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不同途徑感染后5 型腺病毒在C57BL/6J 小鼠體內的分布

2020-09-03 06:50:32陳偉盛高亞奇陳海宇陳興致詹純列張修彥中國人民解放軍南部戰區總醫院廣州510010
實驗動物與比較醫學 2020年4期
關鍵詞:小鼠實驗檢測

陳偉盛,高亞奇,梁 寧,陳海宇,陳興致,詹純列,張修彥(中國人民解放軍南部戰區總醫院,廣州 510010)

腺病毒(adenovirus,Ad)作為基因表達載體的研究始于1960年代[1],主要研究Ad 載體引入外源基因的可行性和安全性[2-5]。Ad 載體轉導基因有很多優點[6]:①宿主范圍廣,既可以感染分裂期細胞,也可以感染非分裂期細胞[7-8];②安全性好,Ad 無需整合進宿主細胞基因組,整合突變致癌率低,基因毒性小;③相對穩定,病毒基因組重排頻率低;④容量大,理論上最大容量可達35 kb;⑤相對容易制備,滴度高。Ad載體是目前基因治療最為常用的病毒載體之一。本文旨在研究滴鼻、灌胃、尾靜脈注射及腹腔注射5 型腺病毒(Ad5)后,病毒在C57BL/6J 小鼠體內的分布情況,從而為Ad 載體作為基因治療的小鼠研究提供基礎數據。

1 材料與方法

1.1 實驗動物

SPF 級C57BL/6J 小鼠112 只,雌雄各半,6~8 周齡,體質量16~20 g,購自廣東省醫學實驗動物中心[SCXK(粵)2018-0002],飼養于南部戰區總醫院動物實驗中心[SYXK(粵)2019-0100],實驗程序符合南部戰區總醫院實驗動物倫理委員會要求(20180051812),并遵守國際慣例。

1.2 主要試劑和儀器

TRIzol(9109)購自日本Ta KaR a 公司;BestarTMqPCR RT kit(2220)、BestarTMqPCR MasterMix(2043)均購自德國DBI 公司;DEPC(6079)購自上海Macklin 公司;Ad 購自深圳市百恩維生物科技有限公司;反轉錄試劑盒購自德國DBI 公司;Phanta?Max Super-Fidelity DNA Polymerase、2×Phanta Master Mix 均購自諾唯贊生物科技有限公司;DNAzol Reagent 購自美國Invitrogen 公司;Stratagene Real time PCR(Mx3000P)儀購自美國Agilent 公司;PCR 擴增儀器(K960)購自杭州晶格科學儀器有限公司;超微量紫外分析儀(Q6000UV)購自美國Quawell Technology 公司;高速離心機(TGL-16G)和低速離心機(TDL-80-2B)均購自上海安亭科學儀器廠。

1.3 標準曲線

使用DNAzol Reagent 提取病毒DNA,取1×109pfu/mL 的Ad5 溶液125 μL,加入含有250 μL DNAzol 的離心管中,上下顛倒混勻,室溫放置5 min,加入100 μL 異丙醇,置于旋渦混合器上充分混勻,室溫放置5 min。6000r/min 離心5 min,棄上清,加入500 μL 75%乙醇溶液后,再6000 r/min 離心5 min,棄上清,加入8 mmol/L NaOH 溶液20 μL 溶解。提取的病毒DNA 的吸光度(A)比值A260/A280為1.86,質量濃度為1.33 μg/μL。將DNA 原液5 μL 加45 μL 雙蒸水稀釋10 倍,以此類推稀釋102、103、104、105、106和107倍,最后用稀釋液作為模板進行qPCR 檢測,繪制標準曲線。

1.4 動物處理及定量聚合酶鏈反應(qPCR)檢測

112 只小鼠分為滴鼻組、灌胃組、尾靜脈注射組和腹腔注射組,每組28 只,雌雄各半。每只小鼠Ad 用量100 μL(1×109pfu/mL)。于4 種途徑感染后1 d、2 d、3 d、4 d、5 d、6 d 和7 d分別取4 組中雌雄各2 只小鼠,脫頸椎處死,解剖取淋巴結、睪丸、附睪、子宮、卵巢、脾臟、腎臟、肝臟、肺、心臟、腦、血液和骨髓組織,提取RNA。以2 μg RNA 為模板,按照Bestar qPCR RT Kit 說明書配制反轉錄反應體系,總體系為10 μL,反轉錄成cDNA。以cDNA 為模板,配制qPCR 體系。Ad5 上游引物為5'- AGGTGCTTGCCACCTATCAC-3',下游引物為5'-TTTTGGCACTTCGTTGAGCG-3'。內參β-actin 上游引物為5'- CATTGCTGACAGGATGCAGA-3’,下游引物為5'-CTGCTGGAAGGTGGACAGTGA-3'。

在PCR 反應管中充分混勻,置入Agilent Stratagene 熒光定量PCR 儀Mx3000P 進行熒光定量PCR 實驗。反應條件為:95 ℃ 2 min,94 ℃20 s,58 ℃ 20 s,72 ℃ 20 s,40 循環。每個樣本檢測重復3次。

2 結果

2.1 標準曲線

構建標準品的擴增曲線和標準曲線如圖1A和圖1B。從圖1A中可以看出10 倍梯度稀釋后的標準品質粒有良好的特異性擴增。圖1B所得到的標準曲線方程為y=-3.3877x+ 27.204,相關系數R2為0.9999,標準品起始反應模板濃度與Ct 值呈良好的線性關系。

圖1 標準品的擴增曲線(A)和標準曲線(B)Figure 1 Amplication curve (A) and standard curve (B) of standard samples

2.2 Ad5 在各組織中的分布

滴鼻組在肺和脊髓中檢測出Ad5,肺組織中Ad5 含量隨著時間降低,處理后7 d肺組織中Ad5含量比處理后1 d 下降91.9%,4 d 比3 d 下降29.6%;脊髓組織在處理后1~3 d,Ad5 含量隨時間增加,之后開始下降,7 d 比1 d 下降26.1%。

尾靜脈注射組在肝臟和脾中檢測出Ad5,肝臟和脾臟中Ad5 含量隨時間逐漸下降。7 d 肝臟Ad5 含量比1 d 下降23.4%;脾臟含量7 d 比1 d下降93.9%,其中5 d 比4 d 下降43.8%,下降最快。

腹腔注射組在脊髓、脾臟、附睪和睪丸中檢測出Ad5,脊髓Ad5 含量在感染后2 d 最高,7 d 比1 d 含量下降39.3%;脾臟和附睪中Ad5 的含量隨時間逐漸下降,脾臟Ad5 含量7 d 比1 d下降94.2%,附睪含量7 d 比1 d 下降54.3%;睪丸中Ad5 含量有波動,可能是因為Ad5 含量太少,實驗誤差造成,其總體呈下降趨勢,7 d 比1 d 含量下降64.7%。

灌胃組小鼠各器官和組織中均未檢出Ad5。

圖2 檢測到Ad5 的小鼠組織Figure 2 Tissues of different groups with detectable adenovirus type 5

3 討論

Ad 廣泛應用于腫瘤、心血管等領域的基因傳遞、再生醫學以及疫苗載體[9-13]。在許多臨床試驗中,Ad 都被證明是安全的載體[14]。研究不同途徑感染后Ad5 在體內主要臟器的生物分布,可為基因治療、疫苗載體的小鼠實驗研究中給藥途徑選擇提供可靠的實驗數據。

本實驗結果顯示,滴鼻組小鼠在肺組織和脊髓中,可以檢測到Ad。本課題組曾將Cre Ad 滴入B6.129S4-Krastm4Tyj/J 轉基因小鼠鼻內,誘導其表達突變Kras基因,從而獲得肺癌模型[15]。根據本實驗結果,滴鼻感染后4 d Ad 下降比較多,可將每7 d 滴鼻一次優化為每3 d 滴鼻一次。

本實驗結果還顯示,灌胃組在所有組織中均沒有檢測到Ad5,這可能與消化系統對Ad5 的滅活有關。

本研究中,尾靜脈注射組在肝臟和脾臟中檢測到Ad5。王鳴等[16]通過尾靜脈注射Ad 后7d 在肝臟基本檢測不到Ad,而Ohashi 等[17]給β-葡萄糖醛酸酶缺陷小鼠靜脈注射表達人β-葡萄糖醛酸酶的重組Ad,肝臟、脾臟中酶的表達至少持續到35 d。本研究結果表明,肝臟中Ad 下降速度較慢,可每7 d 重復注射一次。苗玉發等[18]給C57BL/6小鼠肌肉注射治療性HIV 的Ad 載體疫苗,發現病毒載體在脾臟、骨髓有較少分布,性腺中沒有檢測到病毒載體。

本實驗結果顯示,腹腔注射Ad5 后,附睪和睪丸中有病毒載體,子宮和卵巢中未發現Ad5,附睪和睪丸中Ad5 含量只有其他陽性組織中檢測出含量的1%~10%,脊髓中Ad5的含量比滴鼻組約高10 倍。

綜上,肺部感染實驗,可每3d 滴鼻一次;肝臟感染實驗,可以用尾靜脈注射Ad5 的方法;脾臟感染實驗,可以采用尾靜脈注射或腹腔注射Ad5 的方法;脊髓感染實驗,可以采用腹腔注射Ad5 的方法。

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