藍春花,陳成英,藍 利,2,王新航,2,常升搏小吉,2,袁江浪,孔星星,陸彩玲,李習藝,唐 深,2△
(廣西醫(yī)科大學 1.基礎醫(yī)學院;2.廣西高校基礎醫(yī)學研究重點實驗室;3.公共衛(wèi)生學院,南寧 530021)
2-脫氧-d-葡萄糖(2-deoxy-D-glucose,2-DG)是一種葡萄糖類似物,可用作葡萄糖代謝的競爭性抑制劑,通過影響細胞的糖代謝發(fā)揮調節(jié)細胞分化及周期等生物學作用[1-2],具有抗炎、抗腫瘤等作用。有研究報道,2-DG和脂多糖(LPS)共刺激小鼠腹腔巨噬細胞,抑制己糖激酶(HK)的活性和下調M1分化過程中糖酵解信號通路Glut1 的質子產(chǎn)生率,減少促炎因子的分泌[3]。
巨噬細胞是介導炎癥的關鍵細胞,通過趨化聚集在不同的炎癥微環(huán)境中,產(chǎn)生高度可塑性并極化誘導適宜的免疫反應有效調控炎癥[4]。巨噬細胞極化是一個M1和M2雙向的復雜過程,受多種因素調控,巨噬細胞功能狀態(tài)與其代謝譜密切相關,如M1型巨噬細胞代謝主要以無氧糖酵解和磷酸戊糖途徑為主,這利于M1型巨噬細胞清除細菌感染[5]。線粒體是細胞內有氧供能的主要細胞器,可調控細胞多種生理活動,其數(shù)量和功能失調會導致細胞內異常的線粒體累積和活性氧(ROS)生成增加,誘導細胞凋亡和壞死[6];線粒體自噬是細胞清除損傷線粒體,維持線粒體正常功能的主要途徑[7]。文獻報道,2-DG可誘導細胞自噬從而抑制嗜肺軍團菌的生長,有助于提高小鼠巨噬細胞抗嗜肺炎菌感染的保護作用[8]。上述研究提示2-DG 發(fā)揮抗炎作用的機制可能是調節(jié)巨噬細胞的炎癥極化,但具體分子機制仍未明確。本研究以人髓系白血病單核細胞(THP-1)構建體外M1 型巨噬細胞極化模型,初步探討2-DG 通過糖酵解和線粒體自噬調控M1 型巨噬細胞炎癥極化的分子機制。
1.1 細胞和主要試劑 人急性單核細胞白血病細胞系THP-1細胞(中國科學院典型培養(yǎng)物保藏委員會細胞庫)。2-DG(中國MCE);佛波酯(PMA,美國Sigma);干擾素(IFN)-γ(北京Sino-Biological);RPMI1640 培養(yǎng)液、胎牛血清(美國Gibco);青霉素、鏈霉素、LPS、丙酮酸激酶(PK)、HK、乳酸脫氫酶(LDH)檢測試劑盒(索萊寶生物技術);RNA逆轉錄試劑、TRIzol(日本TaKaRa);實時熒光定量PCR(qPCR)引物由Invitrogen 公司合成;SYBR?Green Master(美國Roche);蛋白裂解液、兔抗人微管蛋白(Tubulin)單克隆抗體購自碧云天公司;鼠抗人自噬啟動蛋白Beclin-1 抗體、PTEN 誘導激酶1(PINK1)抗體購自Santa Cruz 公司;HRP 標記山羊抗兔IgG、HRP標記山羊抗小鼠IgG購自北京中杉金橋公司。
1.2 細胞培養(yǎng)與分組 THP-1 細胞用含10%胎牛血清、100 μg/mL 鏈霉素、100 IU/mL 青霉素的RPMI1640 培養(yǎng)基培養(yǎng),置于37 ℃、5%CO2培養(yǎng)箱中。按1×106個/孔的細胞密度接種于6 孔板,分為3 組:M0 組(100 nmol/L PMA 刺激48 h 極化為M0 型)、M1 組(M0 組基礎上用10 ng/mL LPS 和20 ng/mL IFN-γ共刺激48 h誘導極化為M1型)、M1+2-DG組(M1組基礎上加入10 mmol/L 2-DG)。
1.3 qPCR法檢測M1型極化相關基因表達 TRIzol提取細胞總mRNA,逆轉錄為cDNA,用Step One熒光定量PCR 儀(美國Thermo Fisher Scientific 公司)進行PCR擴增。PCR反應條件:95 ℃預變性10 min;95 ℃變性30 s,60 ℃退火10 s,共40 個循環(huán)。引物序列如下:β-actin 上游:5’-TCCTCTCCCAAGTCCACACAGG-3,下游:5’-GGGCACGAAGGCTC ATCATTC-3’;白介素(IL)-6 上游:5’-ACTCACCTCTTCAGAACGAATTG-3’,下游:5’-CCATCTTTGGAAGGTTCAGGTTG-3’;腫瘤壞死因子(TNF)-α上游:5’-GAGGCCAAGCCCTGGTATG-3’,下游:5’-CGGGCCGATTGATCTCAGC-3’;環(huán)氧化酶(COX)-2 上游:5’-GCCATGGGGTGGACTTAAATCATA-3’,下游:5’-CAGGGACTTGAGGAGGGTAGATCA-3’;CXC 趨化因子配體10(CXCL-10)上游:5’-TCTCCCATCACTTCCCTACA-3’,下游:5’-CAGGGTCAGAACATCCACTA-3’。以β-actin 為內參,采用2-△△Ct法計算目的基因相對表達量。
1.4 巨噬細胞內糖酵解相關酶(PK、HK、LDH)活性 檢測棄去培養(yǎng)基后用預冷的PBS緩沖液洗2遍,每孔加入200 μL HK(PK或LDH)提取液,將細胞刮下并收集于1.5 mL EP 管內,在冰浴條件下超聲裂解細胞,4 ℃離心10 min,取上清液。按照試劑說明書檢測PK、HK和LDH活性,酶標儀檢測吸光值。
1.5 巨噬細胞溶酶體、線粒體熒光信號強度檢測按上述實驗分組,每組設6個復孔,極化完成后棄上清,加入100 μL/孔熒光探針工作液,置于細胞培養(yǎng)箱 孵育30 min,PBS 洗3 次,加入100 μL/孔Hank’s 溶液,熒光酶標儀檢測熒光信號強度(溶酶體熒光信號:激發(fā)光525 nm,發(fā)射光590 nm;線粒體熒光信號:激發(fā)光490 nm,發(fā)射光535 nm)。
1.6 Western blotting 法檢測巨噬細胞線粒體自噬相關蛋白表達 提取細胞總蛋白,BCA 法蛋白定量;SDS-PAGE 分離蛋白,轉移至PVDF 膜,5%脫脂牛奶封閉1 h;一抗置于4 ℃冰箱孵育過夜:Tubulin(1∶2 000)、Beclin-1(1∶1 000)、PINK1(1∶1 000),TBST 洗膜3 次;二抗(1∶2 000)室溫孵育2 h,TBST洗膜3次;暗室中電化學發(fā)光法(ECL)顯色,凝膠成像系統(tǒng)中曝光。Image J軟件分析蛋白條帶灰度值。
1.7 細胞內ROS 檢測 按上述實驗分組,每組設6 個復孔,同時設置陽性對照組(陽性對照試劑為Rosup,于37 ℃培養(yǎng)箱內預處理25 min);極化完后用PBS 洗3 次,加入DCFH-DA 工作液100 μL/孔,置于細胞培養(yǎng)孵育20 min;PBS洗3次,加入100 μL/孔Hank’s 溶液,熒光酶標儀檢測熒光信號強度(激發(fā)光490 nm,發(fā)射光535 nm)。
1.8 統(tǒng)計學方法 所有數(shù)據(jù)采用SPSS 23.0統(tǒng)計軟件進行分析,計量資料以均數(shù)±標準差()表示,多組間比較采用方差分析,組間兩兩比較采用LSDt檢驗,以P<0.05為差異有統(tǒng)計學意義。
2.1 2-DG 對M1 型巨噬細胞極化相關基因表達的影響 與M0 組相比,M1 組TNF-α、IL-6、CXCL-10和COX-2 mRNA表達升高(均P<0.01);與M1組相比,M1+2-DG 組TNF-α、IL-6、CXCL-10 和COX-2 mRNA表達降低(均P<0.05),見圖1。

圖1 3 組TNF-α、COX-2、IL-6、CXCL-10 mRNA 表達水平比較
2.2 2-DG 對M1 型巨噬細胞糖酵解相關酶活性的影響 與M0 組相比,M1 組PK、HK 和LDH 活性增加(均P<0.01),與M1組相比,M1+2-DG組PK、HK和LDH活性降低(P<0.05,P<0.01),見圖2。
2.3 2-DG 對M1 型巨噬細胞極化過程中線粒體和溶酶體熒光信號的影響 與M0 組相比,M1 組溶酶體的熒光信號增強,線粒體熒光信號減弱(P<0.01);與M1組相比,M1+2-DG組溶酶體熒光減弱,線粒體熒光增強(P<0.01),見圖3。
2.4 2-DG 對M1 型巨噬細胞極化過程中線粒體自噬相關蛋白表達和胞內ROS 的影響 與M0 組相比,M1 組胞內ROS 升高,自噬啟動蛋白Beclin-1 表達升高,線粒體自噬啟動蛋白PINK1的表達也升高(P<0.05);與M1 組相比,M1+2-DG 組胞內的ROS降低,Beclin-1 和PINK1 表達均下降(P<0.05),見圖4。

圖2 3組巨噬細胞內糖酵解相關酶活性比較

圖3 3組巨噬細胞內溶酶體和線粒體熒光強度的比較

圖4 3組巨噬細胞胞內ROS產(chǎn)生及線粒體自噬蛋白表達的比較
巨噬細胞是先天免疫系統(tǒng)中最重要的免疫細胞,負責殺傷清除入侵機體的病原體,啟動炎癥、清除損傷組織和炎癥恢復的組織修復。巨噬細胞具有高度可塑性,通過在不同免疫微環(huán)境中極化為不同的活化亞群,主要為經(jīng)典激活的M1 型和交替激活的M2型巨噬細胞,由M1執(zhí)行殺傷,而M2執(zhí)行免疫調節(jié)和組織修復功能。二者在執(zhí)行各自特定的功能時均需巨大的能量支持,糖酵解和氧化磷酸化是免疫細胞在免疫應答中產(chǎn)生ATP 的重要代謝途徑。線粒體是真核生物細胞內氧化磷酸化供能最重要的場所,對免疫細胞的分化有重要的調控作用[3,9]。
在LPS誘導的急性肺損傷的小鼠模型中,2-DG可顯著減輕小鼠肺組織病理損傷,降低促炎因子TNF-α、IL-1β、NLRP3 的基因表達水平[10]。本研究中2-DG 可降低M1型巨噬細胞極化相關基因IL-6、TNF-α、CXCL-10 和COX-2 的mRNA 表達(均P<0.05),提示2-DG能降低M1型巨噬細胞促炎性因子的表達。有研究報道,2-DG對人血單核細胞來源的巨噬細胞進行預處理后,堿性磷酸鈣(BCP)誘導的CXCL-9、CXCL-10、CD40、CD80 和CD86 的表面標記表達顯著降低,提示2-DG 可抑制BCP 誘導巨噬細胞的促炎作用[11],這與本研究結果相似。巨噬細胞極化時,通過糖代謝重新編程以滿足不同免疫應答微環(huán)境的需求,適應感染和腫瘤等不同性質的炎癥中免疫反應過程[12]。在LPS或IL-12刺激下,極化的巨噬細胞代謝主要以無氧糖酵解途徑為主[13]。本研究結果顯示,巨噬細胞在LPS和IFN-γ刺激下,由M0型極化為M1型后,糖酵解關鍵酶HK、PK、LDH活性均增加(均P<0.05),提示細胞內糖酵解水平增加。2-DG 是糖酵解抑制劑,可被HK 磷酸化為2-DG-磷酸,該產(chǎn)物不能進一步代謝,累積的2-DG-磷酸可抑制細胞糖酵解[14]。本實驗結果顯示2-DG 處理可以抑制M1型巨噬細胞HK、PK和LDH活性,降低M1型巨噬細胞的糖酵解水平,抑制M1型極化基因IL-6、TNF-α、CXCL-10、COX-2基因表達水平(均P<0.05),這可能是2-DG抑制細胞糖酵解,改變M1型巨噬細胞代謝重編程,負調節(jié)M1 極化的重要途徑。
線粒體是機體免疫應答的關鍵角色,在調控巨噬細胞的功能和表型方面起到重要的作用。線粒體熒光探針是一類活細胞內線粒體特異性熒光染料,溶酶體探針是一種帶有弱堿性的熒光探針,可以選擇性滯留在偏酸性的胞內溶酶體中,特異性標記溶酶體;二者分別能監(jiān)測巨噬細胞內溶酶體和線粒體活性及數(shù)量的動態(tài)變化,線粒體自噬是細胞自噬中的一種選擇性自噬,可在一系列受體和適配器分子的調控下,對功能性損傷線粒體進行快速協(xié)調的清除,主要包括PINK1/Parkin 和線粒體外膜受體介導的線粒體自噬[15]。文獻報道小鼠巨噬細胞經(jīng)LPS誘導分化通過Toll樣受體4激活PI3K/AKT/NFκB通路產(chǎn)生大量ROS,進而誘導細胞內自噬及線粒體自噬的發(fā)生[16]。本研究結果顯示,M0 極化為M1型時,細胞ROS升高,線粒體數(shù)量減少,溶酶體增多(均P<0.05),可能是M1極化過程中胞內ROS引起線粒體損傷,溶酶體融合受損線粒體數(shù)量增多,同時檢測到M1 極化過程中線粒體自噬相關蛋白Beclin-1、PINK1 的表達明顯升高(均P<0.05),提示LPS和IFN-γ誘導的M1巨噬細胞代謝重編程后,糖酵解增強,伴隨細胞內產(chǎn)生大量ROS,功能性損傷線粒體增多,線粒體定位蛋白PINK1聚集在線粒體外膜上募集Pakin進行泛素化增加[17-18],伴隨著自噬特異性Ⅲ類磷脂酰肌醇-3激酶復合物中的Beclin-1增加[19],進一步促進損傷線粒體與自噬體結合,最終導致線粒體自噬水平增加,細胞內線粒體數(shù)量明顯降低,巨噬細胞向M1型極化,啟動炎癥反應。文獻報道在敲除轉谷氨酰胺酶2(TG2)的小鼠胚胎成纖維細胞和人胚胎腎細胞中,2-DG可以抑制細胞糖酵解活性,緩解羰基氰化物間氯苯腙誘導受損線粒體在細胞累積,促進細胞線粒體自噬[20]。這與本實驗研究模型不同,2-DG 干預LPS 和IFN-γ 誘導的M1型極化巨噬細胞后線粒體自噬蛋白Beclin-1 和PINK1 表達明顯降低,抑制M1 型極化過程中線粒體自噬(均P<0.05)。以上結果表明2-DG 在不同的細胞模型中對線粒體自噬的調控不同,提示2-DG對線粒體自噬可能存在多種調控方式。研究發(fā)現(xiàn)受損的線粒體功能失調會產(chǎn)生大量ROS,過量的ROS 可以啟動線粒體自噬[18]。2-DG 可以激活AMPK 降低球形脂聯(lián)素誘導小鼠巨噬細胞細胞系RAW 264.7細胞mTOR磷酸化,降低細胞內ROS的產(chǎn)生[21]。結合本研究結果,提示2-DG可能通過抑制細胞內糖酵解,降低LPS和IFN-γ誘導的M1極化過程產(chǎn)生的大量ROS,減輕線粒體的損傷,與溶酶體融合的受損線粒體減少,從而降低線粒體自噬水平,抑制M1型巨噬細胞的炎癥極化,防止過度極化造成的炎癥反應。
綜上所述,2-DG通過抑制M1型巨噬細胞糖酵解水平,引起細胞體內代謝發(fā)生重編程,減少ROS生成,減輕線粒體的損傷,降低細胞線粒體自噬水平,抑制促炎性因子分泌,負調控M1型巨噬細胞炎癥極化,本研究為2-DG 作為新免疫調節(jié)劑治療炎癥性疾病和腫瘤提供新的理論依據(jù)。