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基于CaCC的TRPV4調(diào)節(jié)劑高通量篩選細(xì)胞模型的建立

2020-11-26 04:00:26肖云萍解宇浩張嘉琪洪啟元郝峰王國慶
解放軍醫(yī)學(xué)雜志 2020年10期
關(guān)鍵詞:檢測模型

肖云萍,解宇浩,張嘉琪,洪啟元,郝峰*,王國慶

1吉林醫(yī)藥學(xué)院檢驗學(xué)院,吉林省吉林市 132013;2北華大學(xué)醫(yī)學(xué)技術(shù)學(xué)院,吉林省吉林市 132013;3吉林醫(yī)藥學(xué)院公共衛(wèi)生學(xué)院,吉林省吉林市 132013

瞬時受體電位離子通道(transient receptor potential,TRP)是一種在生物體內(nèi)分布廣泛的非電壓依賴的非選擇性陽離子通道。TR P家族分為7個亞族:TRPA、TRPC、TRPM、TRPML、TRPN、TRPP及TRPV[1]。瞬時受體電位香草酸亞型4(transient receptor potential vanilloid 4,TRPV4)是TRPV亞家族的成員,廣泛分布于心臟、大腦、腎臟、肺臟、肝臟、骨組織及皮膚等[2],參與許多生理、病理過程,可能是多種疾病的潛在治療靶點(diǎn)。TRPV4調(diào)節(jié)劑在許多生理和病理過程中起著重要作用,如TRPV4激活劑可以減少動脈粥樣硬化斑塊的形成,促進(jìn)成年海馬齒回神經(jīng)干細(xì)胞的增殖,以及促進(jìn)血管和動脈的生成[3-5];TRPV4拮抗劑可治療水腫、疼痛、胃腸道疾病和肺部疾病,如咳嗽、支氣管收縮、肺動脈高壓和急性肺損傷等[6]。然而,大多數(shù)TRPV4的激活劑和抑制劑存在選擇性不強(qiáng)、效力不佳等問題。因此,篩選TRPV4特異性調(diào)節(jié)劑具有重要意義。TRPV4對Ca2+具有選擇通透性,其激活會引起Ca2+內(nèi)流,從而增加細(xì)胞內(nèi)游離Ca2+的濃度[7]。鈣激活氯離子通道蛋白1(anoctamin 1, ANO1)是鈣激活氯離子通道(calcium-activated chloride channels,CaCC)的分子基礎(chǔ)之一,在細(xì)胞內(nèi)Ca2+濃度升高的作用下開放并向細(xì)胞內(nèi)轉(zhuǎn)運(yùn)Cl-、I-等陰離子[7]。YFP-H148Q/I152L是遇I-會發(fā)生熒光淬滅的黃色熒光蛋白雙突變體[8]。因此,本研究利用穩(wěn)定共轉(zhuǎn)染ANO1和YFP-H148Q/I152L的Fischer大鼠甲狀腺濾泡上皮(Fischer rat thyroid,F(xiàn)RT)細(xì)胞系構(gòu)建基于CaCC靶向TRPV4的細(xì)胞篩選模型。

1 材料與方法

1.1 實驗試劑及儀器 FRT細(xì)胞為本實驗室保存;ANO1真核表達(dá)載體和YFP-H148Q/I152L真核表達(dá)載體由本實驗室前期構(gòu)建[9-10]。Lipofectamine 3000脂質(zhì)體、Zeocin抗生素、G418抗生素、TRIzol試劑盒(美國Invitrogen公司);兔抗大鼠TRPV4多克隆抗體、兔抗大鼠β-actin單克隆抗體、山羊抗兔IgG(英國Abcam公司);RT-PCR試劑盒、全蛋白提取試劑盒、BCA蛋白測定試劑盒、質(zhì)粒提取試劑盒(北京全式金生物技術(shù)有限公司);ECL檢測試劑盒(北京索萊寶科技有限公司);F-12基本培養(yǎng)基、Eact、NFA、GSK1016790A、4α-PDD、 RN-1747、GSK2193874、HC-067047、RN-1734、Fura-2/AM(美國Sigma公司);胎牛血清(以色列Biological Industries公司);PCR引物、切膠回收試劑盒(生工生物工程股份有限公司)。倒置熒光顯微鏡(日本Nikon公司);PCR儀(美國ABI公司);FLUOstar多功能酶標(biāo)儀(德國BMG公司);CO2培養(yǎng)箱(日本Panasonic公司);凝膠成像儀(美國Bio-Rad公司);Nanodrop 2000微量分光光度計(美國Thermo Fisher公司)。

1.2 RT-PCR檢測FRT細(xì)胞中TRPV4 mRNA的表達(dá) 取生長狀態(tài)良好的FRT細(xì)胞株,按照TRIzol試劑盒說明書提取總RNA,應(yīng)用Nanodrop 2000檢測總RNA的濃度,測定RNA溶液A260/A280的比值范圍。對提取的RNA進(jìn)行瓊脂糖凝膠電泳,檢測總RNA的完整性。

本研究設(shè)計合成了8對特異性引物:TRPV1~ TRPV6和β-actin,其中TRPV4設(shè)計了2對引物:TRPV4-1和TRPV4-2。TRPV4-1、TRPV4-2及管家基因β-actin的引物序列如表1所示。按照2×EasyTaq PCR SuperMix試劑盒說明書進(jìn)行PCR擴(kuò)增,將所得PCR產(chǎn)物進(jìn)行瓊脂糖凝膠電泳,利用凝膠成像儀曝光成像。將目的條帶切下,采用切膠回收試劑盒對目的條帶進(jìn)行切膠回收,回收后的DNA溶液進(jìn)行核酸測序。

1.3 Western blotting檢測FRT細(xì)胞中TRPV4蛋白的表達(dá) 取生長狀態(tài)良好的FRT細(xì)胞,經(jīng)RIPA裂解液裂解,提取總蛋白。采用SDS-PAGE凝膠電泳分離蛋白,轉(zhuǎn)膜、封閉后分別孵育兔抗大鼠TRPV4多克隆抗體(1:2000)、兔抗大鼠β-actin單克隆抗體(作為內(nèi)參),4 ℃下孵育過夜。次日,PBST洗膜,室溫孵育HRP標(biāo)記的山羊抗兔IgG(1:500)2h,PBST洗膜,采用ECL化學(xué)發(fā)光法顯色,暗室顯影技術(shù)采集化學(xué)發(fā)光圖像。

表1 TRPV4-1、TRPV4-2及β-actin引物序列Tab.1 Primer sequence of TRPV4-1, TRPV4-2 and β-actin

1.4 構(gòu)建共表達(dá)ANO1和YFP-H148Q/I152L的FRT細(xì)胞模型

1.4.1 最適抗生素濃度的選擇 取生長狀態(tài)良好的FRT細(xì)胞,分別加入濃度為1500、1000、800、600、400、200、100 μg/ml的Zeocin抗生素,培養(yǎng)2周后細(xì)胞全部死亡的最低濃度為Zeocin抗生素篩選的最適濃度。同理篩選G418抗生素的最適濃度。

1.4.2 脂質(zhì)體轉(zhuǎn)染法構(gòu)建共表達(dá)ANO1和YFPH148Q/I152L的細(xì)胞株 取生長狀態(tài)良好的FRT細(xì)胞,按照Lipofectamine 3000說明書步驟將ANO1轉(zhuǎn)染到FRT細(xì)胞中,2 d后于倒置熒光顯微鏡下觀察。利用最適濃度的Zeocin抗生素進(jìn)行篩選,3周后挑取倒置熒光顯微鏡下可見細(xì)胞膜上表達(dá)綠色熒光的細(xì)胞進(jìn)行有限稀釋。經(jīng)過多次有限稀釋得到穩(wěn)定轉(zhuǎn)染ANO1的單克隆細(xì)胞并進(jìn)行擴(kuò)大培養(yǎng),獲得表達(dá)ANO1的FRT細(xì)胞株。同理,將YFP-H148Q/I152L轉(zhuǎn)染到已穩(wěn)定表達(dá)ANO1的FRT細(xì)胞中,應(yīng)用最適濃度的G418抗生素進(jìn)行篩選,挑取倒置熒光顯微鏡下細(xì)胞膜上和細(xì)胞質(zhì)中均可見綠色熒光的單細(xì)胞克隆團(tuán),擴(kuò)大培養(yǎng)后獲得共表達(dá)ANO1和YFP-H148Q/I152L的FRT細(xì)胞株。

1.5 熒光淬滅動力學(xué)實驗驗證FRT細(xì)胞模型的有效性及功能

1.5.1 有效性驗證 取生長狀態(tài)良好的共表達(dá)ANO1和YFP-H148Q/I152L的FRT細(xì)胞,分為實驗組和對照組,每組3個復(fù)孔。實驗組加入120 μl含有ANO1特異性激活劑Eact(10 μmol/L)及高濃度碘離子的PBS溶液,對照組加入鈣激活氯離子通道抑制劑NFA(300 μmol/L)孵育10 min,再加入120 μl含高濃度碘離子的PBS溶液,采用FLUOstar多功能酶標(biāo)儀(發(fā)射波長540 nm,激發(fā)波長500 nm)檢測相對熒光強(qiáng)度(RFU)的動態(tài)變化。以5個點(diǎn)/s的速度動態(tài)檢測RFU,其中前2 s為基線,2 s后以200 μl/s的速度向?qū)嶒灲M孔中加入120 μl含有Eact及高濃度碘離子的PBS溶液,向?qū)φ战M孔中加入120 μl含高濃度碘離子的PBS溶液。

1.5.2 功能驗證 將生長狀態(tài)良好的共表達(dá)ANO1和YFP-H148Q/I152L的FRT細(xì)胞分為4組,每組3個復(fù)孔。其中3組加入含TRPV4激活劑GSK1016790A、4α-PDD、RN-1747及高濃度碘離子的PBS溶液,另外1組加入含TRPV4抑制劑HC-067047孵育10 min,再加入含高濃度碘離子的PBS溶液,采用FLUOstar多功能酶標(biāo)儀檢測RFU的動態(tài)變化,利用Excel軟件對原始數(shù)據(jù)進(jìn)行宏計算,得到斜率(Slope)值。

將生長狀態(tài)良好的共表達(dá)ANO1和YFP-H148Q/I152L的FRT細(xì)胞分為6組,采用倍比稀釋法獲得不同濃度的激活劑和抑制劑。其中3組分別加入不同濃度的TRPV4激活劑GSK1016790A、4α-PDD、RN-1747,采用多功能酶標(biāo)儀進(jìn)行檢測,加入含高濃度碘離子的PBS溶液,記錄RFU的動態(tài)變化,計算Slope值。另外3組加入不同濃度的TRPV4抑制劑GSK2193874、HC-067047、RN-1734孵育10 min,采用多功能酶標(biāo)儀進(jìn)行檢測,加入含有GSK1016790A及高濃度碘離子的PBS溶液,記錄RFU的動態(tài)變化,計算Slope值。

1.6 Fura-2熒光探針法檢測FRT細(xì)胞模型中Ca2+的濃度 將穩(wěn)定共表達(dá)ANO1和YFP-H148Q/I152L的FRT細(xì)胞制成細(xì)胞懸液,加入Fura-2/AM,終濃度為5 μmol/L,37 ℃下孵育30 min。洗滌細(xì)胞,離心后制成細(xì)胞懸液。采用FLUOstar多功能酶標(biāo)儀(激發(fā)波長為340 nm和380 nm,發(fā)射波長510 nm)檢測,記錄靜息時和加入不同濃度GSK1016790A后340 nm/380 nm的熒光比值。加入Triton X-100及EGTA,測定最大熒光比值和最小熒光比值,計算Ca2+濃度。

1.7 FRT細(xì)胞模型的Z'因子評估 Z'因子是評估高通量篩選的一種重要指標(biāo),計算公式如下:Z'=1-3×(|SDpositive|+|SDnegtive|)/(|Meanpositive|-|Meannegative|)[11]。將96孔板中的6列加入10 μmol/L GSK1016790A作為陽性對照(positive),另外6列加入PBS溶液作為陰性對照(negative),檢測96孔板的Z'因子值。

1.8 統(tǒng)計學(xué)處理 采用GraphPad Prism 8.0軟件對激活劑和抑制劑的劑量依賴關(guān)系進(jìn)行非線性曲線擬合分析,繪制模型對不同激活劑和抑制劑的濃度依賴曲線,并計算半數(shù)有效濃度(EC50)、半數(shù)抑制濃度(IC50),統(tǒng)計分析采用單因素方差分析和Mann-Whitney檢驗,所有實驗均重復(fù)3次。P<0.05為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。

2 結(jié) 果

2.1 FRT細(xì)胞中TRPV4 mRNA的表達(dá)情況 FRT細(xì)胞總RNA濃度為413.2 ng/μl,總RNA溶液的A260/A280為1.83。瓊脂糖凝膠電泳結(jié)果顯示,總RNA完整性良好,可用于進(jìn)一步cDNA的合成(圖1A)。RT-PCR檢測結(jié)果顯示,TRPV4-1、TRPV4-2和β-actin分別在395 bp、455 bp和260 bp處出現(xiàn)特異性條帶,與預(yù)期的目的產(chǎn)物大小一致(圖1B)。TRPV1、TRPV2、TRPV3、TRPV5、TRPV6特異性引物均未擴(kuò)增出 條帶。

將TRPV4條帶的切膠回收產(chǎn)物送生工生物工程股份有限公司測序,測序結(jié)果在Chromas軟件上進(jìn)行分析,峰圖結(jié)果如圖1C所示,無重疊峰,其中豎線位置為內(nèi)含子。所測核苷酸序列采用美國生物技術(shù)信息中心(national center for biotechnology informatio,NCBI)的序列比對工具(basic local alignment search tool,BLAST)進(jìn)行比對,結(jié)果顯示其與GenBank數(shù)據(jù)庫收錄的TRPV4基因序列相似性為100%,表明所克隆的DNA片段即為目的基因片段,F(xiàn)RT細(xì)胞在mRNA水平上內(nèi)源性表達(dá)TRPV4 (圖1D)。

圖1 FRT細(xì)胞中TRPV4 mRNA的表達(dá)情況Fig.1 Expression of TRPV4 mRNA in FRT cells

2.2 FRT細(xì)胞中TRPV4蛋白的表達(dá)情況 Western blotting檢測結(jié)果顯示,F(xiàn)RT細(xì)胞中有相對分子量為98 kD的TRPV4蛋白的表達(dá)(圖2),表明FRT細(xì)胞在蛋白水平上內(nèi)源性表達(dá)TRPV4蛋白。

2.3 共表達(dá)ANO1和YFP-H148Q/I152L的FRT細(xì)胞模型構(gòu)建原理及結(jié)果 當(dāng)TRPV4通道被激活時,Ca2+內(nèi)流增加細(xì)胞內(nèi)Ca2+濃度,從而引起CaCC的開放,細(xì)胞外I-被轉(zhuǎn)運(yùn)到細(xì)胞質(zhì)內(nèi),使黃色熒光蛋白YFP-H148Q/I152L發(fā)生熒光淬滅,測定原理如圖3所示。

圖2 FRT細(xì)胞中TRPV4蛋白的表達(dá)情況(Western blotting)Fig. 2 Expression of TRPV4 protein in FRT cells (Western blotting)

Zeocin、G418抗生素篩選的最適濃度均為1000 μg/ml。倒置熒光顯微鏡下清晰可見,F(xiàn)RT細(xì)胞膜上呈綠色熒光,表明ANO1表達(dá)在細(xì)胞膜上(圖4A);FRT細(xì)胞質(zhì)中和細(xì)胞膜上均可見綠色熒光,表明YFP-H148Q/I152L表達(dá)在細(xì)胞質(zhì)中(圖4B)。即成功構(gòu)建了穩(wěn)定共表達(dá)ANO1和YFP-H148Q/I152L的FRT細(xì)胞株。

圖3 基于CaCC靶向TRPV4的細(xì)胞篩選模型構(gòu)建原理Fig. 3 Construction principle of the screening cell model targeting TRPV4 based on CaCC

圖4 共表達(dá)ANO1和YFP-H148Q/I152L細(xì)胞模型的構(gòu)建結(jié)果(×40)Fig.4 Construction of ANO1 and YFP-H148Q/I152L co-expression cell model (×40)

酶標(biāo)儀檢測結(jié)果顯示,實驗組R F U明顯下降,表明ANO1開放,I-內(nèi)流,黃色熒光蛋白發(fā)生淬滅;對照組RFU無明顯變化,表明NFA抑制了ANO1的開放,如圖4C所示。該結(jié)果表明細(xì)胞模型構(gòu)建成功。

2.4 共表達(dá)ANO1和YFP-H148Q/I152L的FRT細(xì)胞模型的功能驗證 加入TRPV4激活劑GSK1016790A、4α-PDD、RN-1747后,熒光迅速淬滅。而加入TRPV4抑制劑HC-067047后,熒光未淬滅(圖5A)。加入激活劑組熒光Slope值明顯高于加入抑制劑組,各激活劑組與抑制劑組差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.001,圖5B),表明模型具有篩選TRPV4調(diào)節(jié)劑的功能。

在加入不同濃度的TRP V4激活劑和抑制劑后,熒光信號呈現(xiàn)不同的變化。激活劑和抑制劑的濃度與熒光Slope值呈現(xiàn)劑量-效應(yīng)依賴關(guān)系。采用GraphPad Prism 8.0軟件進(jìn)行非線性曲線擬合分析,濃度取對數(shù)作圖,得到濃度效應(yīng)曲線:GSK1016790A、4α-PDD、RN-1747的EC50分別為9.17、50.06、147.50 μmol/L(圖6A),GSK2193874、HC-067047、RN-1734的IC50分別為5.74、10.91、72.49 μmol/L(圖6B)。該結(jié)果表明激活劑和抑制劑對TRPV4通道的作用具有濃度依賴性,證實了該模型可用于TRPV4調(diào)節(jié)劑的篩選。

圖5 FRT細(xì)胞模型篩選TRPV4調(diào)節(jié)劑的功能鑒定(n=3)Fig.5 Functional identification of FRT cell model screening TRPV4 modulator (n=3)

2.5 共表達(dá)ANO1和YFP-H148Q/I152L的FRT細(xì)胞中Ca2+濃度的變化情況 加入不同濃度的GSK1016790A后,GSK1016790A濃度越高,RFU下降的幅度越大,熒光Slope值越大,如圖7A所示,熒光Slope值與GSK1016790A濃度呈劑量依賴關(guān)系。同時細(xì)胞內(nèi)Ca2+濃度瞬時升高,隨著GSK1016790A濃度的升高,細(xì)胞質(zhì)內(nèi)Ca2+濃度隨之升高,Ca2+濃度與GSK1016790A濃度呈劑量依賴關(guān)系(7B);熒光Slope值隨著細(xì)胞質(zhì)內(nèi)Ca2+濃度增加而增大,Ca2+濃度越大,熒光Slope值越大,如圖7C所示,F(xiàn)RT細(xì)胞模型熒光淬滅Slope值與細(xì)胞內(nèi)Ca2+濃度呈正相關(guān)。

2.6 共表達(dá)ANO1和YFP-H148Q/I152L的FRT細(xì)胞模型的Z'因子評估 結(jié)果顯示,SDpositive值為5.06,SDnegtive值為1.57,Meanpositive值為78.2,Meannegative值為5.07,根據(jù)公式計算得到Z'因子為0.728(圖8)。一般認(rèn)為當(dāng)Z'因子>0.5時,該高通量方法比較理想,因此建立的細(xì)胞模型適用于TRPV4調(diào)節(jié)劑的高通量篩選。

圖6 TRPV4激活劑及抑制劑的劑量依賴曲線(n=3)Fig.6 Dose-dependent curves of TRPV4 activators and inhibitors (n=3)

圖7 熒光Slope值與細(xì)胞內(nèi)Ca2+濃度的關(guān)系(n=3)Fig.7 Relationship between fluorescence slope value and intracellular Ca2+ concentration (n=3)

3 討 論

圖8 共表達(dá)ANO1和YFP-H148Q/I152L的FRT細(xì)胞模型的Z'因子評估(n=48)Fig.8 Assessment of Z' factor in FRT cell model that coexpression of ANO1 and YFP-H148Q/I152L (n=48)

近年來,隨著藥物研發(fā)技術(shù)的迅速發(fā)展,離子通道作為重要的藥物靶點(diǎn)而備受關(guān)注[12-13]。 TRPV4作為離子通道之一,廣泛分布在消化、神經(jīng)、呼吸和心腦血管等系統(tǒng)[2],可被溫度、機(jī)械刺激、滲透壓等因素激活,引起Ca2+的流動,通過對Ca2+和細(xì)胞內(nèi)信號轉(zhuǎn)導(dǎo)通路的調(diào)控,影響細(xì)胞的增殖、分化、遷移和凋亡等,進(jìn)而在疾病的發(fā)生發(fā)展過程中發(fā)揮重要作用[14]。研究表明,TRPV4調(diào)節(jié)劑與動脈粥樣硬化、纖維化、疼痛、炎癥、腫瘤等密切相關(guān)[3,6,15-17]。但目前已發(fā)現(xiàn)的TRPV4調(diào)節(jié)劑均存在選擇性不佳等問題,且尚無高通量篩選TRPV4調(diào)節(jié)劑的方法,因此研究篩選TRPV4調(diào)節(jié)劑的方法具有重要意義。

目前,篩選離子通道調(diào)節(jié)劑的方法主要有電生理技術(shù)和熒光染料法等,前者因具有直接、靈敏的優(yōu)點(diǎn)而被公認(rèn)為離子通道功能檢測的“金標(biāo)準(zhǔn)”[18],但其操作繁瑣、成本昂貴,對操作人員技術(shù)要求高,不適用于高通量藥物篩選。而熒光染料如Fluo-3、Fluo-4等[19]與Ca2+結(jié)合后,染料熒光強(qiáng)度增強(qiáng),能夠直觀、實時檢測細(xì)胞內(nèi)Ca2+濃度的變化,但操作復(fù)雜,試劑費(fèi)用高,實驗周期長,限制了TRPV4調(diào)節(jié)劑的高通量篩選。

常用的篩選離子通道調(diào)節(jié)劑的方法大多不適用于TRPV4大量化合物庫的高通量篩選。因此,本研究建立了一種基于CaCC的高通量篩選TRPV4調(diào)節(jié)劑的方法,利用TRPV4可以升高細(xì)胞內(nèi)Ca2+濃度進(jìn)而開放CaCC,細(xì)胞外I-轉(zhuǎn)運(yùn)至細(xì)胞內(nèi),胞內(nèi)黃色熒光蛋白YFP-H148Q/I152L的熒光發(fā)生淬滅的原理,檢測熒光信號可實現(xiàn)對TRPV4調(diào)節(jié)劑的高通量篩選。FRT細(xì)胞具有貼壁緊、胰酶不易消化、生長速度適中、較CHO和COS-7等細(xì)胞更易使膜蛋白表達(dá)的特點(diǎn),常用于研究氯離子通道及其調(diào)節(jié)劑的高通量篩選[20],因此本研究選擇FRT細(xì)胞系作為目的細(xì)胞進(jìn)行建模。利用熒光倒置顯微鏡觀察共表達(dá)ANO1和YFP-H148Q/I152L的FRT細(xì)胞株,ANO1表達(dá)在細(xì)胞膜上,YFP-H148Q/I152L表達(dá)在細(xì)胞質(zhì)內(nèi),若表達(dá)位置錯誤,F(xiàn)RT細(xì)胞將無法轉(zhuǎn)運(yùn)細(xì)胞外I-且不具備熒光淬滅的生物學(xué)功能,通過熒光淬滅動力學(xué)實驗進(jìn)一步驗證了ANO1表達(dá)在細(xì)胞膜上而非細(xì)胞外,證實了ANO1定位和功能的準(zhǔn)確性。同時,本模型可敏感檢測細(xì)胞內(nèi)Ca2+的濃度,用熒光Slope值表征細(xì)胞內(nèi)Ca2+濃度,比Fura-2法具有更大的信號窗口且可以更直觀地反映細(xì)胞內(nèi)Ca2+濃度的變化情況。本模型經(jīng)反復(fù)傳代至30代以上,依然保持其穩(wěn)定性,且Z'因子為0.728,能滿足高通量篩選的要求。

本模型只是TRPV4調(diào)節(jié)劑的初篩方法,尚存在一系列不足。本模型在用于TRPV4激活劑的篩選時,可能會篩選出CaCC通道或其他內(nèi)源性Ca2+通道的激活劑,篩選之后還需要通過后續(xù)實驗區(qū)分出假陽性結(jié)果,可應(yīng)用不同激活劑和抑制劑組合在一定程度上區(qū)分結(jié)果的真?zhèn)危糜谝种苿┖Y選時則沒有此問題。由于本模型內(nèi)源性表達(dá)TRPV4,并不表達(dá)TRPV通道的其他蛋白,說明本研究篩選的激活劑和抑制劑均作用于TRPV4,但對于篩選的激活劑和抑制劑是否作用于TRPV通道的其他蛋白仍需后續(xù)實驗進(jìn)一步驗證。

綜上所述,本模型是高通量篩選TRPV4調(diào)節(jié)劑的新方法,可以快速敏感地檢測細(xì)胞內(nèi)鈣信號的變化,實現(xiàn)對TRPV4調(diào)節(jié)劑的高通量篩選,具有篩選周期短、操作簡便、成本低的優(yōu)點(diǎn),為進(jìn)一步研究和開發(fā)TRPV4新型藥物提供了初篩方法,還為其他離子通道調(diào)節(jié)劑的篩選提供了新思路,具有相當(dāng)廣闊的應(yīng)用前景。

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重要模型『一線三等角』
重尾非線性自回歸模型自加權(quán)M-估計的漸近分布
3D打印中的模型分割與打包
小波變換在PCB缺陷檢測中的應(yīng)用
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