家兔黃艾美耳球蟲病概述

鄭若愚，孫安然，楊光友

（1.四川農業大學動物醫學院，四川 成都 611130；2.四川省自貢市大安區農業農村局，四川 自貢 643010）

黃艾美耳球蟲是寄生在家兔小腸后部、盲腸及結腸部的強致病性腸道球蟲，能引起宿主生長發育受阻甚至死亡，對養兔業危害極大。

1 病原形態

黃艾美耳球蟲卵囊似倒梨形，前端較后端鈍，前半部寬于后半部。囊壁為兩層，外層較厚且顏色淺，胚孔內陷，卵囊壁在胚孔周圍增厚，無卵囊殘體。

卵囊大小存在蟲株差異，河北株黃艾美耳球蟲卵囊大小為（2535）×（18～24）μm，平均大小為30～21 μm；河南 株卵囊大小是（22.5～35）×（19.8～26.3）μm，平均30.9～22.2 μm。

2 生活史

黃艾美耳球蟲發育階段由裂殖生殖、配子生殖和孢子生殖三部分組成。

2.1 裂殖生殖 早期學者以裂殖體形狀大小為依據，運用光鏡技術將裂殖生殖分為5代，其第2代裂殖體稀疏分布，而第3代裂殖體成團分布，第4代裂殖體則形狀細長。用電鏡技術同樣可觀察區分出5代裂殖生殖。有學者以裂殖體的寄生部位為依據將黃艾美耳球蟲劃分為4 代，第1 代裂殖體于感染后60～72 h出現于小腸腺上皮，第2、3、4代裂殖體于感染后84、96、144 h出現在盲腸、結腸的腺上皮、黏膜上皮和腺上皮。

根據裂殖體的數量和形態大小，可將裂殖體劃分為細型和粗型2種。有研究提到感染黃艾美耳球蟲108 h后，觀察到一種小型裂殖體，其接近于之前所劃分的粗型裂殖體。若用電鏡觀察，也將裂殖體分為A型（細型）和B型（粗形）。

2.2 配子生殖 黃艾美耳球蟲第4 代裂殖子侵入新的寄主細胞或原寄生細胞中開始有性生殖。

第4代裂殖子發育為滋養體。滋養體一部分發育為小配子體，另一部分發育為大配子體。二者區別在于前者核小，核仁不明顯，而后者核大，核仁明顯。

2.2.1 小配子體發育 小配子體發育過程分為小配子體生長階段和小配子體分化階段。

在小配子體生長階段，通過內部產生大量裂痕，使得小配子體表面積增大，且通過本質為有絲分裂的核分裂產生越來越多的紫色核，變為多核體。隨后，產生的核逐步向周邊的限制膜移動，細胞中央已無細胞核。

核分裂完成后，進入到小配子體分化階段，在電鏡下觀察到小配子體分化順序是：核上方出現兩個中心粒，中心粒轉化為基粒，兩根鞭毛分別從基粒長出，其長出部位呈球形、隆起。隨著鞭毛的長出，小配子體的核被分為兩個部分，包括含濃染色質的濃染部和含染色質較少的淡染部。最后核被拉長分離，濃染部成為小配子的體部，淡染部作為核留在母體。同時隆起部位拉長形成頂體，至此小配子發育成熟，分化完成。

黃艾美耳球蟲小配子體有典型的微孔存在，這是蟲體吸收營養和排泄廢物的途徑。小配子體的發育過程始終在帶蟲空泡內進行。帶蟲空泡是內含基質、不定形物質與豐富泡內小管的發達單層膜體。小配子體分化完成后分散于各發達的泡內小管間。泡內小管可能也是蟲體獲取營養的另一途徑。

2.2.2 大配子體發育過程 早期大配子為球形，直徑為52 μm，成熟的大配子體大小為（23～23.9）μm×（23.7～24.4）μm，平均23.4 μm×24 μm。大配子體被單層膜，中央有一深紅色核，核中央有一核仁。

隨著大配子體的逐漸發育，胞質中出現成囊顆粒前體，這些顆粒起初形狀不規則，較為分散，隨后逐漸向限制膜移動，移動過程中體積增大，致密度增強，成為成囊顆粒Ⅱ（WFBⅡ）與成囊顆粒Ⅰ（WFBⅠ）。

WFBⅠ形成較晚，分布于WFBⅡ的外側。大配子體發育成熟的標志是WFBⅠ與WFBⅡ逐步向細胞周邊移動，WFBⅠ先到達限制膜內側，隨后WFBⅡ移動至WFBⅠ內側，二者聚集整齊排列于限制膜內層。至此大配子體發育成熟。

2.3 卵囊形成 小配子成熟后從小配子體游出，與發育成熟的大配子結合為合子，大小合子結合后，卵囊壁開始形成。

一般認為盲腸基部、圓小囊、蚓突，結腸均為卵囊形成的部位，其中盲腸基部是卵囊形成的主要部位。兔感染黃艾美耳球蟲后發病潛隱期為8～9d，卵囊排出高峰期為10～11 d。

3 致病性

黃艾美耳球蟲屬高致病性腸道球蟲，主要寄生于兔的空腸、回腸、盲腸近端和結腸的絨毛和腺上皮細胞中，配子體主要破壞盲腸黏膜的隱窩細胞。

感染兔空腸、回腸、盲腸、結腸均有病變，其中盲腸病變最嚴重，幾乎所有的腸腺細胞均出現大配子或卵囊寄生，這是因為該球蟲的配子生殖主要發生于盲腸的腸腺上皮細胞。腸道杯狀細胞分泌旺盛，使得腸黏膜表面被覆假膜，腸絨毛也均出現萎縮、腫脹等。

使用高劑量卵囊感染19日齡前的哺乳仔兔，少數實驗兔排出少量卵囊，大部分實驗兔不排出卵囊。同劑量感染22日齡以后的仔兔，則大量兔排出卵囊，且卵囊數量在一定范圍內與感染兔的日齡呈正相關。19 日齡前的哺乳仔兔主要由母乳喂養，仔兔可通過母乳獲得母源抗體，對球蟲有一定的抗性，另外子孢子順利實施黏附和入侵需要對氨基苯甲酸發揮重要作用，而母乳中缺乏該物質，故球蟲此期無法有效進行內生性發育。

當使用較大的感染劑量（3～5×107）時，實驗兔的盲腸、結腸均嚴重受損，而使用1×103的感染劑量，實驗兔的臨床癥狀較輕，使用2×103卵囊接種，實驗兔出現臨床癥狀，但不致死。

4 流行病學

兔球蟲病一年四季皆可發生，尤其在溫暖多雨的季節。不同地區的流行優勢種有一定差異，但不同品種、年齡的兔對艾美耳球蟲都易感，尤其是斷奶至4月齡的幼兔，其感染率和死亡率均處于較高水平。

5 卵囊分子檢測

5.1 常規PCR 以聚合酶鏈式反應（PCR）檢測兔球蟲，其檢測標識有：18S rDNA、ITS-1、ITS-2和ITS全序列。

2011 年根據GenBank 中發表的黃艾美耳球蟲18S rDNA設計引物，建立PCR方法，對黃艾美耳球蟲河北株蟲種進行rDNA 擴增，結果出現大小為1 465 bp 的清晰條帶，與GenBank 中公布的EF694011 的相似性達99.6%。隨后又有學者通過PCR 方法擴增ITS-1 片段，得到455 bp 大小的條帶，與GenBank 中發布的黃艾美耳球蟲ITS-1序列相似性為97.9%。

2017 年根據GenBank 中發表的艾美耳屬球蟲保守序列設計引物，設計特異性引物鑒定黃艾美耳球蟲，得到黃艾美耳球蟲ITS1序列長330 bp，5.8S rDNA序列長157 bp，ITS2序列長522 bp。該方法經過電泳檢測，結果表明與大型艾美耳球蟲和腸艾美耳球蟲無交叉反應，證明ITS 序列是可靠的球蟲特異性檢測標識。

5.2 套式PCR 2011 年，Oliveira 通過PCR 擴增11 種艾美耳球蟲各自的rDNA 內轉錄間隔區1（ITS-1）序列，建立了包含黃艾美耳球蟲在內的11種艾美耳球蟲的檢測方法，其檢測限度最低可達到0.8～1.7 個孢子化卵囊，敏感性高，特異性好。

5.3 多重PCR 國外學者基于6 個兔種艾美耳球蟲的ITS1-5.8S rRNA-ITS2 完整序列，建立起檢測包含黃艾美耳球蟲在內的三種高致病性蟲種的多重PCR 診斷方法。也有針對黃艾美耳球蟲ITS1 基因的非保守區域設計引物作為分子標識（267 bp），建立了一種多重PCR聯檢方法，可對11 種兔源艾美耳球蟲做出鑒別診斷。該方法對檢測目標表現出了高敏感性和高特異性。

6 免疫學

6.1 免疫應答 黃艾美耳球蟲免疫原性相對較弱，與腸艾美耳球蟲有著相似的免疫應答。

實驗觀察表明，在感染了黃艾美耳球蟲的第19 d，CD8+T細胞比例在腸系膜淋巴結等部位出現明顯增高，CD4+T細胞比例也有增高，但幅度較CD8+T低；感染后19～33 d，脾臟中的CD4+T細胞、CD8+T 細胞比例并無明顯增高、降低，可以得出：腸道淋巴組織是兔黃艾美耳球蟲免疫應答發生的主要位置。

6.2 活蟲苗研究 在兔黃艾美耳球蟲活蟲苗的實驗中，研究者建立不同的免疫程序：a 組均等中劑量，免疫3 次，2 000 個卵囊/只·次；b 組均等低劑量免疫，免疫5 次，200 個卵囊/只·次；c 組加倍遞增劑量免疫，免疫5 次，起始劑量200 個卵囊/只·次，每次增加一倍攻蟲量。

實驗對兔的臨床癥狀、體重變化、卵囊排出量、腸黏膜病理變化、IgG效價等指標進行比較。

在免疫過程中，出現腹瀉、精神沉郁等臨床癥狀的a 組情況最重，b、c 組次之，同時兔腸道出現病理變化，如小腸腸絨毛萎縮、腫脹，腸道杯狀細胞分泌旺盛，見大量分泌物。b組病變最嚴重，a、c組次之。

結合兔的卵囊排出量和增重情況等指標，表明c組獲得了較好的免疫保護。綜合以上結果表明，小劑量加倍遞增免疫的效果最優。該結果與使用1×10-6殺蟲靈拌料飼喂的免疫結果相似。

6.3 早熟株選育 研究人員在SPF 兔上進行了連續10個世代的早熟壓力選育，獲得了穩定的早熟株，其與正常株對比，潛隱期從201 h 縮短至139.5 h。再進行了五代篩選，證明了該早熟株的穩定性。該早熟株在內生發育部分與正常株存在差異，其缺少第3、4代裂殖生殖，相對正常株的5代裂殖生殖，早熟株只有3代。

7 藥物防治

目前主要采用在飲水或飼料中加入抗球蟲藥的方式預防兔球蟲病。對兔球蟲病有預防作用的藥物有氯苯胍、地克珠利和氯羥吡啶等。有治療作用的藥物有磺胺類，如磺胺二甲氧嘧啶等。化學藥物需有計劃、合理地輪換使用。

黃艾美耳球蟲是兔球蟲中的強致病性蟲株，免疫原性相對較弱。防治兔球蟲的主要措施仍然是用藥，但球蟲耐藥情況日漸嚴重，故推進兔球蟲疫苗的研究顯得日趨重要。