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高產乙酸乙酯酵母菌的篩選及其在清香型小曲白酒生產中的應用

2021-09-03 09:59:58陳佳興劉源才程學勛陳申習
中國釀造 2021年8期
關鍵詞:酵母菌

許 銀,楊 強,張 龍,陳佳興,劉源才,陳 凱,程學勛,陳申習*

(1.勁牌有限公司 勁牌研究院 中藥保健食品質量與安全湖北省重點實驗室,湖北 黃石 435000;2.宜賓六尺巷酒業有限公司,四川 宜賓 644000)

酯類物質作為一種具有芳香性氣味的易揮發性化合物,大多具有水果香味,廣泛存在于各類香型白酒中,對于協調白酒的香氣和提升口感具有重要的作用[1-3]。在眾多酯類物質中,以乙酸乙酯研究較多,特別是在清香型白酒研究領域[4-7]?,F有研究表明,乙酸乙酯是清香型白酒的主體呈香物質,對清香型白酒風格的形成具有重要作用,決定著清香型白酒的質量分級[8-9]。

清香型白酒中乙酸乙酯的產生,是生香酵母以及酶催化作用形成的[10-11]。產酯能力較強的酵母包括畢赤酵母屬(Pichia)、漢遜酵母屬(Hansenula)、假絲酵母屬(Candida)等[12-14]。目前,作為清香型白酒的重要分支,清香型小曲白酒中乙酸乙酯含量相對較低。原因在于白酒發酵過程中氧氣的快速消耗,與產酯有關的大多數酵母代謝能力大幅減弱。同時,由于環境因子的脅迫,產酯酵母數量急劇下降,從而導致小曲白酒中乙酸乙酯含量不足。近年來,許多白酒企業嘗試延長發酵周期或者在蒸餾時添加乙酸乙酯,來提高成品酒中乙酸乙酯含量,這雖取得了一定效果,但在實際運用中受到很多限制。白酒發酵中的微生物可產生乙酸乙酯,所以要從根本上提升乙酸乙酯含量,還需從菌株自身發酵性能方面開展工作[15-18]。

本研究從濃香型大曲中分離純化酵母菌,結合形態學觀察和分子生物學鑒定,經過高粱汁發酵初篩、固態發酵復篩,以獲得高產乙酸乙酯的酵母菌,并將其應用于清香型小曲白酒工業生產。這對于提升發酵后原酒中乙酸乙酯含量,提高清香型小曲白酒的口感和品質,滿足消費者對高品質白酒的需求具有重要意義。

1 材料與方法

1.1 材料與試劑

1.1.1 材料

濃香型大曲:四川宜賓六尺巷酒業有限公司;東北粳高粱:黑龍江大慶;麩皮:河南飛天農業開發股份有限公司。

1.1.2 化學試劑

β-淀粉酶(酶活50 000 U/g)、糖化酶(酶活100 000 U/g):無錫雪梅酶制劑科技有限公司;真菌基因組脫氧核糖核酸(deoxyribonucleic acid,DNA)提取試劑盒:上海生工生物技術服務公司;DNA凝膠回收試劑盒:美國AXYGEN公司;乙醛、甲醇、正丙醇、乙酸乙酯等標準品(均為色譜純):中國醫藥集團有限公司;硫酸(分析純):中國醫藥集團有限公司。Q5高保真DNA聚合酶:美國NEB公司;聚合酶鏈式反應(polymerasechainreaction,PCR)緩沖液、脫氧核糖核苷三磷酸(deoxyribonucleoside triphosphate,dNTP)混合液、引物ITS1和ITS4:寶日醫生物技術(北京)有限公司。

1.1.3 培養基

華倫斯坦實驗室(Wallestein laboratory,WL)營養瓊脂培養基[19]:葡萄糖50 g/L,酵母浸粉4 g/L,蛋白胨5 g/L,硫酸鎂0.125 g/L,磷酸二氫鉀0.55 g/L,氯化鉀0.425 g/L,氯化鈣0.125g/L,硫酸錳0.002 5 g/L,氯化鐵0.002 5 g/L,溴甲酚綠0.022g/L(滅菌后添加),瓊脂20 g/L,青霉素0.1 g/L,調節pH為6.5,121 ℃滅菌20 min。酵母浸出粉胨葡萄糖(yeast extract peptone dextrose,YPD)培養基[19]:酵母提取物10 g/L,葡萄糖20 g/L,蛋白胨20 g/L,青霉素0.1 g/L。固體培養基添加瓊脂粉20 g/L。121 ℃滅菌30 min。

高粱汁培養基[19]:高粱200 g經粉碎后,加蒸餾水800 mL,然后添加β-淀粉酶10 g和糖化酶10 g,置于60 ℃恒溫箱中糖化24 h,經過濾得濾液,濾液糖度調整為10°Bx。

高粱固體培養基:取1 kg粳高粱放置不銹鋼容器中,添加溫度為60 ℃的蒸餾水沒過高粱表面,培養箱控制溫度為60 ℃,浸泡18 h,然后瀝干泡糧水,用抹布包裹高粱進行初蒸(121 ℃、30 min)、燜糧(80 ℃、40 min)、復蒸(115 ℃、15 min),即為高粱固體培養基。

麩皮培養基:取一定質量麩皮,添加蒸餾水,使得含水量在45%~50%之間,于121 ℃滅菌45 min。

1.2 儀器與設備

AL204電子分析天平:梅特勒-托利多儀器(上海)有限公司;JJ1000電子天平:常熟雙杰測試儀器廠;SFG-02B電熱恒溫鼓風干燥箱:上海精宏實驗設備儀器廠;QYC-200全溫空氣搖床:上海?,攲嶒炘O備有限公司;YXQ-LS-75S蒸汽滅菌鍋、SPX-100B-Z生化培養箱:上海博訊實業有限公司;5424R艾本德小型離心機:艾本德(中國)儀器有限公司;YPZQ-45圓盤制曲機:煙臺良榮機械精業有限公司;BCM-1600A潔凈工作臺:蘇州安泰空氣技術有限公司;Nikon ECLIPSE E200顯微鏡:日本Nikon公司;Agilent 7890A型氣相色譜(gas chromatography,GC)儀(配有氫火焰檢測器和7863型自動進樣器):美國安捷倫公司;2720型PCR儀:美國ABI公司;DYY-6C型電泳儀:北京六一儀器廠;BG-gdsAUTO(130)凝膠成像系統:北京百晶生物科技有限公司。

1.3 試驗方法

1.3.1 酵母菌的分離純化[20]

將濃香型大曲樣品用粉碎機粉碎后,制成粉狀備用。稱取曲粉5 g,放入盛有95 mL無菌水并帶有玻璃珠的250 mL三角瓶中,30 ℃、200 r/min條件下振蕩培養30 min,制成菌懸液。按10倍梯度系列將菌懸液稀釋至10-4,取稀釋度為10-1、10-2、10-3和10-4的曲粉溶液0.2 mL分別涂布于WL營養瓊脂培養基中,于30 ℃條件下培養24~48 h后,挑取單菌落劃線于YPD培養基上,30 ℃條件下培養48 h。經過2~3次平板劃線后得到初步純化的菌落,4 ℃保存,備用。

1.3.2 酵母菌的鑒定

(1)形態觀察

參考《真菌鑒定手冊》對菌落的顏色、透明度、大小等特征及細胞形態進行描述分類[21]。

(2)分子生物學鑒定

采用DNA提取試劑盒提取酵母菌的基因組DNA,以其為模板,采用真菌通用引物ITS1(5'-TCCGTAGGTGAACCTGCGG-3')和ITS4(5'-TCCTCCGCTTATTGATATGC-3')對其ITS區基因序列進行PCR擴增。PCR擴增體系(25 μL):PCR緩沖液10 μL,dNTP混合液(2.5 mmol/L)2 μL,引物ITS1(10 μmol/L)1 μL,引物ITS4(10 μmol/L)1 μL,真菌DNA模板2 μL,超純水8.75 μL,Q5 DNA聚合酶0.25 μL。PCR擴增條件:95 ℃預變性5 min;95 ℃變性30 s,52 ℃退火40 s,72 ℃延伸60 s,共35個循環;72 ℃再延伸10 min。PCR擴增產物經2%瓊脂糖凝膠電泳檢測,純化后送華大基因(武漢)測序公司測序。將測序結果提交至美國國家標準技術研究所(national institute of standards and technology,NIST)的GenBank數據庫中,采用基本局部比對搜索工具(basic local alignment search tool,BLAST)進行同源性搜索,選取同源性較高的模式菌株的ITS基因序列,采用MEGA 6.0中的鄰接(neighbor-joing,NJ)法構建系統發育樹。

1.3.3 酵母菌的液態發酵實驗

把分離純化后的單菌落接種于含有10 mL YPD液態培養基的無菌試管中,30 ℃、150 r/min條件下振蕩培養48 h,吸取0.4 mL菌液接種于含有50 mL高粱汁培養基的250 mL三角瓶發酵栓中,以不接種任何菌液的高粱汁培養基為空白對照,以市售常用產酯酵母Y0為陽性對照。樣品于30 ℃生化培養箱恒溫培養,每隔24 h小心振蕩發酵栓并稱質量,當質量損失<0.2 g時,停止培養。將培養后的發酵液離心(20 ℃,8 000 r/min)、過濾后,取發酵液,采用氣相色譜檢測乙酸乙酯及雜醇(異丁醇、異戊醇)含量[22]。

1.3.4 酵母菌麩皮種的制作

酵母菌麩皮種的制作:將篩選得到的酵母菌接種于含有5 mL YPD培養基的試管中,30 ℃、150 r/min振蕩培養24 h,然后接入無菌的200 mL YPD液態培養基中,30 ℃、150 r/min培養24 h后作為種子液。按照每g麩皮培養基接種0.5 mL種子液(酵母數量為1×107CFU/mL)進行接種,30 ℃培養36 h,將麩皮培養物35 ℃條件下干燥6~8 h,即得酵母菌麩皮種。

酵母麩皮種的擴大培養:采用圓盤制曲機生產。按照上述比例將酵母種子液接種于麩皮培養基,啟動溫控系統自動控制圓盤溫度在30~32 ℃之間,培養32 h后,出盤干燥,然后粉碎,檢測細胞數>10×108CFU/g為合格。

1.3.5 酵母菌的固態發酵實驗

將酵母菌麩皮種,按照質量分數5%添加到勁牌小曲中,以添加市售酵母Y0的勁牌小曲為陽性對照,不添加菌株的勁牌小曲樣品為空白對照,在無菌實驗室模擬清香型小曲白酒生產工藝條件[23-24],具體操作工藝流程:泡糧(60 ℃,20 h)、初蒸(121 ℃,30 min)、燜糧(60 ℃,1 h)、復蒸(115 ℃,15 min)、撒曲(1%)、糖化(24 h)、發酵(7 d)。蒸糧結束后,熟糧完全透心,一致性好,水分含量在55%左右;稱取糖化醅500 g與配糟(配糟采用車間大生產蒸餾后的鮮糟)按質量比1∶1混勻后入瓶,瓶塞上裝2.5 mol/L硫酸密封,在培養箱中30 ℃發酵7 d。發酵結束后,采用固態蒸餾,取100 mL蒸餾液,采用氣相色譜檢測乙酸乙酯含量[22]。

1.3.6 酵母菌強化酒曲在清香型小曲白酒生產中的應用

采用圓盤制曲機生產出酵母菌麩皮種與車間酒曲進行配比優化,酵母麩皮種按質量比為3∶100添加到酒曲中,制備成車間實驗用曲,以不加菌酒曲為空白對照,按清香型小曲白酒車間生產工藝進行中試生產。清香型小曲白酒車間生產工藝:泡糧(75 ℃,17 h)、初蒸(0.12 MPa,30 min)、燜糧(60 ℃,1 h)、復蒸(0.04 MPa,15 min)、加曲(1%)、糖化(22 h)、發酵(14 d)。中試生產每次投糧1 000 kg,發酵結束后經固態蒸餾即得小曲原酒,取100 mL原酒,采用氣相色譜檢測揮發性風味物質[22],并進行感官評價。

1.3.7 出酒率的計算

在20 ℃條件下,求得已折算為乙醇體積占比55%的原酒質量,即為原酒產量,計算出單位投糧量的原酒產量即為出酒率[25-26]。

1.3.8 清香型小曲白酒的感官評價

邀請勁牌公司5位國家級白酒評委,參照國家標準GB/T 33404—2016《白酒感官品評導則》對白酒進行感官評價[27],滿分為100分。

1.3.9 數據處理

每個實驗重復三次,結果用“平均值±標準差”表示。采用SPSS 19.0分析軟件對數據進行標準差及顯著性分析,P<0.05說明差異顯著[18]。

2 結果與分析

2.1 酵母菌的分離及形態特征

從濃香型大曲中分離純化得到2株菌落形態不同的菌株,分別編號為Y87和Y88。其菌落及細胞形態見圖1。

圖1 菌株Y87(a)與菌株Y88(b)的菌落及細胞形態Fig.1 Colony and cell morphology of strains Y87 (a) and Y88 (b)

由圖1可知,菌株Y87的菌落較大,呈白色,表面光滑,無光澤;細胞呈圓形。菌株Y88的菌落較大,呈白色,表面光滑凸起,有光澤;細胞呈圓形或橢圓形。根據《真菌鑒定手冊》[21],初步鑒定這兩株菌為酵母菌。

2.2 酵母菌的分子生物學鑒定

基于ITS rDNA基因序列構建菌株Y87及Y88的系統發育樹,結果見圖2。

圖2 基于ITS rDNA基因序列菌株Y87與Y88的系統發育樹Fig.2 Phylogenetic tree of strains Y87 and Y88 based on ITS rDNA gene sequences

由圖2可知,菌株Y87與異常威克漢姆酵母(Wickerhamomyces anomalus)聚于同一分支,親緣關系最近;菌株Y88與釀酒酵母(Saccharomyces cerevisiae)聚于同一分支,親緣關系最近。結合形態學觀察,將菌株Y87鑒定為異常威克漢姆酵母(Wickerhamomyces anomalus),菌株Y88鑒定為釀酒酵母(Saccharomyces cerevisiae)。

2.3 酵母菌的液態發酵實驗結果

酵母菌在高粱汁培養基中的發酵性能測定結果見表1。

表1 酵母菌在高粱汁培養基中的發酵性能測定結果Table1 Determination results of fermentation performance of yeasts in sorghum juice medium

由表1可知,酵母菌Y87發酵高粱汁后,CO2質量損失最高,為1.29 g,說明該酵母菌具有一定的產酒能力。從主要揮發性物質乙酸乙酯和雜醇產量來看,酵母菌Y87表現出了較好的產酯能力,乙酸乙酯產量(1.13 g/L)顯著高于市售酵母Y0(0.77 g/L)(P<0.05)且菌株Y87產雜醇量較低(0.056 0 g/L),這對提升原酒品質,協調原酒口感具有促進作用。而菌株Y88產酒和產酯能力較弱。因此,選擇菌株Y87進行固態發酵試驗。

2.4 酵母菌Y87固態發酵實驗結果

將酵母菌Y87添加到酒曲后固態發酵得到的基酒中乙酸乙酯含量見表2。

表2 酵母菌固態發酵得到的基酒中乙酸乙酯含量測定結果Table2 Determination results of ethyl acetate contents in base liquor by yeast solid-state fermentation

由表2可知,菌株Y87固態麩皮種強化到小曲發酵7 d后,菌株Y87酒曲發酵得到的基酒中乙酸乙酯含量達到1.14 g/L,相比空白對照和陽性對照,含量分別提高79.4%和22.8%,表明應用菌株Y87可以顯著提高乙酸乙酯的生成量(P<0.05),可改善原酒的風味。

2.5 菌株Y87強化酒曲在清香型小曲白酒生產中的應用

2.5.1 菌株Y87強化酒曲釀造白酒的揮發性風味物質

菌株Y87強化酒曲釀造白酒中揮發性風味物質測定結果見表3。由表3可知,相比空白對照,菌株Y87強化酒曲釀造白酒出酒率(61.4%)提高了1.2%,乙酸乙酯含量(1.38 g/L)提高36.6%,雜醇含量降低7.1%,正丙醇含量降低16.1%,可顯著提升白酒品質(P<0.05)。

表3 菌株Y87強化酒曲釀造白酒揮發性風味物質測定結果Table3 Determination results of volatile flavor substances in Baijiu brewed by strain Y87 fortified Jiuqu

2.5.2 菌株Y87強化酒曲釀造白酒的感官評價

菌株Y87強化酒曲釀造白酒的感官評分為90.7分,高于空白對照白酒(89.9分),酒品具有清香型小曲白酒的入口醇甜、清香純正、尾較凈等特點,說明通過強化高產乙酸乙酯酵母于酒曲,并應用在清香型小曲白酒生產中,可以提升小曲白酒中風味物質含量。

3 結論

采用WL營養瓊脂培養基從濃香型大曲中分離純化得到2株酵母菌,編號為Y87、Y88,經形態觀察及分子生物學技術鑒定其分別為異常威克漢姆酵母(Wickerhamomyces anomalus)和釀酒酵母(Saccharomyces cerevisiae)。經過液態高粱汁培養基、高粱固態發酵培養基發酵篩選得到菌株Y87為高產乙酸乙酯的酵母菌,高粱汁發酵乙酸乙酯產量達到1.13 g/L,高粱固態發酵乙酸乙酯產量達到1.14 g/L。將菌株Y87強化酒曲應用于清香型小曲白酒的釀造,白酒中乙酸乙酯含量提高36.6%,雜醇含量降低7.1%,正丙醇含量降低16.1%,感官評分為90.7分,具有小曲酒的典型特征,入口醇甜,清香純正。本研究有效地提升了勁牌公司原酒中呈香味物質乙酸乙酯含量,改善了原酒品質,可為發掘純天然菌株資源提供參考依據。

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