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miR-145/SMAD3軸在慢性阻塞性肺疾病中的作用和機制研究

2021-01-27 02:10:04謝圓媛胡海峰
實用藥物與臨床 2020年12期
關鍵詞:檢測

謝圓媛,胡海峰,趙 莉,薛 鵬

0 引言

慢性阻塞性肺疾病(Chronic obstructive pulmonary disease,COPD)是一種具有氣流阻塞特征的慢性支氣管炎和肺氣腫,威脅著公眾的健康和生活質量[1-4]。COPD通常是由于接觸有害顆粒或氣體引起的,吸煙是主要的危險因素之一[5-6]。慢性氣道炎癥和肺氣腫是COPD的兩種主要病理亞型,會引起免疫功能紊亂和肺組織破壞,然而,COPD的發病機制及其診斷和治療的有效生物標記尚未闡明[7-8]。因此,探索獨立的生物標志物并研究其致病機制有利于COPD的早期診斷和治療。

研究證實,不同炎癥因子指標水平能準確反映COPD患者的肺功能損傷程度、病情的發展程度,對疾病的診斷具有重要的指導意義[9]。COPD中炎癥的發生會引起肺泡組織中ECM的紊亂導致肺組織重塑,從而加重COPD的發生。MicroRNAs(miRNAs)是一類20-24bp的內源性非編碼RNA,通過靶向mRNA的3′非翻譯區調節生理和病理功能。越來越多的研究表明,miRNA在COPD的發病機制中起著至關重要的作用。研究發現,miRNA-101-3p.1可以作為診斷COPD的獨立生物標志物,通過激活EGFR/PI3K/Akt途徑促進COPD的發生[10]。COPD的血漿和肺組織中miR-29b表達降低,并且與肺的功能變化顯著相關[11]。miR-145-5p作為miR-145家族的一員,已被廣泛證實與多種人類惡性腫瘤有關[12]。最近的一項研究表明,COPD患者肺組織中miR-145-5p的表達較低,miR-145-5p通過負調節KLF5抑制CSE誘導的HBEC凋亡和炎癥[13]。與非吸煙者相比,COPD患者氣道平滑肌細胞中miR-145的過表達可抑制促炎性細胞因子的釋放[14]。

本實驗通過研究miR-145在COPD炎癥的發生、ECM的降解以及在P13K/Akt/mTOR通路中的作用,同時分析miR-145與SMAD3的靶向關系,以期為后續研究治療COPD的方法提供研究基礎。

1 材料與方法

1.1 主要試劑 RPMI 1640培養基、胎牛血清購自美國Gibco公司;通用反轉錄試劑盒、RIPA強蛋白裂解液、蛋白抑制劑PMSF、總RNA提取試劑盒購自北京索萊寶生物科技有限公司;實時熒光定量PCR染料Ultra SYBR Mixture購自康為世紀生物科技有限公司;Asvanced轉染試劑購自ZATA LIFE公司(美國);IL-10 Rabbit mAb、EMMPRIN Rabbit mAb、SMAD3 Antibody購自Cell Signaling Technology公司;Anti-IL-6/IL-8/P13K/Akt/mTOR/MMP9/β-actin antibody購自Abcam公司;Goat anti-Mouse/Rabbit IgG(H+L)-HRP購自武漢三鷹生物技術有限公司;miR-145 inhibitor/mimics、NC mimics/inhibitor(濃度均為20 μM/μl)均送武漢金開瑞生物科技有限公司合成;pEGFP-N1-SMAD3質粒為前期構建,Cell Counting Kit-8、Human IL-6/8/10 ELISA Kit購自碧云天有限公司。

香煙煙霧提取物(CSE)的制備:按照Wu等[15]方法,將2支無濾嘴香煙的煙氣溶于10 ml無血清的RPMI 1640培養基(每支香煙2 min),將pH值調節至7.4,并將獲得的100%CSE溶液通過0.22 μM的過濾器進行滅菌并保存在-80 ℃,作為CSE的初始溶液。每次使用前制備工作濃度為20%的CSE溶液,現配現用。

1.2 人肺樣本采集 肺切除標本取自延安大學附屬醫院的30例行肺切除術的患者。受試者分為3組:有COPD的吸煙者(10例)、無COPD的吸煙者(10例)、無COPD的非吸煙者(10例),獲得了其肺組織樣本,所有受試者臨床穩定,無化療或放療,沒有患者接受任何皮質類固醇或抗菌藥物治療,或有其他呼吸系統疾病史,哮喘,肺部感染的診斷,均簽署了知情同意書,并獲得本醫院倫理委員會的批準和監督。用組織基因組DNA提取試劑盒提取樣本DNA后,保存于-20 ℃,用于后期RT-PCR實驗。

1.3 細胞培養 人支氣管上皮細胞(HBEC)株購自中國科學院研究所,將購買的細胞從干冰中取出后,于42 ℃水中快速解凍,1 000 r/min離心3 min后用含有血清濃度為10%的1640培養基重懸細胞沉淀至90 mm培養皿中,在37 ℃、5%CO2的條件下于培養箱中培養24 h后,將支氣管上皮細胞暴露于20%CSE條件下24 h以模擬COPD細胞。

1.4 ELISA實驗 將20%CSE處理過的支氣管上皮細胞按1×105個/孔接種至96孔板,待細胞密度大約70%左右時,按照Asvanced轉染試劑說明書將miR-145mimics/inhibitor(10 μM)、NC mimics/inhibitor(10 μM)進行轉染,48 h后,收集細胞上清進行ELISA檢測。將ELISA試劑盒從4 ℃取出后室溫放置20 min,配制濃度分別為0、18.75、37.5、75、150、300、600 pg/ml的標準品,分別將細胞上清和不同濃度標準品按100 μl/孔加入酶標孔中,室溫孵育2 h;每孔300 μl洗滌液洗滌5次;加入生物素化抗體100 μl/孔,室溫孵育1 h;每孔300 μl洗滌液洗滌5次;加入100 μl/孔辣根過氧化物酶,室溫避光孵育20 min后,洗滌5次;加入100 μl/孔TMB溶液,室溫避光孵育20 min;加入50 μl/孔終止液,混勻后于酶標儀中測量OD450值。通過繪制標準曲線計算細胞上清中IL-6、IL-8、IL-10的濃度。

1.5 細胞增殖實驗 將20%CSE處理過的支氣管上皮細胞按1×105個/孔接種至96孔板,待細胞密度大約70%時,將miR-145mimics/inhibitor(10 μM)、NC mimics/inhibitor(10 μM)進行轉染,轉染48 h后,每孔加入10 μl CCK-8溶液,在37 ℃、5%CO2的條件下于培養箱中孵育2 h,于酶標儀中測量OD450值,進行分析。

1.6 RT-PCR實驗 將20%CSE處理過的支氣管上皮細胞按1×106個/孔接種至12孔板,待細胞密度約70%左右時,將miR-145 mimics/inhibitor(100 μM)、NC mimics/inhibitor(100 μM)、pEGFP-N1-SMAD3/pEGFP-N1(5 μg)進行轉染,48 h后,用總RNA提取試劑盒提取細胞的總RNA,利用核酸濃度測定儀進行濃度的測定后,各取2 μg用通用反轉錄試劑盒進行cDNA的反轉。用反轉錄得到的cDNA為模板,β-actin作內參,通過RT-PCR檢測不同樣品中SMAD3、IL-6、IL-8、IL-10、MMP-9、EMMPRIN、P13K、Akt、mTOR的含量;同時,以實驗提取的DNA為模板,U6或β-actin作內參,檢測血液樣品中miR-145、SMAD3的含量。反應體系包括:cDNA/DNA 1 μl,2×Ultra SYBR Mixture 10 μl,上下游引物各1 μl,dd H2O 7 μl。反應條件:預變性95 ℃ 10 min;95 ℃ 30 s,95 ℃ 5 s,60 ℃ 30 s,采集熒光,共40個循環;溶解曲線55~95 ℃,每次升高0.5 ℃。每個樣品設置3個重復,相對定量結果用2-△△CT法分析。RT-PCR定量引物見表1。

1.7 蛋白免疫印跡實驗 將20%CSE處理過的支氣管上皮細胞按1×106個/孔接種至6孔板,待細胞密度約70%時,將miR-145 mimics/inhibitor(200 μM)、NC mimics/inhibitor(200 μM)、pEGFP-N1-SMAD3/pEGFP-N1(10 μg)進行轉染,48 h后,用含有PMSF的RIPA裂解液提取總蛋白后,使用BCA試劑盒確定濃度。通過12%SDS-PAGE電泳后,將其轉移至PVDF膜,用5%脫脂奶粉封閉后,將膜與特異性一抗(SMAD3、IL-6、IL-8、IL-10、MMP-9、EMMPRIN、P13K、Akt、mTOR)在4 ℃孵育過夜,用TBST洗滌后,將膜與二抗在室溫下孵育1 h,用TBST洗滌后,加入ECL顯色液,于凝膠成像儀中曝光拍照。

表1 RT-PCR的定量引物

1.8 熒光素酶活性分析實驗 應用TargetScan、miRanda和PicTar數據庫分析miR-145與SMAD3的結合位點。將含有miR-145結合位點的SMAD3-3′UTR-WT和定點突變的SMAD3-3′UTR-MUT(將SMAD3-3′UTR基因片段中與miR-145相互結合的位點突變為互補序列)插入到熒光素酶報告載體pGL3中。將支氣管上皮細胞接種至12孔板中,分別將Asvanced轉染試劑(5 μl)與miR-145 mimics(100 μM)+pGL3-SMAD3-3′UTR-WT質粒(5 μg)、NC mimics(100 μM)+pGL3-SMAD3-3′UTR-WT(5 μg)、miR-145 mimics(100 μM)+pGL3-SMAD3-3′UTR-MUT質粒(5 μg)、NC mimics(100 μM)+pGL3-SMAD3-3′UTR-MUT(5 μg)轉染細胞48 h后,按照熒光素酶活性檢測試劑盒說明書檢測熒光素酶的活性。

2 結果

2.1 miR-145、SMAD3在COPD吸煙者、無COPD吸煙者、無COPD未吸煙者肺組織中的表達 為了驗證miR-145在慢性阻塞性疾病中低表達,本研究對有COPD的吸煙者、無COPD的吸煙者、無COPD的非吸煙者肺組織中miR-145、SMAD3的含量進行了檢測。

結果顯示,有COPD的吸煙者與無COPD的非吸煙者比較,miR-145的含量降低,SMAD3的含量升高(圖1)。綜上,miR-145在COPD中低表達,SMAD3高表達,提示我們應該更進一步研究兩者在COPD發生發展過程中的作用。

圖1 RT-PCR檢測不同樣品肺組織中miR-145、SMAD3的表達注:與無COPD的非吸煙者組比較,*P<0.05,**P<0.01,***P<0.001

2.2 miR-145抑制COPD炎癥的發生 miR-145 mimics /inhibitor轉染20%CSE處理的支氣管上皮細胞,檢測其IL-6、IL-8、IL-10的表達情況。ELISA結果顯示,miR-145 mimics組IL-6、IL-8、IL-10的含量均低于NC mimics 組(圖2A~C)。RT-PCR和Western blot結果顯示,miR-145 mimics組與NC mimics組比較,miR-145 mimics能夠顯著抑制IL-6、IL-8、IL-10 的表達(圖2D~G)。miR-145 inhibitor組與NC inhibitor 組比較,與以上結果完全相反(圖2A~G)。綜上,miR-145能夠抑制支氣管上皮細胞炎癥的發生,從而減緩COPD的癥狀。

2.3 miR-145促進COPD ECM的降解 將miR-145 mimics /inhibitor轉染20%CSE處理過的支氣管上皮細胞進行RT-PCR和Western blot檢測,結果顯示,miR-145 mimics組與NC mimics組比較,miR-145 mimics能夠促進MMP-9、EMMPRIN 的表達。miR-145 inhibitor組和NC inhibitor組比較,與以上結果完全相反。綜上,miR-145通過抑制支氣管上皮細胞炎癥的發生從而促進ECM的降解見圖3。

2.4 miR-145通過P13K/Akt/mTOR調節細胞的增殖 將miR-145 mimics /inhibitor轉染20%CSE處理過的支氣管上皮細胞,首先通過CCK-8法檢測細胞的增殖情況,結果顯示,miR-145 mimics組與NC mimics組比較,miR-145 mimics能夠抑制支氣管上皮細胞的增殖(圖4A)。RT-PCR和Western blot結果顯示,miR-145 mimics組與NC mimics組比較,miR-145 mimics能夠抑制P13K、Akt、mTOR的表達(圖4B~E)。miR-145 inhibitor組與NC inhibitor 組比較,與以上結果完全相反(圖4)。綜上,miR-145通過抑制P13K/Akt/mTOR通路的發生,從而抑制細胞的生長,減緩COPD疾病的發生。

2.5 熒光素酶活性分析實驗驗證miR-145靶向結合SMAD3 首先,通過TargetScan、miRanda和PicTar數據庫分析比對,結果顯示,SMAD3-3’UTR中包含了能夠與miR-145完全互補的一段序列(圖5A)。熒光素酶活性分析實驗結果顯示,miR-145 mimics+pGL3-SMAD3-3’UTR-WT組與NC mimics+pGL3-SMAD3-3′UTR-WT組比較,熒光素酶活性顯著降低,而突變型兩組相比熒光素酶活性沒有顯著變化(圖5B)。然后,將miR-145 mimics /inhibitor轉染支氣管上皮細胞后,RT-PCR和Western blot結果顯示,miR-145 mimics組與NC mimics組比較,miR-145 mimics能夠抑制SMAD3的表達(圖5C~D),miR-145 inhibitor組與NC inhibitor 組比較,與以上結果完全相反(圖5C~D)。

圖2 miR-145對COPD炎癥的影響

ics/inhibitor對IL-6、IL-8、IL-10表達的影響。與NC mimics/inhibitor組比較,*P<0.05,**P<0.01

圖3 RT-PCR、Western blot方法檢測miR-145 mimics/inhibitor對MMP-9、EMMPRIN表達的影響注:與NC mimics/inhibitor組比較,*P<0.05,**P<0.01

2.6 SMAD3對COPD炎癥的發生、ECM的降解以及P13K/Akt/mTOR通路的影響 將pEGFP-N1-SMAD3質粒轉染20%CSE處理過的支氣管上皮細胞48 h后進行RT-PCR、Western blot檢測,結果顯示,pEGFP-N1-SMAD3組與pEGFP-N1組比較,SMAD3能夠促進IL-6、IL-8、IL-10、P13K、Akt、mTOR的表達,抑制MMP-9、EMMPRIN的表達(圖6A~B)。

3 討論

COPD是一種慢性非均質性肺疾病,檢查方法主要通過肺功能檢查、X線拍片、CT、血氣分析等等,該病的治療方法主要包括藥物治療和康復治療,治療策略旨在改善癥狀并防止病情加重,這些方法主要基于疾病的嚴重程度和癥狀,而不是基于個體的疾病病理,都不利于患者疾病的診斷與治療[16-17]。

圖4 miR-145對COPD增殖的影響注:A.CCK-8法檢測miR-145 mimics/inhibitor對細胞增殖的影響;B~E.RT-PCR、Western blot方法檢測miR-145 mimics/inhibitor對 P13K/Akt/mTOR通路的影響。與NC mimics/inhibitor組比較,*P<0.05,**P<0.01,***P<0.001

圖5 熒光素酶活性分析實驗驗證miR-145靶向SMAD3

越來越多的研究發現,miRNAs在肺部疾病的發生發展中具有重要的作用,對癌癥的診斷、預防以及新藥物的研發具有重要的意義[18-19]。有研究報道,miRNA-145在COPD患者的肺組織中低表達,并且發現上調miRNA-145能夠抑制肺部炎癥的發生,促進細胞的凋亡[13]。因此,本研究首先通過RT-PCR檢測了有COPD的吸煙者、無COPD的吸煙者、無COPD的未吸煙者的肺組織中miRNA-145的表達水平,發現COPD吸煙患者的肺組織中miRNA-145的表達量較低,驗證了以上結果。COPD的發生會導致肺部組織炎癥的發生,炎癥因子的持續浸潤會加重肺部組織的損傷,加速肺部纖維細胞的活化,從而抑制ECM的降解途徑,最終導致氣道重塑,對肺組織造成不可逆轉的損傷,嚴重加劇患病程度[20-21]。

圖6 RT-PCR、Western blot檢測SMAD3對IL-6、IL-8、IL-10、MMP-9、EMMPRIN、P13K、Akt、mTOR的影響注:*P<0.05,**P<0.01,***P<0.001

SMAD3是SMAD家族中的一個蛋白,有研究表明,SMAD3在腫瘤以及癌癥的發生發展中具有重要的作用。研究發現,SMAD3磷酸化水平的降低,能夠抑制大鼠肺部炎癥的發生,改善肺功能;miR-140通過下調Smad3蛋白的表達抑制非小細胞肺癌的侵襲和遷移;歐前胡素通過TGF-β1/Smad3和PI3K/Akt通路抑制小鼠的哮喘;人類脂肪間充質干細胞通過與TGF-β/Smad和PI3K / AKT信號通路交叉相互作用,促進乳腺癌MCF7細胞上皮-間質轉化;TGF-β/Smad和PI3K/Akt/mTOR信號通路參與了肺癌細胞上皮-間質轉化[22-25]。但是,在COPD中,SMAD3與P13K/Akt/mTOR通路的關系,少有文獻報道。在前期的實驗研究中,通過軟件分析預測發現,miRNA-145可能靶向SMAD3基因,并且通路分析顯示,可能與P13K/Akt/mTOR通路有關。

本研究將miR-145 mimics/inhibitors轉染COPD細胞模型48 h后,發現miR-145通過靶向SMAD3,抑制COPD炎癥的發生,促進ECM的降解,并且通過抑制P13K/Akt/mTOR通路的發生,抑制細胞的增殖,最終改善COPD的發展。

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