HPLC-MS/MS測定豆類及其制品中的赭曲霉毒素A含量

□ 葛曉曉 彭雪琦 江蘇省理化測試中心

赭曲霉毒素（ochratoxin）是一種天然存在的毒性污染物質，有A、B、C與D 4種，其中赭曲霉毒素A（ochratoxin A,簡稱OTA）毒性最大[1]。赭曲霉毒素廣泛存在于糧食、豆類、咖啡豆和飼料等，在存儲及運輸方式不當時，食品發生霉變可產生。OTA對動物及人類的免疫系統有顯著性的破壞作用，對動物及人類腎臟、肝臟等具有致癌、致畸等作用[2—3]，所以食品中OTA含量檢測至關重要。

目前，我國對于豆類及其制品中赭曲霉毒素A的定量檢測方法主要包括液相色譜（HPLC）[4]和液相色譜串聯質譜（LC—MS/MS）法[5]。HPLC 法采用熒光檢測器檢測，準確性高。LC—MS/MS法具有更高的靈敏度和高效性，但實驗前處理方法對檢測結果的干擾較大。常用的凈化方法有免疫親和柱凈化[6]、離子交換固相萃取柱凈化[7]、酶聯免疫吸附法[8]等。此外，目前文獻中對于豆類及其制品中赭曲霉毒素A測定技術的研究較少。本研究基于LC—MS/MS檢測技術，在現有檢測方法基礎上對豆類及其制品的赭曲霉毒素A提取及測定方法進行優化，研究成果可為實驗室檢測赭曲霉毒素A提供可靠依據。

1 實驗部分

1.1 儀器、試劑與材料

Agilent1290—6470 液相色譜 —三重四級桿串聯質譜儀（美國，安捷倫公司）；BAS224S—CW萬分之一天平（賽多利斯）；KQ—400KDE高功率數控超聲波清洗器（昆山市超聲儀器有限公司）；TGL—18高速離心機（上海安亭科學儀器廠）；RE—2000B旋轉蒸發儀（上海亞榮生化儀器廠）；SHB—IIIA循環水式多用真空泵（上海豫康科教儀器設備有限公司）；AutoVapS60氮吹濃縮儀（美國ATR）。

赭曲霉毒素 A 標準品（10 μg/L，Pribolab Pte Ltd），氯化鈉，甲醇（AR級，國藥集團）；甲醇，乙腈，甲酸（HPLC級，美國Honeywell公司）；免疫親和柱（Romer Labs）。

1.2 儀器工作條件

1.2.1 液相色譜條件

色譜柱Waters Sunfire C18（100 mm×2.1 mm，3.5 μm）； 色 譜 柱 溫 度40 ℃；進樣量 20 μL。流動相 A 為0.1%甲酸，流動相B為乙腈，梯度洗脫：0～0.20 min（80% A+20% B），0.20 ～ 0.50 min（30%A+70%B），0.80 ～ 0.90 min（80%A+20%B），0.90～2.50 min（80%A+20%B），流速0.5 mL/min。

1.2.2 質譜條件

質譜掃描采集方法MRM，質譜離子源為ESI電離源，采用正離子模式，其他質譜條件如表1所示。

表1 質譜參數

1.3 實驗方法

1.3.1 樣品前處理方法

樣品粉碎，過篩，稱取25 g（精確到0.001 g）于100 mL容量瓶中，加入5 g氯化鈉，加入60%乙腈溶液稀釋定容，超聲20 min，取部分溶液過濾，離心，取上清液。精密量取濾液10 mL于離心管中，加入40 mL水混勻，取10 mL過0.22 μm濾膜過免疫親和柱，用5 mL甲醇洗脫，氮氣吹干，加入1 mL甲醇溶解，待測。

1.3.2 標準曲線配制

溶劑標準溶液：準確移取赭曲霉毒素A標準溶液1 mL于10 mL容量瓶，稀釋定容。分別移取5、10、20、50、100 μL 與 200 μL， 于 6 個10 mL容量瓶，用甲醇溶液稀釋定容，配制成濃度為0.5、1、2、5、10 μg/L和20 μg/L的系列標準溶液，待測。

2 結果與討論

2.1 前處理優化

本次檢測參考GB 5009.96—2016，對萃取溶劑進行了優化，研究了甲醇、乙腈、80%甲醇、80%乙腈、60%乙腈的提取效果。結果表明，加入少量水有助于回收率的提高，但水過多，會使提取過程中混入更多植物蛋白等水溶性物質。因此結合文獻[9]及標準[10]，后續試驗選擇60%乙腈為提取溶劑。

2.2 色譜條件優化

試驗考察了Waters Sunf i re C18（100 mm×2.1 mm，3.5 μm），Agilent Poroshell 120 EC—C18（50 mm×3.0 mm，2.7 μm）兩種不同色譜柱對赭曲霉毒素A的測定效果。結果表明，在同等條件下，采用C18短柱，響應值更高，所以采用C18短柱。試驗分別采用甲醇—水，乙腈—水作為流動相，發現赭曲霉毒素A峰形較寬。由于赭曲霉毒素 A 含有氨基（—NH2）及氯（—Cl），所以在水相中加入0.1%甲酸，可促進離子化效應，以提高響應。采用1%甲酸—甲醇作為流動相時，甲醇出峰時間更早，不利于雜質與目標物質的分離。所以試驗采用0.1%甲酸水—乙腈作為流動相，分離效果好。

2.3 方法學研究

取陰性空白樣，按相同前處理方法制得其空白基質溶液，配制20 μg/L的基質標準溶液，臨用現配。同時用甲醇配制相同濃度的標準溶液，上機平行測定6次。實驗結果顯示，基質標準溶液峰面積為甲醇標準溶液峰面積的108%，說明經過前處理后，凈化程度較高，基質效應影響較小。在后續試驗中，可采用甲醇配制標準溶液。

試驗采用甲醇配制質量濃度為0.5～20 μg/L的赭曲霉毒素A標準系列溶液。按照優化后的色譜、質譜條件依次進行測定。對質量濃度（x，μg/L）和定量離子對峰面積（y）進行線性擬合。擬合結果表明在0.5～20 μg/L范圍內線性關系良好，線性方程為y=14 073.8x—902.9（R2=0.999 4）。 采用標準添加法，以信噪比S/N≥10確定定量限（LOQ）為1 μg/kg，逐級稀釋，以信噪比S/N≥3確定檢出限（LOD）為 0.3 μg/kg。GB 2761—2017[11]規 定豆類及其制品中赭曲霉毒素A的限量為5.0 μg/kg，所以定量限滿足檢測需求。

選擇多種陰性樣品進行添加回收率和精密度試驗，試驗隨機選擇了3種食品—黃豆、豆干、綠豆。添加水平分別為1、2、10 μg/kg，按本文方法進行樣品前處理和測定，平行測定6次。結果見表2。由表2可見，在表中3種食品中，赭曲霉毒素A的平均回收率為85.6%～106.2%，相對標準偏差（RSD）為0.96%～3.5%，符合檢測要求。

2.4 樣品檢測

隨機抽檢20份豆類及其制品食品，采用本文建立的方法測定其中赭曲霉毒素A的含量，均為陰性。采用GB 5009.96—2016第一法復核，結果一致。說明本文方法可行。

3 結論

本文建立了一種基于高效液相色譜—串聯質譜檢測技術的豆類及其制品中赭曲霉毒素A含量的檢測方法，該方法以80%甲醇提取結合免疫親和柱凈化，前處理過程便捷、快速，且檢測結果精確，該方法可為檢測豆類及其制品提供新的選擇。

表2 赭曲霉毒素A的加標回收率和精密度（n=6）