羅 榮, 王凌霄, 劉 航, 楊朝愛, 江 旭, 楊繼金
臭 氧 又 稱“活 性 氧”,Sweet 等[1]1980 年 研 究 發(fā)現(xiàn)它在一定濃度范圍內(nèi)可選擇性抑制腫瘤細(xì)胞生長(zhǎng),對(duì)正常細(xì)胞無(wú)影響或影響輕微。 研究表明臭氧具有極強(qiáng)的氧化性,可改善腫瘤缺氧狀態(tài),其效果與腫瘤內(nèi)基礎(chǔ)氧分壓呈負(fù)相關(guān),腫瘤內(nèi)氧分壓低于5 mmHg(1 mmHg=0.133 kPa)時(shí)效果最佳[2-3]。 魏強(qiáng)等[4]在瘤內(nèi)注射臭氧致瘤組織超微結(jié)構(gòu)改變的實(shí)驗(yàn)中發(fā)現(xiàn),一定濃度臭氧可對(duì)腫瘤細(xì)胞及瘤內(nèi)血管內(nèi)皮細(xì)胞造成損傷。 然而目前關(guān)于臭氧治療腫瘤時(shí)對(duì)腫瘤內(nèi)低氧誘導(dǎo)因子(HIF)-1α、血管內(nèi)皮細(xì)胞生長(zhǎng)因子(VEGF)及微血管密度(MVD)影響的研究報(bào)道較少。本研究對(duì)此進(jìn)行探討,現(xiàn)將實(shí)驗(yàn)結(jié)果報(bào)道如下。
雄性新西蘭大白兔90 只,體重2~2.5 kg,由海軍軍醫(yī)大學(xué)海軍醫(yī)學(xué)研究所提供,動(dòng)物合格證編號(hào)SCXK(滬)20150005;飼養(yǎng)條件為單籠單兔,自由攝食,室內(nèi)溫度(22±2)℃,濕度(70±5)%,每天12 h(7∶00~19∶00)光照。
兔適應(yīng)性飼養(yǎng)3~5 d 后種植VX2 腫瘤:VX2瘤株來自第二軍醫(yī)大學(xué)附屬長(zhǎng)海醫(yī)院核醫(yī)學(xué)科傳代瘤兔,自傳代瘤兔左后腿取出后于0.9%氯化鈉溶液中洗滌2~3 次,去除表面血漬,無(wú)菌手術(shù)刀切開瘤塊,去除中心壞死部分,取邊緣?mèng)~肉樣組織作為活性腫瘤組織, 無(wú)菌眼科剪將活性腫瘤組織剪碎,大小約為1 mm3,備用;用3%戊硫代巴比妥鈉(0.8~1 mL/kg)沿兔耳緣靜脈緩慢注入進(jìn)行麻醉,兔仰臥位固定于專用手術(shù)臺(tái)上,于左后腿內(nèi)側(cè)肌肉處備皮、消毒、鋪巾后,用無(wú)齒鑷提起皮膚、剪一長(zhǎng)約5 mm 小口,鈍性逐層分離皮下筋膜,暴露皮下肌肉組織, 再用無(wú)齒鑷提起肌肉, 剪一長(zhǎng)約5 mm 小口,將備用瘤塊置入肌肉傷口內(nèi),縫合肌肉和皮膚后消毒并放入籠中飼養(yǎng)。 10~12 d 后,超聲檢測(cè)腫瘤大小,腫瘤長(zhǎng)徑長(zhǎng)至1~1.5 cm 時(shí)進(jìn)行實(shí)驗(yàn)。
實(shí)驗(yàn)前24 h 將所需0.9%氯化鈉溶液(無(wú)菌透明玻璃瓶?jī)?chǔ)存,劑量30 mL)置于4℃冰箱保存,實(shí)驗(yàn)開始前0.5 h 制作臭氧化0.9%氯化鈉溶液時(shí)取出;將臭氧發(fā)生器輸出濃度調(diào)至20 μg/mL,臭氧氣體輸出速率為3 L/min,通過輸液管道通入備用0.9%氯化鈉溶液中,持續(xù)時(shí)間為20 min。 制作至實(shí)驗(yàn)結(jié)束過程中玻璃瓶周圍仍放置多個(gè)冰袋維持其低溫狀態(tài),制作完成后用臭氧濃度測(cè)定試劑盒檢測(cè)水中臭氧濃度。本實(shí)驗(yàn)所用臭氧化0.9%氯化鈉溶液中臭氧濃度為0.25~0.5 mg/L。
選擇符合條件的瘤兔72 只,隨機(jī)均分為4 組(A、B、C、D 組),各18 只。 按上述方法麻醉后,聚維酮碘消毒腫瘤部位,超聲檢測(cè)腫瘤大小,記錄腫瘤最大切面長(zhǎng)徑(a)和相垂直的短徑(b),按公式V=1/2ab2計(jì)算腫瘤體積。超聲導(dǎo)引下,A 組注射2 倍腫瘤體積的0.9%氯化鈉溶液1 次、B 組注射2 倍腫瘤體積的臭氧化0.9%氯化鈉溶液1 次、C 組注射2 倍腫瘤體積的臭氧化0.9%氯化鈉溶液連續(xù)2 次(1 次/d, 連續(xù)2 d)、D 組注射2 倍腫瘤體積的臭氧化0.9%氯化鈉溶液連續(xù)3 次(1 次/d,連續(xù)3 d),緩慢推注,避免腫瘤內(nèi)壓力過大脹破腫瘤包膜,同時(shí)禁忌反復(fù)穿刺腫瘤,以免發(fā)生針道種植轉(zhuǎn)移。 注射完成后觀察1 h,如無(wú)異常,放入籠中繼續(xù)飼養(yǎng)。 術(shù)后第4、8、12 天, 各組隨機(jī)選取6 只兔經(jīng)耳緣靜脈注射空氣15~20 mL 處死, 切取腫瘤浸泡于4%甲醛溶液。
采用免疫組化法檢測(cè)腫瘤內(nèi)CD31 標(biāo)記的MVD 及HIF-1α、VEGF 表達(dá): 免疫組化染色完成后,將每張切片于高倍鏡(×200)視野下選取染色最為集中處拍照并將圖像輸入Image-Pro Plus 6.0 生物醫(yī)學(xué)影像分析系統(tǒng)進(jìn)行染色強(qiáng)度即累積吸光度(IOD)檢測(cè),記錄單位面積IOD 值;4%甲醛固定腫瘤標(biāo)本沖洗干凈,脫水、包埋、切片(厚3 μm)、烤片、脫蠟、水化,pH6.0 檸檬酸鹽緩沖液加入染色盒,放入緩沖液高溫高壓處理10 min,染色盒于室溫下自然冷卻,蒸餾水沖洗2 次后磷酸緩沖液(PBS)洗3 min×3 次,3%H2O2室溫孵育10 min,PBS 洗3 min×3 次, 加入100 μL 血清封閉液, 室溫孵育10 min,PBS 洗3 min×3 次,加入一抗(美國(guó)Novus 生物制品公司),孵育過夜,PBS 洗3 min×3 次,加入一抗增強(qiáng)劑,室溫孵育30 min 后PBS 洗3 min×3 次,滴加即用型二抗,室溫避光孵育30 min,PBS 洗3 min×3 次,以二氨基聯(lián)苯胺(DAB)顯色,蒸餾水沖洗、復(fù)染、脫水、封片。
采用SSPS 21.0 軟件進(jìn)行統(tǒng)計(jì)學(xué)分析。 計(jì)量資料以均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差(x±s)表示,多組比較用方差分析,組間兩兩比較用LSD-t 檢驗(yàn)。 P<0.05 為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
各組不同時(shí)間點(diǎn)瘤組織內(nèi)HIF-1α 表達(dá)比較見表1、圖1。 術(shù)后第4、8 天B 組瘤組織內(nèi)HIF-1α 表達(dá)低于A 組,術(shù)后第12 天略高于A 組,但差異均無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05);術(shù)后C、D 組瘤組織內(nèi)HIF-1α表達(dá)均高于A 組,C 組更明顯, 第12 天C 組與A、B、D 組間差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05),余各組間于同一時(shí)間節(jié)點(diǎn)差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。

表1 各組不同時(shí)間點(diǎn)瘤組織內(nèi)HIF-1α 表達(dá)比較 x±s

圖1 各組第12 天腫瘤內(nèi)HIF-1α 表達(dá)(目鏡×物鏡,10×20 倍)
各組不同時(shí)間點(diǎn)瘤組織內(nèi)VEGF 表達(dá)比較見表2、 圖2。 術(shù)后第4 天B 組、C 組瘤組織內(nèi)VEGF表達(dá)稍低于A 組,其余時(shí)間節(jié)點(diǎn)及D 組瘤內(nèi)VEGF表達(dá)均高于A 組, 且在第8 天C、D 組與A 組間差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05),余同一時(shí)間節(jié)點(diǎn)各組間差異均無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05)。
各組不同時(shí)間點(diǎn)瘤組織內(nèi)CD31 標(biāo)記的MVD比較見表3。 與A 組相比,術(shù)后第4、8 天B 組瘤組織內(nèi)MVD 形成減少,術(shù)后第12 天略增高,但差異均無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05)。 C 組瘤組織內(nèi)MVD 形成在各時(shí)間節(jié)點(diǎn)均高于A、B、D 組, 但差異均無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義 (P>0.05); 術(shù)后第4 天D 組瘤組織內(nèi)MVD 形成高于A 組, 第8 天和第12 天低于A 組,但差異均無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05)。

表2 各組不同時(shí)間點(diǎn)瘤組織內(nèi)VEGF 表達(dá)比較 x±s

表3 各組不同時(shí)間點(diǎn)瘤組織內(nèi)CD31 標(biāo)記的MVD 比較x±s

圖2 各組第8 天腫瘤內(nèi)VEGF 表達(dá)(目鏡×物鏡,10×20 倍)
缺氧是腫瘤組織的重要生物學(xué)特征之一。 腫瘤細(xì)胞快速分裂增殖導(dǎo)致大量腫瘤細(xì)胞遠(yuǎn)離血管,使得腫瘤細(xì)胞處于缺氧環(huán)境,長(zhǎng)期缺氧將誘導(dǎo)腫瘤細(xì)胞產(chǎn)生HIF-1α[5]。 在正常氧飽和度情況下,HIF-1α在細(xì)胞質(zhì)中被脯氨酸羥化酶滅活而處于失活狀態(tài),而在缺氧狀態(tài)、氧化應(yīng)激時(shí),脯氨酸羥化酶被抑制,HIF-1α 不能被滅活而與HIF-1β 結(jié)合形成異源型二聚體并進(jìn)入細(xì)胞核, 異源型二聚體與DNA 分子上缺氧反應(yīng)元件結(jié)合, 從而調(diào)節(jié)某些基因,使VEGF、促紅細(xì)胞生成素、糖酵解酶表達(dá)增多。 VEGF表達(dá)增多可促進(jìn)血管形成,從而促進(jìn)腫瘤細(xì)胞增殖和存活[6],使腫瘤發(fā)生遠(yuǎn)處轉(zhuǎn)移的風(fēng)險(xiǎn)增加。 因此,改善腫瘤缺氧狀態(tài)有可能促進(jìn)HIF-1α 滅活,使VEGF 表達(dá)減少,腫瘤血管形成減少,從而改善腫瘤患者預(yù)后。
臭氧又稱為“活性氧”,由3 個(gè)氧原子構(gòu)成,在常溫常壓下是一種淡藍(lán)色、有魚腥臭味的刺激性氣體,1840 年由德國(guó)科學(xué)家Schonbein 發(fā)現(xiàn)[7]。 它具有強(qiáng)氧化性, 其氧化性僅次于氟和羥基, 對(duì)細(xì)菌、病毒、真菌等病原微生物具有極強(qiáng)的殺滅作用,同時(shí)可改善局部血液循環(huán),增加局部氧供[8]。早期研究表明, 腫瘤缺血缺氧將會(huì)增加其對(duì)放化療的抵抗性,嚴(yán)重影響預(yù)后,因此減輕腫瘤缺氧對(duì)改善預(yù)后有重要作用[9-10]。 臭氧可改善腫瘤缺血缺氧狀態(tài),尤其是在腫瘤內(nèi)氧分壓低于5 mmHg 時(shí)效果最佳[2-3],使到達(dá)腫瘤局部的化療藥物或放療增敏劑等增多,從而增強(qiáng)放化療效果;且實(shí)驗(yàn)研究亦表明單一臭氧療法或臭氧聯(lián)合放化療及光動(dòng)力療法可明顯降低腫瘤細(xì)胞活性或抑制腫瘤生長(zhǎng)[11-15]。
本研究結(jié)果顯示,連續(xù)多次注射臭氧化0.9%氯化鈉溶液可能導(dǎo)致腫瘤內(nèi)HIF-1α、VEGF 表達(dá)增加,MVD 形成增多, 其原因可能為短時(shí)間內(nèi)連續(xù)多次臭氧化0.9%氯化鈉溶液瘤內(nèi)注射加重腫瘤內(nèi)已有氧化應(yīng)激,從而抑制脯氨酸羥化酶活性,導(dǎo)致腫瘤內(nèi)HIF-1α 滅活減少,VEGF 表達(dá)增多, 促進(jìn)腫瘤微血管生成,促進(jìn)腫瘤生長(zhǎng)。 本實(shí)驗(yàn)療效部分研究也發(fā)現(xiàn),與單次臭氧化0.9%氯化鈉溶液瘤內(nèi)注射組相比,多次注射對(duì)腫瘤生長(zhǎng)抑制效果較差(另文發(fā)表)。 已有研究表明,臭氧濃度過高或劑量過大可能會(huì)加重原已存在的氧化應(yīng)激,而臭氧治療用途主要是通過適度的氧化應(yīng)激激發(fā)機(jī)體各種反應(yīng),如抗氧化還原反應(yīng)、免疫反應(yīng)等[16-17]。本研究結(jié)果還顯示單次臭氧化0.9%氯化鈉溶液瘤內(nèi)注射,雖可使腫瘤組織內(nèi)HIF-1α、VEGF 表達(dá)及MVD 形成呈下降趨勢(shì),但并無(wú)明顯統(tǒng)計(jì)學(xué)意義;分析其原因可能為樣本量不足或所用臭氧濃度/劑量過低,或?yàn)橹委焺┝砍粞鯇?duì)腫瘤內(nèi)HIF-1α、VEGF 表達(dá)及MVD 形成無(wú)明顯影響。 然而Guclu 等[18]研究臭氧療法治療糖尿病性腎病對(duì)HIF-1α、 腫瘤壞死因子(TNF)-α 等表達(dá)的影響,發(fā)現(xiàn)50 μg/mL 臭氧可使病變組織內(nèi)HIF-1α 表達(dá)下調(diào)。 Jin 等[19]研究臭氧對(duì)鼻咽癌放療患者血清HIF-1α、VEGF 水平的影響,發(fā)現(xiàn)10~20 μg/mL 臭氧(100 mL)可下調(diào)血清中HIF-1α、VEGF 水平。因此,下一步擬通過增加樣本量、改變臭氧濃度和劑量等方面研究臭氧對(duì)腫瘤內(nèi)HIF-1α、VEGF 水平及MVD 形成的影響,以期更加全面地評(píng)估其對(duì)改善腫瘤乏氧的可能性。
綜上所述,本研究認(rèn)為臭氧化0.9%氯化鈉溶液瘤內(nèi)單次注射對(duì)腫瘤組織內(nèi)HIF-1α、VEGF 表達(dá)及MVD 形成無(wú)明顯影響, 但多次注射可能導(dǎo)致HIF-1α、VEGF 高表達(dá),MVD 形成呈增加趨勢(shì)。但確切機(jī)制還需進(jìn)一步研究。