兔可食性組織中桿菌肽殘留量HPLC-MS/MS測(cè)定方法

聶貞，全家興，王美紅，張小龍，蔣玥，卜仕金

(揚(yáng)州大學(xué)獸醫(yī)學(xué)院 江蘇省動(dòng)物重要疫病與人獸共患病防控協(xié)同創(chuàng)新中心，江蘇 揚(yáng)州 225009)

桿菌肽是由一組類似的多肽成分組成的混合物，其中桿菌肽A、B1和B2組分被認(rèn)為最具抗微生物活性[1-2]。獸醫(yī)臨床上常見以桿菌肽鋅和桿菌肽亞甲基水楊酸鹽形式用于畜禽促生長(zhǎng)和防治動(dòng)物的壞死性腸炎[3-5]。在歐盟，亞甲基水楊酸桿菌肽還被推薦用于治療由產(chǎn)氣莢膜梭菌引起的兔壞死性腸炎。桿菌肽在豬和禽等主要生產(chǎn)動(dòng)物的可食性組織中及奶中殘留量的檢測(cè)方法已有很多研究報(bào)道[6-10]，但桿菌肽在兔的可食性組織中殘留量的檢測(cè)分析方法至今未見報(bào)道。因此，開展兔可食性組織中桿菌肽的殘留檢測(cè)方法研究，對(duì)桿菌肽今后推廣應(yīng)用于家兔和指導(dǎo)臨床合理用藥具有重要的現(xiàn)實(shí)意義。研究旨在建立兔可食用組織(肌肉、脂肪、腎臟和肝臟)中桿菌肽殘留標(biāo)志物的高效液相色譜串聯(lián)質(zhì)譜聯(lián)用(HPLC-MS/MS)檢測(cè)法，為兔可食性組織中桿菌肽殘留的監(jiān)控提供技術(shù)手段，這對(duì)保障人類消費(fèi)者食用動(dòng)物源性食品的安全性具有重要意義。

1 材料與方法

1.1 儀器和試劑 儀器：AB sciex Qtrap 6500plus三重四極桿串聯(lián)質(zhì)譜儀；AB sciex ExionLCTMAC高效液相色譜儀；XBridge?C18色譜柱(2.1 mm×100 mm，3.5 μm)；EppendorfCentrifuge 5810 R臺(tái)式高速冷凍離心機(jī)；QUINTIX124-1CN電子天平；上海滬西WH-1微型渦旋混合儀；Eppendorf可調(diào)移液器(10 μL、100 μL、5000 μL)。

試劑：甲醇、乙腈(色譜純，美國(guó)TEDIA公司)；三氟乙酸(色譜純，上海MACKLIN公司)；甲酸、氨水(色譜純，上海阿拉丁公司)；三氯乙酸、正己烷(分析純，國(guó)藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司)；桿菌肽標(biāo)準(zhǔn)品(桿菌肽A、B1、B2和B3總含量84.8%，桿菌肽A含量53.2%。批號(hào)：C10418000，購(gòu)自德國(guó)Dr. Ehrenstorfer GmbH公司)；水為符合GB/T 6682規(guī)定的一級(jí)水。

1.2 標(biāo)準(zhǔn)溶液配制 準(zhǔn)確稱取約4.68 mg桿菌肽標(biāo)準(zhǔn)品，置10 mL容量瓶中，用0.1%甲酸甲醇溶解并定容至刻度，即配置濃度為0.4 mg/mL(以桿菌肽計(jì))的儲(chǔ)備液，于-20 ℃冰箱中保存。準(zhǔn)確吸取適量桿菌肽標(biāo)準(zhǔn)儲(chǔ)備液，用0.1%甲酸水溶液稀釋制備濃度為1000、10000 ng/mL的標(biāo)準(zhǔn)工作液，現(xiàn)配現(xiàn)用。

1.3 方法

1.3.1 液相色譜條件 XBridge?C18色譜柱(2.1 mm×100 mm，3.5 μm)，流速：0.4 mL/min，柱溫：35 ℃，進(jìn)樣量：5 μL，流動(dòng)相：A為0.1%甲酸水，B為乙腈，梯度洗脫條件見表1。

表1 梯度洗脫條件

1.3.2 質(zhì)譜條件 電噴霧離子源，正離子掃描，多反應(yīng)監(jiān)測(cè)(MRM)，噴霧電壓5500.0 V，去簇電壓120.0 U/V，離子化溫度550 ℃，氣簾氣壓力30.0 Psi，碰撞室壓力8 Psi。根據(jù)桿菌肽離子掃描結(jié)果，確定監(jiān)測(cè)離子對(duì)見表2。

表2 桿菌肽A、桿菌肽B定性、定量離子對(duì)及碰撞能

1.3.3 樣品前處理 準(zhǔn)確稱取2.0(±0.01)g勻漿的兔組織樣品于50 mL離心管A內(nèi)，加入2 mL 10%三氯乙酸乙腈溶液, 渦旋一分鐘，加入5 mL 0.5%三氟乙酸水，渦旋五分鐘，接著10000 r/min離心5 min，取上清至離心管B。重復(fù)提取一次，合并提取液上清于離心管B中。向離心管B中加入5 mL正己烷并10000 r/min離心5 min，棄去上層有機(jī)相以及中間乳化層，待凈化。將OASIS?PRiME HLB 3cc 150 mg固相萃取柱依次用5 mL甲醇和5 mL水活化后，將離心管B中處理完的樣品液過柱，待樣品液全部流出后，依次用3 mL氨水甲醇和3 mL 1%甲酸乙酸乙酯淋洗，微微抽干，用2 mL甲醇乙腈洗脫并抽干收集于10 mL指形管中。向指形管加入2 mL 0.1%甲酸水，混勻后過0.22 μm有機(jī)濾膜過濾，濾液待HPLC-MS/MS檢測(cè)。

1.4 定性方法 定性需滿足以下條件：①空白樣品中不出現(xiàn)與陽性對(duì)照相同的離子峰；②特征離子峰信噪比(S/N)≥3；③樣品中桿菌肽的保留時(shí)間與標(biāo)準(zhǔn)溶液保留時(shí)間的偏差在±2.5%之內(nèi)；④定性離子對(duì)的相對(duì)豐度與濃度相當(dāng)?shù)幕|(zhì)標(biāo)準(zhǔn)的相對(duì)豐度一致，偏差滿足2002/657/EC[11]中的要求。

1.5 定量方法的確立

1.5.1 基質(zhì)標(biāo)準(zhǔn)曲線的制備 制備空白肌肉、脂肪、肝臟和腎臟樣品各6份，經(jīng)前處理后加入適量的標(biāo)準(zhǔn)工作液配成濃度為50、75、150、300、600、1000 ng/g的基質(zhì)匹配標(biāo)準(zhǔn)溶液，在本試驗(yàn)所建立的條件下，按照濃度從低至高的順序依次進(jìn)樣。使用測(cè)得的桿菌肽特征離子峰面積作為縱坐標(biāo)，對(duì)應(yīng)的標(biāo)準(zhǔn)溶液濃度作為橫坐標(biāo)，繪制基質(zhì)匹配標(biāo)準(zhǔn)曲線。

1.5.2 檢測(cè)限、定量限的測(cè)定 用標(biāo)準(zhǔn)儲(chǔ)備液分別制備兔肌肉、脂肪、肝臟和腎臟的空白基質(zhì)添加樣品，再按1.3項(xiàng)下的條件進(jìn)行處理、分析，取S/N≥3時(shí)桿菌肽的濃度為方法的檢測(cè)限(LOD)，S/N≥10時(shí)桿菌肽的濃度為定量限(LOQ)，每個(gè)濃度5個(gè)平行。

1.5.3 準(zhǔn)確度和精密度的測(cè)定 準(zhǔn)確稱取2 g空白兔肌肉、脂肪、肝臟和腎臟，添加適量的桿菌肽標(biāo)準(zhǔn)工作液，使其濃度分別為50、100、300、800 ng/g。按照1.3.3的方法進(jìn)行處理后，分別進(jìn)樣5 μL進(jìn)行HPLC-MS/MS測(cè)定。測(cè)定的結(jié)果帶入各自標(biāo)準(zhǔn)曲線中，與真實(shí)值比較，以計(jì)算回收率。每批次每濃度做6個(gè)平行樣品，共進(jìn)行三個(gè)批次分三天完成。

2 結(jié)果與分析

2.1 方法專屬性 在優(yōu)化的色譜條件下，桿菌肽標(biāo)準(zhǔn)品溶液中桿菌肽A出峰時(shí)間約為3.74 min，桿菌肽B的出峰時(shí)間約為3.56 min和3.68 min，峰型良好。見圖1和圖2。

圖1 標(biāo)準(zhǔn)品中桿菌肽A總離子流圖(桿菌肽50 ng/g)

圖2 標(biāo)準(zhǔn)品中桿菌肽B總離子流圖(桿菌肽50 ng/g)

對(duì)比兔的可食性組織(肌肉、脂肪、肝臟、腎臟)空白基質(zhì)圖譜與空白基質(zhì)添加桿菌肽標(biāo)準(zhǔn)品的圖譜，可以看出標(biāo)準(zhǔn)品中桿菌肽A、桿菌肽B都與基質(zhì)雜質(zhì)分離良好，互不干擾，可用于定量分析。掃描空白基質(zhì)與空白基質(zhì)添加藥物(50 ng/g)樣品中桿菌肽A定量離子對(duì)(711.6>199.1)的離子流圖見圖3～圖10，掃描空白基質(zhì)與空白基質(zhì)添加藥物(50 ng/g)樣品中桿菌肽B定量離子對(duì)(705.0>199.0)的離子流圖見圖11～圖18。

圖3 空白肌肉中桿菌肽A總離子流圖

圖4 添加標(biāo)準(zhǔn)品的肌肉中桿菌肽A總離子流圖(桿菌肽50 ng/g)

圖5 空白脂肪中桿菌肽A總離子流圖

圖6 添加標(biāo)準(zhǔn)品的脂肪中桿菌肽A總離子流圖(桿菌肽50 ng/g)

圖7 空白腎臟中桿菌肽A總離子流圖

圖8 添加標(biāo)準(zhǔn)品的腎臟中桿菌肽A總離子流圖(桿菌肽50 ng/g)

圖9 空白肝臟中桿菌肽A總離子流圖

圖10 添加標(biāo)準(zhǔn)品的肝臟中桿菌肽A總離子流圖(桿菌肽50 ng/g)

圖11 空白肌肉中桿菌肽B總離子流圖

圖12 添加標(biāo)準(zhǔn)品的肌肉中桿菌肽B總離子流圖(桿菌肽50 ng/g)

圖13 空白脂肪中桿菌肽B總離子流圖

圖14 添加標(biāo)準(zhǔn)品的脂肪中桿菌肽B總離子流圖(桿菌肽50 ng/g)

圖15 空白腎臟中桿菌肽B總離子流圖

圖16 添加標(biāo)準(zhǔn)品的腎臟中桿菌肽B總離子流圖(桿菌肽50 ng/g)

圖17 空白肝臟中桿菌肽B總離子流圖

圖18 添加標(biāo)準(zhǔn)品的肝臟中桿菌肽B總離子流圖(桿菌肽50 ng/g)

2.2 線性結(jié)果 桿菌肽在50～1000 ng/g添加濃度范圍內(nèi)，藥物濃度與峰面積呈良好的線性關(guān)系，線性回歸方程相關(guān)系數(shù)(R2)≥0.99 (見表3)。

表3 桿菌肽在兔可食性組織線性方程

2.3 檢測(cè)限(LOD)和定量限(LOQ) 取S/N≥3時(shí)濃度為最低檢測(cè)限，該方法檢測(cè)限為30 ng/g；根據(jù)精密度和準(zhǔn)確度試驗(yàn)結(jié)果，取信噪比S/N≥10時(shí)濃度為最低定量限為50 ng/g。

2.4 準(zhǔn)確度和精密度 樣品中桿菌肽HPLC-MS/MS測(cè)定方法的結(jié)果表明，兔可食性組織中桿菌肽在50、150、300、800 ng/g四個(gè)添加水平下測(cè)定的平均回收率(以桿菌肽A與桿菌肽B之和計(jì)算)在74.7%～83.8%。見表4。

2.5 定性試驗(yàn) 通過考察來源于6只不同兔的組織的測(cè)定結(jié)果，兔可食性組織中內(nèi)源性雜質(zhì)不干擾樣品中桿菌肽A、桿菌肽B含量的測(cè)定。基質(zhì)添加標(biāo)準(zhǔn)品的桿菌肽A、桿菌肽B相對(duì)離子豐度符合2002/657/EC 規(guī)定的范圍要求。

表4 桿菌肽加標(biāo)回收率與相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差(n=6)

3 討 論

3.1 前處理方法的優(yōu)化 前處理?xiàng)l件優(yōu)化中，通過比較0.5%甲酸甲醇水(1∶1)、0.5%甲酸甲醇乙腈(1∶1)、0.5%甲酸乙腈水(1∶1)、0.5%甲酸乙腈水(3∶7)、0.1%甲酸水等提取方法，并參照GB/T 20743-2006給出的方法凈化后進(jìn)樣分析，結(jié)果顯示，采用0.5%甲酸甲醇水(3∶7)和0.5%三氟乙酸水提取能夠獲得較好的回收率，但需除雜凈化。優(yōu)化后最終確定提取液為使用5 mL 0.5%三氟乙酸水提取2次。動(dòng)物組織中含有大量的蛋白與脂肪，會(huì)嚴(yán)重影響HPLC-MS/MS系統(tǒng)的分析定量。目前對(duì)動(dòng)物可食性組織或環(huán)境中桿菌肽提取液的凈化大多采用OASIS?HLB 3cc 60 mg或200 mg固相萃取柱凈化。試驗(yàn)中比較了OASIS?HLB 3cc 60 mg、150 mg、200 mg，OASIS?PRiME HLB 3cc 60 mg、150 mg和Agilent Bond Elut-ENV 200 mg 3 mL幾種不同規(guī)格的固相萃取柱在6 mL水、3 mL甲醇：5%氨水溶液(V/V 20/80)加3 mL1%甲酸乙酸乙酯、3 mL甲醇：5%氨水溶液(V/V 10/90)加3 mL 1%甲酸乙酸乙酯等不同淋洗條件下的凈化效果，結(jié)果表明，在使用甲醇：5%氨水溶液(V/V 20/80)和1%甲酸乙酸乙酯作為淋洗液時(shí)，OASIS?PRiME HLB小柱表現(xiàn)得更好，能夠有效減少雜質(zhì)且不會(huì)損耗過多桿菌肽。篩選洗脫液時(shí)，甲醇和乙腈差異不顯著。最終確定使用乙腈沉淀蛋白，正己烷除脂，OASIS?PRiME HLB 150 mg固相萃取柱凈化，淋洗條件為3 mL甲醇：5%氨水溶液(V/V 20/80)加3 mL 1%甲酸乙酸乙酯，洗脫液為2 mL甲醇乙腈(V/V 20/80)，可獲得較好的回收率，且雜質(zhì)不影響定量。

3.2 色譜條件的優(yōu)化 在使用針泵進(jìn)樣對(duì)桿菌肽標(biāo)準(zhǔn)品進(jìn)行離子掃描時(shí)，桿菌肽離子化會(huì)出現(xiàn)不同的狀態(tài)，因此,在不同的實(shí)驗(yàn)中會(huì)依照實(shí)驗(yàn)條件選擇不同的電荷狀態(tài)。本試驗(yàn)條件下，選擇桿菌肽雙電荷狀態(tài)即桿菌肽A的母離子質(zhì)荷比為712、桿菌肽的B母離子質(zhì)荷比為705時(shí)，具有更加穩(wěn)定的響應(yīng)值和更低的基線。因此本試驗(yàn)在離子掃描時(shí)選擇雙電荷狀態(tài)作為桿菌肽特征離子。

大多數(shù)文獻(xiàn)報(bào)道中，液相條件都是使用甲酸水乙腈體系，偶有其他類型的流動(dòng)相體系。在嘗試選擇對(duì)人危害較小且更加經(jīng)濟(jì)的甲酸水甲醇體系時(shí)發(fā)現(xiàn)，桿菌肽在8 min的流動(dòng)相體系中，雖然出峰時(shí)間約為2.8 min且具有較好的峰形和峰高，但與兔組織中的雜質(zhì)峰嚴(yán)重重疊，干擾定量。進(jìn)一步優(yōu)化后，最終選擇依舊甲酸水乙腈體系，在該體系條件下可獲得較好的峰形，且不與雜質(zhì)相互干擾，利于定量分析。

4 結(jié) 論

本試驗(yàn)建立了兔可食性組織中桿菌肽的提取、凈化及含量的HPLC-MS/MS檢測(cè)法。兔可食性組織中桿菌肽殘留使用0.5%三氟乙酸水提取，10%三氯乙酸乙腈沉淀蛋白，正己烷除脂，固相萃取柱凈化，以0.1%甲酸水和乙腈為流動(dòng)相進(jìn)行梯度洗脫。質(zhì)譜采用電噴霧離子源(ESI)，正離子模式，多反應(yīng)檢測(cè)(MRM)模式。結(jié)果表明，桿菌肽在50～1000 ng/g添加濃度范圍內(nèi)，濃度與響應(yīng)值之間線性關(guān)系良好，相關(guān)系數(shù)大于0.99，方法的檢測(cè)限為30 ng/g，定量限為50 ng/g。桿菌肽平均添加回收率在74.7%～ 83.8 %，批內(nèi)批間變異系數(shù)均小于10%。依據(jù)EMEA規(guī)定的兔可食性組織中桿菌肽MRL標(biāo)準(zhǔn)，試驗(yàn)制定的兔可食性組織中桿菌肽殘留標(biāo)志物的HPLC-MS/MS測(cè)定方法，適用于兔可食性組織中桿菌肽殘留量。