LncRNA CCAT1通過MAPK/ERK通路影響子宮內膜癌細胞的侵襲轉移①

李 林 魏旭靜 路素雙 劉 晶 （河北醫科大學第一醫院婦產科，石家莊 050000）

子宮內膜癌是常見的女性生殖系統惡性腫瘤之一，嚴重威脅女性患者的生命和健康。子宮內膜癌的病因和發病機制復雜，普遍認為子宮內膜癌的發生發展是多步驟多基因控制的復雜過程。子宮內膜癌的侵襲遷移能力嚴重影響患者預后，探討子宮內膜癌細胞侵襲遷移的機制對改善患者預后具有 重 要 意 義［1-2］。 長 鏈 非 編 碼 RNA（LncRNA）CCAT1 在多種惡性腫瘤中高表達，被認為是一種癌基因，CCAT1 在多種惡性腫瘤的侵襲遷移中也發揮重要作用［3-4］，但CCAT1參與惡性腫瘤細胞侵襲遷移的機制復雜。MAPK/ERK 信號通路參與惡性腫瘤的侵襲遷移過程，MAPK/ERK 信號通路激活可促進惡性腫瘤細胞的侵襲遷移［5-6］。CCAT1 是否可通過MAPK/ERK 信號通路參與子宮內膜癌細胞的侵襲遷移尚不明確。本文對子宮內膜癌KLE 細胞中CCAT1 的表達以及沉默CCAT1 對子宮內膜癌侵襲遷移和MAPK/ERK信號通路的影響進行研究，探討CCAT1在子宮內膜癌侵襲遷移中的可能作用機制。

1 材料與方法

1.1 材料 人子宮內膜癌細胞系KLE 和正常人子宮內膜基質細胞系T-HESC（中國科學院上海細胞庫）；CCAT1 siRNA（CCAT1-siRNA）和 NC siRNA（NC）（廣州博銳生物科技）；Lipofectamine 2000 試劑盒（美國Invitrogen 公司）；聚合酶鏈反應（PCR）試劑盒、逆轉錄（RT）試劑盒、Trizol 試劑、ECL 化學發光試劑盒（美國Sigma 公司）；胰蛋白酶、DMEM 培養基、ERK 通路激動劑表皮生長因子（EGF）（美國BPB公司）；兔抗人ERK 單克隆抗體、兔抗人p-ERK 單克隆抗體（美國Santa Cruz 公司）；Transwell 小室（美國Corning公司）；PCR擴增儀（美國Gibco公司）。

1.2 方法

1.2.1 實時熒光 RT-PCR 測定 KLE 和 T-HESC 細胞中CCAT1 水平 miR Vana miRNA 法分離兩種細胞總RNA ，每組設7 個復孔，分光光度計測定RNA 濃度和純度。將分離的RNA 逆轉錄為cDNA，采用PCR 測定兩細胞中CCAT1 水平（CCAT1 上游引物為5'-CCA TTC CAT TCA TTT CTC TTT CCT A-3'，下游引物為 5'-GGC GTA GGC GAT TGG GGA TCG-3'）。PCR 反應條件為 95℃ 30 s；95℃ 15 s；58℃ 30 s，共40 個 循 環 。 以 U6 為 內 參 照 。 CCAT1 水 平 以 2?ΔΔCt表示。

1.2.2 細胞分組和轉染 取對數生長期的KLE 細胞分為空白對照組（BC 組）、陰性對照組（NC 組）、CCAT1-siRNA 組和 CCAT1-siRNA+EGF 組，根據 Li?pofectamine 2000 試劑盒說明轉染各組細胞：取各組對數生長期的KLE細胞接種到6孔板中（5×105個/孔）培養24 h，細胞生長至90%以上融合時進行轉染，CCAT1-siRNA 組 轉 染 CCAT1-siRNA，CCAT1-siR?NA+EGF 組轉染CCAT1-siRNA 并加入30 ng/ml EGF 處理［7］，NC 組轉染陰性對照 siRNA，BC 組不轉染。轉染48 h，采用實時熒光RT-PCR 測定，細胞中CCAT1水平，方法同1.2.1。

1.2.3 Transwell 測定各組KLE 細胞侵襲能力 取轉染48 h 各組KLE 細胞，培養至對數生長期時用無血清培養基重懸細胞，接種到Transwell 小室上室（1×104個/孔），小室下室加入含胎牛血清的培養基，培養24 h，抽吸基質膠去除上室孔內細胞，并用棉簽擦拭，小室下室細胞用乙醇固定10 min，結晶紫染色15 min，顯微鏡下觀察并計算穿膜細胞數。每組設7個復孔。

1.2.4 劃痕實驗測定各組KLE 細胞遷移能力 將各組轉染48 h KLE 細胞培養至對數生長，在6 孔板背面用0.5 mm 記號筆每隔1 cm 劃平行直線標記，將對數生長期KLE 細胞密度調整為1×106個/ml，接種到標記好的6 孔板中，貼壁生長后，取長勢良好、密度均勻的細胞做劃痕：用20μl槍頭在細胞面垂直版面劃直線，出去劃痕部位殘留細胞，培養24 h 后，顯微鏡下測量0 h 和24 h 劃痕距離，計算細胞遷移距離（遷移距離=0 h劃痕距離?24 h劃痕距離）。

1.2.5 Western blot 測 定 各 組 KLE 細 胞 ERK 和 p-ERK 蛋白水平 取各組轉染48 h KLE 細胞，提取各組細胞總蛋白質，進行SDS-PAGE 凝膠電泳，經過轉膜后，加入BSA 封閉2 h，加入一抗（兔抗人ERK 單克隆抗體、兔抗人p-ERK 單克隆抗體）（1∶500）過夜孵育，加入二抗（1∶5 000）孵育1 h，以β-actin 為內參照。用Image J 圖像分析軟件分析條帶灰度值。目標蛋白水平以目標蛋白條帶灰度值/β-actin 條帶灰度值表示。

1.3 統計學分析 采用SPSS20.0 軟件分析，CCAT1 水平、侵襲細胞數、遷移距離以及E-cadh?rein、Vimentin、Snail、Twist、ERK 和 p-ERK 蛋白水平以表示，兩組采用t檢驗，三組采用方差分析，組內兩兩比較采用LSD檢驗，取P<0.05為差異有統計學意義。

2 結果

2.1 CCAT1 在 KLE 細胞中的表達 KLE 細胞中CCAT1 水平（1.83±0.17）高于 T-HESC 細胞（1.00±0.09）（t=11.416，P<0.001）。見圖1。

圖1 KLE和T-HESC細胞中CCAT1水平Fig.1 CCAT1 levels in KLE and T-HESC cells

2.2 CCAT1-siRNA 對 KLE 細胞中 CCAT1 水平的影響 與 BC 組（1.00±0.11）和 NC 組（0.98±0.09）比較，CCAT1-siRNA 組KLE細胞中CCAT1水平（0.37±0.08）降低（F=101.237，P<0.001），BC 組和 NC 組KLE 細胞中CCAT1水平比較差異無統計學意義（P>0.05）。見圖2。

圖2 各組KLE細胞中CCAT1水平Fig.2 CCAT1 levels in KLE cells of each group

2.3 各組KLE 細胞侵襲能力比較 與BC 組和NC組比較，CCAT1-siRNA 組KLE 細胞侵襲細胞數降低（P<0.05），與CCAT1-siRNA 組比較，CCAT1-siRNA+EGF 組KLE 細胞侵襲細胞數升高（P<0.05），BC 組和NC 組KLE 細胞侵襲細胞數差異無統計學意義（P>0.05）。見表1和圖3。

表1 各組KLE細胞侵襲細胞數和遷移距離比較（）Tab.1 Comparison of number of invasion cells and mi?gration distance of each group of KLE cells（）

表1 各組KLE細胞侵襲細胞數和遷移距離比較（）Tab.1 Comparison of number of invasion cells and mi?gration distance of each group of KLE cells（）

Note：Compared with BC group，1）P<0.05；compared with NC group，2）P<0.05；compared with CCAT1-siRNA group，3）P<0.05.

Migration distance（mm）7.23±1.21 7.16±1.18 2.69±0.831）2）4.76±0.911）2）3）30.273<0.001 Groups BC NC CCAT1-siRNA CCAT1-siRNA+EGF F P Number of invasion cells 87.42±12.35 85.86±11.58 31.27±8.351）2）52.68±9.141）2）3）47.218<0.001

圖3 Transwell測定各組KLE細胞侵襲能力Fig.3 Transwell assay to determine invasive ability of each group of KLE cells

2.4 各組KLE 細胞遷移能力比較 與BC 組和NC組比較，CCAT1-siRNA 組KLE 細胞遷移距離降低（P<0.05），與CCAT1-siRNA 組比較，CCAT1-siRNA+EGF 組KLE 細胞遷移距離增加（P<0.05），BC 組和NC 組KLE 細胞遷移距離差異無統計學意義（P>0.05）。見表1和圖4。

圖4 劃痕實驗測定各組KLE細胞遷移能力Fig.4 Scratch test to determine migration ability of each group of KLE cells

2.5 各組KLE 細胞ERK 和p-ERK 蛋白水平比較 各組KLE 細胞ERK 蛋白水平差異無統計學意義（P>0.05）；與 BC 組和 NC 組比較，CCAT1-siRNA 組KLE細胞p-ERK蛋白水平降低（P<0.05），與CCAT1-siRNA 組 比 較 ，CCAT1-siRNA+EGF 組 KLE 細 胞 p-ERK蛋白水平升高（P<0.05），BC組和NC組KLE細胞p-ERK蛋白水平差異無統計學意義（P>0.05）。見表2和圖5。

表2 各組KLE細胞ERK和p-ERK蛋白水平比較（）Tab.2 Comparison of ERK and p-ERK protein levels in KLE cells of each group（）

表2 各組KLE細胞ERK和p-ERK蛋白水平比較（）Tab.2 Comparison of ERK and p-ERK protein levels in KLE cells of each group（）

Note：Compared with BC group，1）P<0.05；compared with NC group，2）P<0.05；compared with CCAT1-siRNA group，3）P<0.05.

p-ERK 0.28±0.06 0.27±0.07 0.07±0.021）2）0.18±0.031）2）3）27.238<0.001 Groups BC NC CCAT1-siRNA CCAT1-siRNA+EGF F P ERK 0.51±0.08 0.49±0.11 0.50±0.09 0.52±0.10 0.128 0.943

圖5 Western blot 測定各組 KLE 細胞 ERK 和 p-ERK 蛋白水平Fig.5 Western blot analysis to determine ERK and p-ERK protein levels in KLE cells

3 討論

CCAT1 位于轉錄因子c-Myc 附近、長度為2 628 nt 的長鏈非編碼RNA，最初在結腸癌中高表達被發現，后來研究發現在乳腺癌、卵巢癌、肝癌、胃癌等多種惡性腫瘤中高表達，被認為是一種致癌基因，可通過與miRNA 相互作用參與靶基因的調控，從而參與惡性腫瘤的增殖、凋亡、侵襲及遷移等過程，有望成為惡性腫瘤治療的潛在靶點［8］。大量研究發現CCAT1 參與多種惡性腫瘤的侵襲遷移過程，如CCAT1 可促進前列腺癌、宮頸癌、乳頭狀甲狀腺癌的侵襲和遷移，可通過抑制miR-33a 預防黑素瘤細胞的侵襲，沉默CCAT1 可通過下調Bmi-1 的表達抑制胃癌的侵襲和遷移［9-13］。CCAT1 在子宮內膜癌中的作用也受到大家關注，如YU 等［14］也發現CCAT1 在子宮內膜癌組織和子宮內膜癌KLE、Ishi?waka、HEC-1-A等細胞中高表達；潘洪麗等［15］研究發現 HEC-1-B 和 AN3CA 細胞中 CCAT1 水平升高，沉默CCAT1 可抑制HEC-1-B 細胞的侵襲遷移和上皮間質轉化。但CCAT1 影響子宮內膜癌細胞侵襲遷移的機制尚不清楚。

惡性腫瘤細胞的侵襲遷移受多種信號通路的調控，MAPK 信號通路參與細胞增殖、分化、侵襲、遷移的調控過程，在惡性腫瘤細胞的生長發育及浸潤中發揮重要作用。MAPK 有4 條信號通路，其中ERK 途徑信號通路在信號傳遞中發揮重要作用，和人類惡性腫瘤的關系最密切［16］。p-ERK 為 ERK 的活化形式，只有活化的ERK 才具有活性。磷酸化的ERK 可影響多種癌基因的轉錄和表達，促進血管生成，破壞細胞外基質，促進癌細胞運動而發生轉移，MAPK/ERK 信號通路的激活可促進EMT 過程的進展［17］。MAPK/ERK 信號通路在子宮內膜癌侵襲遷移的調控中發揮重要作用［18］。CCAT1 可通過促進惡性腫瘤細胞MAPK信號通路參與惡性腫瘤細胞的侵襲遷移過程，如CCAT1 可通過MAPK 信號通路促進成神經管細胞瘤的轉移［19］；通過激活MAPK 信號通路影響胃癌細胞的侵襲遷移［20］。

介于MAPK/ERK 信號通路在子宮內膜癌侵襲遷移的調控中發揮重要作用，CCAT1 可通過MAPK信號通路參與惡性腫瘤的侵襲轉移過程，因此推測CCAT1 可能通過MAPK/ERK 信號通路參與子宮內膜癌的發生發展。本文對子宮內膜癌細胞KLE 中CCAT1 的表達子宮內膜癌細胞侵襲、遷移和MAPK/ERK 信號通路的影響進行研究，發現CCAT1在子宮內膜癌細胞中高表達，沉默CCAT1 的表達可抑制子宮內膜癌細胞的侵襲遷移和MAPK/ERK信號通路，給予ERK 通路激動劑處理后沉默CCAT1 的表達對子宮內膜癌細胞的侵襲遷移和MAPK/ERK 信號通路的抑制作用減弱，由此分析沉默CCAT1 可能通過抑制MAPK/ERK 信號通路抑制EMT 過程，從而抑制子宮內膜癌的侵襲遷移。

綜上所述，子宮內膜癌KLE 細胞中高表達CCAT1，CCAT1 可能通過抑制 MAPK/ERK 信號通路抑制EMT過程參與子宮內膜癌的侵襲遷移。