與正常子宮內膜細胞相比，miR-142-3p在子宮內膜癌細胞中低表達，與Muralidharan Jayaraman 等［11］研究一致，揭示 miR-142-3p可能是診斷治療子宮內膜癌的一個重要靶點。MTT和Transwell實驗結果表明miR-142-3p過表達顯著抑制子宮內膜癌細胞HEC-1A的增殖，遷移和侵襲。惡性腫瘤的重要特征是生長不受限制，這不僅是由腫瘤細胞增殖和分化失控導致的，也與腫瘤細胞的侵襲性密切相關。研究發現活化的MMP-2和MMP-9可以參與細胞外基質元素的降解，減少細胞黏附，進而促進腫瘤細胞遠處遷移［15］。發現miR-142-3p過表達能夠顯著抑制MMP-2和MMP-9的表達水平，進一步證實miR-142-3p能夠抑制子宮內膜癌細胞的遷移和侵襲。

圖4 Transwell檢測miR-142-3p對HEC-1A細胞遷移的影響與Control組和miR-NC組比較（＊P＜0.05）

圖5 Transwell檢測miR-142-3p對HEC-1A細胞侵襲的影響與Control組和miR-NC組比較（＊P＜0.05）

綜上所述，miR-142-3p在子宮內膜癌細胞中低表達，通過提高miR-142-3p的表達可以抑制子宮內膜癌細胞增殖、遷移和侵襲，抑制子宮內膜癌的發展。結果提示miR-142-3p參與子宮內膜癌的發生和發展，有望成為子宮內膜癌治療的新靶點。