BCA-1通過ErK信號通路促進高糖環境下人脂肪間充質干細胞增殖和遷移

孫石柱 王璐璐 姚立杰 張善強 王 冠 李永濤 劉丹陽 沈 雷

齊齊哈爾醫學院基礎醫學院解剖學教研室，黑龍江齊齊哈爾 161006

糖尿病及其并發癥已經成為影響社會發展進步的重要慢性疾病[1]。間充質干細胞（mesenchymal stem cells，MSCs）適合糖尿病等造成的多種組織損傷的修復，是公認的細胞治療領域首選細胞[2]。研究發現，高血糖環境導致MSCs活性降低[3]。脂肪中存在的脂肪間充質干細胞（adipose-derived mesenchymal stem cells，AdMSCs）具有容易獲取等特征[4]。如果在高糖環境下促進hAdMSCs增殖或遷移能力的提高，將有利于hAdMSCs在再生醫學的應用。

B淋巴細胞化學引誘物-1（B-lymphocyte chemical attractants-1，BCA-1）對腫瘤細胞具有很好的促進增殖作用，還具有抗免疫、招募腫瘤細胞歸巢的效果[5]。研究發現，MSCs具有很低的免疫原性，并能逃避宿主免疫系統監視[6]，BCA-1可能對MSCs也發揮逃避免疫的作用。研究發現BCA-1可以促進MSCs分化為成骨細胞[7]，說明MSCs表面有BCA-1的相應受體。雖然缺氧環境下BCA-1能夠促進人骨髓間充質干細胞的增殖或自噬[8]，但是在高糖環境下的相關研究還鮮見報道。

本實驗在細胞高糖模型下，觀察BCA-1刺激的hAdMSCs增殖和遷移的情況，并揭示其作用的分子機制，為hAdMSCs在組織工程或再生醫學的進一步應用奠定研究基礎。

1 材料與方法

1.1 一般材料

人脂肪間充質干細胞（廣州賽業生物科技有限公司）；人BCA-1重組蛋白和人VEGF蛋白ELISA試 劑 盒（美 國R&D公 司）；PD98059（Cell Signaling公司）；細胞增殖試劑盒（CCK8，日本同仁公司）；α-MEM培養基、胎牛血清（fetal bovine serum，FBS，美國Thermo Fisher公司）；多聚甲醛、結晶紫和葡萄糖（上海生工公司）；青-鏈霉素、苯甲基磺酰氟（phenylmethylsulfonyl fluoride，PMSF）、RIPA細胞裂解液、二喹啉甲酸（bicinchoninic acid，BCA）蛋白定量試劑盒（上海碧云天生物科技公司）；小鼠抗人PI3K抗體、小鼠抗人MAPK抗體、小鼠抗人GAPDH抗體、辣根過氧化物酶（horseradish peroxidase，HRP）標記的山羊抗小鼠IgG（英國Abcam公司）。Bio-Rad 550酶標儀（Bio-Rad公司）；BX50型顯微鏡（日本Olympus公司）。

1.2 方法

1.2.1 細胞培養和細胞高糖模型 含10%FBS，1μmol/L青霉素和100U/mL鏈霉素的α-MEM培養基培養hAdMSCs者為hAdMSC基礎培養基。hAdMSC基礎培養基中含30mmol/L葡萄糖則為hAdMSC高糖培養基。以此培養細胞則為細胞高糖模型[9]。

1.2.2 實驗分組 細胞高糖模型下：培養的hAdMSCs為高糖對照組，50μmol/L濃度BCA-1刺激hAdMSCs為高糖BCA-1組，若在hAdMSCs中預先用含100nmol/L的PD98059培養30min，然后再添加50μmol/L BCA-1，則為高糖Erk抑制劑組，正常環境下培養的hAdMSCs為正常對照組。

1.2.3 CCK8實驗 按上述hAdMSCs分組情況，將0.9×104/孔 hAdMSCs接 種 于96孔 板，100μL的hAdMSCs高糖培養基培養48h，每孔加入10μL CCK8，37℃，5%CO2培 養4h，使 用Bio-Rad 550酶標儀，在450nm波長測定樣品吸光度值（absorbance value，A值）。

1.2.4 Transwell細胞遷移實驗 1×104/室hAdMSCs置于Transwell細胞小室內，下層腔室按照實驗分組添加不同試劑或無血清培養基，37℃，5%CO2培養12h后，收集下室液體，800s/min離心5min，收集細胞，并計數穿過細胞小室的hAdMSCs數目（計為a）；擦 除Transwell細 胞 小 室 內hAdMSCs，4%多聚甲醛溶液固定，0.5%結晶紫染色，Image-Pro Plus 6.0.1軟件計算hAdMSCs被結晶紫染色的細胞數目（計為b）。計算hAdMSC遷移率=[（a+b）/1×104]×100%[10]。

1.2.5 ELISA 4.5×106各組hAdMSCs，按照hAdMSC分組情況，37℃，5%CO2，以含1% FBS的hAdMSC高糖培養基繼續培養24h，收集各組hAdMSCs細胞上清液，人VEGF-ELISA試劑盒檢測VEGF含量。

1.2.6 Western blot實驗 按照hAdMSCs分組情況，培養每組5.5×106hAdMSCs，加入RIPA細胞裂解液及1mmol/L PMSF，4℃，12000r/min，離心5min；BCA法測定蛋白濃度。40μg各組蛋白樣品，100V電泳90min；300mA轉至硝酸纖維素薄膜40min；封閉液中封閉60min；添加小鼠抗人PI3K抗體（1∶550）、小鼠抗人MAPK抗體（1∶700）、小鼠抗人GAPDH抗體（1∶900）；4℃孵育12h，使用HRP標記山羊抗小鼠IgG（1∶350），室溫孵育60min；洗膜后，增強化學發光劑（enhanced chemiluminescent agent，ECL）等步驟檢測蛋白表達條帶，Image-Pro Plus 6.0.1軟件分析各蛋白條帶的相對表達量[11]。

1.3 統計學分析

實驗數據采用SPSS 21.0統計學軟件進行統計分析。計量資料以（）表示，組間比較進行方差分析，P＜0.05為差異有統計學意義。

2 結果

2.1 BCA-1促進hAdMSCs增殖

高糖對照組hAdMSCs的A值是正常對照組的0.59倍；相對于高糖對照組，高糖BCA-1組hAdMSCs增殖A值升高1.52倍，差異有高度統計學意義（P＜0.01）；高糖Erk抑制劑組hAdMSCs的A值是高糖BCA-1組的0.71倍，差異有高度統計學意義（P＜0.01），見圖1。

圖1 CCK-8法檢測BCA-1對hAdMSCs增殖的A值

2.2 BCA-1促進hAdMSCs遷移

高糖對照組hAdMSCs遷移率是正常對照組的0.35倍；高糖BCA-1組hAdMSCs遷移率是高糖對照組的1.78倍，差異有統計學意義（P＜0.01）；高糖Erk抑制劑組hAdMSCs遷移率是高糖BCA-1組0.79倍，差異有高度統計學意義（P＜0.01），見圖2。

圖2 Transwell細胞遷移實驗檢測BCA-1對hAdMSCs遷移的影響

2.3 BCA-1促進hAdMSCs中PI3K、MAPK蛋白表達

細胞高糖條件下，各組hAdMSCs的PI3K、MAPK蛋白相對表達量的組間比較差異均有高度統計學意義（P＜0.01）；高糖Erk抑制劑組hAdMSCs的PI3K蛋白和MAPK相對表達量分別是BCA-1組的0.49倍和0.46倍，差異有高度統計學意義（P＜0.01），見圖3。

圖3 Western blot檢測BCA-1對hAdMSC的PI3K、MAPK蛋白表達的影響

2.4 BCA-1促進hAdMSCs表達VEGF蛋白

高糖對照組VEGF蛋白是正常對照組的1.87倍，差異有高度統計學意義（P＜0.01）。高糖BCA-1組VEGF蛋白是高糖對照組的2.51倍，差異有高度統計學意義（P＜0.01）；高糖Erk抑制劑組VEGF蛋白含量是高糖BCA-1組hAdMSCs的0.35倍，差異有高度統計學意義（P＜0.01），見表1。

3 討論

脂肪組織是分布于人體比較廣泛的結締組織。研究發現，脂肪組織含有多分化性能，參與組織再生修復能力的細胞為脂肪間充質干細胞（human adipose-derived mesenchymal stem cells，hAdMSCs）。hAdMSCs獲得比較容易，含量豐富，在骨和軟骨、心血管損傷修復等領域起到“種子細胞”的作用[4]。高血糖會抑制宿主細胞生物活性，導致MSCs等細胞出現低增殖、遷移能力下降、能量代謝障礙等問題，不利于組織再生修復。如果在高糖環境下提高MSCs增殖或歸巢等能力，將對保護MSCs，移植MSCs發揮組織再生功能形成新策略。

表1 BCA-1促進hAdMSCs表達VEGF蛋白（±s，pg/mL，n=24）

表1 BCA-1促進hAdMSCs表達VEGF蛋白（±s，pg/mL，n=24）

注：與正常對照組比較，##P＜0.01；與高糖對照組比較，#P＜0.01；與高糖BCA-1組比較，*P＜0.01

指標 正常對照組 高糖對照組 高糖BCA-1組 高糖Erk抑制劑組VEGF 0.33±0.19 0.62±0.10## 1.57±0.64# 0.61±0.42*

趨化因子是具有調節細胞增殖、分化、促進細胞歸巢能力的肽類家族[12]。B淋巴細胞化學引誘物（BCA-1）與基質細胞衍生因子-1（stromal cell derived factor-1，SDF-1）的分子結構類似，同屬于趨化因子家族中的CXC亞科[13]。BCA-1具有炎癥介質作用，又稱為趨化因子13（CXCL-13），BCA-1與細胞表面趨化因子受體5（CXCR5）結合，除了對損傷組織周圍MSCs等細胞具有招募作用外，還能促進MSCs等干細胞旁分泌VEGF等因子，在傷口愈合中有重要意義[14]。

本實驗在細胞水平發現，高糖對照組hAdMSCs增殖A值低于正常對照組，這是由于高濃度葡萄糖會干擾線粒體能量合成或釋放，細胞內產生大量活性氧等氧自由基，多余的氧自由基則會干擾細胞內呼吸鏈，形成惡性循環而導致細胞增殖能力降低[15]。添加50μmol/L的BCA-1后，hAdMSCs增殖A值升高，提示BCA-1可促進細胞增殖，對維持細胞抗高糖性損傷具有積極意義。報道發現，BCA-1能 促 進MSCs成 骨 分 化[16]，說 明MSCs膜上有BCA-1的相應受體。因此，本實驗沒有利用PCR等實驗技術觀察MSCs表面的BCA-1受體，但是通過BCA-1促進細胞增殖能力的提高，提示BCA-1能夠結合hAdMSCs表面的相應受體。

臨床觀察到慢性關節炎的關節囊滑膜層結締組織中會顯著表達BCA-1蛋白，并發現在高表達的BCA-1周圍，白細胞、巨噬細胞等細胞集中分布，說明BCA-1能夠招募白細胞、巨噬細胞等免疫性細胞歸巢和增殖，造成局部炎癥反應[17]。本實驗也發現，50μmol/L BCA-1均會導致hAdMSCs遷移率增加，隨著BCA-1濃度的增加，hAdMSCs遷移率逐漸升高，說明BCA-1作用于hAdMSCs表面的受體，不僅能促進hAdMSCs分化或增殖，更能夠招募hAdMSCs歸巢。這與乳腺癌等惡性腫瘤細胞較快生長，易造成局部形成乏氧環境。乏氧環境的腫瘤細胞分泌BCA-1不僅能發揮抑制宿主免疫監視、逃避免疫的作用，更能促進腫瘤細胞增生、遷移的研究結果相一致[18]。BCA-1抑制宿主免疫監視，招募hAdMSCs歸巢到腫瘤組織，hAdMSCs是否受到腫瘤微環境的影響分化為血管內皮細胞或腫瘤干細胞，促進腫瘤發生或轉移[19]，還需要深入探索。

糖尿病患者的高血糖環境會導致小血管、線粒體病變，形成細胞或組織乏氧狀態。本實驗發現在高糖條件下BCA-1組hAdMSCs增殖活性提高的現象與學者在腫瘤細胞、炎癥細胞的研究結果基本一致[19]。添加了Erk抑制劑的各組hAdMSCs增殖能力相應降低，提示細胞外信號調節激酶（extracellular signal regulated kinases，Erk）信號通路可能在BCA-1對hAdMSCs的作用中起到一定作用。PD98059抑制了Erk蛋白后，hAdMSCs細胞增殖能力降低，同時下游MAPK蛋白表達明顯降低，這可能是由于BCA-1結合在hAdMSCs表面的CXCR5受體，激活了PI3K蛋白激酶，上調Erk激酶，再活化下游的MAPK蛋白，最后啟動VEGF蛋白的分泌。VEGF能夠反作用于hAdMSCs，促使細胞抵抗高糖損傷，維護細胞生物活性[20]。研究表明，BCA-1能激活Erk通路，促進乳腺癌MCF-7細胞移植的小鼠腫瘤模型的腫瘤體積增大，乳腺癌細胞增殖和血管新生，加速腫瘤的血管轉移[21]。本研究也不排除BCA-1可能還具有激活NF-κB誘導激酶（NF-κB induced kinase，NIK）信號通路等作用[22]，與BCA-1有關的相關分子機制還需要借助分子生物學、動物模型等實驗進行深入驗證。

綜上所述，在高糖環境中，BCA-1結合hAdMSCs表面受體，激活細胞內PI3K-Erk-MAPK信號通路，促進hAdMSCs旁分泌VEGF蛋白，發揮了保護hAdMSCs抗高糖損傷的效果。