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對蝦白斑綜合癥研究進展

2021-10-13 13:04:36張麗文張秀梅丁鈺潔石曉蕾
江西水產科技 2021年4期

張麗文 張秀梅 丁鈺潔 石曉蕾

摘要:綜合對蝦白斑綜合癥的研究進展,介紹了該病的病理學、傳播途徑、癥狀、檢測方法及防治對策,為對蝦白斑綜合癥的進一步研究提供參考。

關鍵詞:對蝦;白斑綜合癥;傳播途徑;防治對策

中圖分類號:S945.4+6 ? ? ? ?文獻標識碼:A

對蝦是世界上具有很高水產養殖潛力的甲殼類動物。它的養殖已在中國、越南、菲律賓等國家成為重要產業。1999年這些國家的對蝦產量占世界產量的近90%[1]。對蝦在養殖過程中會發生疾病,常見的有黑死病、肝胰臟病、白斑綜合癥等。白斑綜合癥是影響養蝦業的最具侵略性的病毒性疾病之一,此病是由白斑綜合癥病毒(White Spot Syndrome Virus,WSSV)引起的,該病毒于1992年在中國臺灣對蝦養殖中首次被發現[2],后遍及亞洲主要養殖國家和地區,1999年,在南美洲發現該病毒,給對蝦養殖造成了重大損失。

1 ?對蝦白斑綜合癥

1.1 ?病理學

白斑綜合癥病毒(White Spot Syndrome Virus, WSSV)作為該病的病原,呈橢圓形,一端有延伸部分,大小約為250 nm×100 nm,核衣殼表現出表面分段的外觀,外殼厚度為6~7 nm,具有三層膜結構。核衣殼和包膜之間的面積在2~7.5 nm之間變化[3]。

1.2 ?傳播途徑

WSSV傳播方式主要是水平傳播。對蝦(包括幼苗)的跨國家和地區貿易、商品凍蝦的國內、國際長途運輸是造成WSSV迅速蔓延和傳播的主要原因。白斑病毒能感染對蝦大部分器官組織,在顯微鏡下觀察,受感染的組織通常來源于中胚層和外胚層,包括結締組織和上皮組織、血細胞、表皮和胃的皮下上皮、鰓、腸、骨骼肌、肝胰腺、心臟、生殖組織和神經[4]。WSSV特異性不強,毒力極強,病死蝦體的WSSV能長期存活,甚至可以在冰凍組織中存活并維持感染力。WSSV宿主范圍廣,已知的該病毒的宿主包括斑節對蝦、中國對蝦、南美白對蝦等[5],它也可以在不同類型的野生甲殼類動物中檢測到,造成交叉感染。

WSSV可能在卵細胞表面垂直傳播[6]。健康或輕微感染病毒的對蝦能有效產卵,并且WSSV在此期間具有高毒力。

2 ?發病癥狀和WSSV檢測方法

2.1 ?發病癥狀

病蝦反應遲鈍,空胃,不吃食,彈跳無力,漫游池邊或水面,病蝦甲売剝離后對著光線觀察頭胸甲上有明顯的針眼大小不規則的白色斑點,白斑小而深的多為發病初期,病蝦頭胸甲易剝離,病蝦出現零星死亡;中后期病蝦甲殼上斑點呈多層禮花樣對外噴射狀,嚴重的已接近甲売穿孔,此類病蝦已出現批量死亡。

2.2 ?檢測方法

WSSV病毒的主要檢測方法有:應用組織病理學和電子顯微鏡觀察WSSV在病蝦組織器官中引起的變化、利用斑點雜交、蛋白質印跡方法、使用ELISA技術、原位雜交技術或通過PCR檢測病毒DNA等。

汪岷[7]等用純化的的中國對蝦的WSSV,免疫新西蘭兔獲得多克隆抗血清,并將多克隆抗血清純化,進行酶標記,建立了直接雙抗體夾心ELISA的診斷方法,該方法用抗體對抗原進行捕捉,來提高反應的敏感性。

高宏[8]等用對蝦原代培養的細胞對WSSV完整病毒顆粒進行吸附,用ELISA法測定吸附的WSSV的量,該方法操作簡便,數據可靠,可用于在沒有對蝦細胞系情況下的篩選WSSV中和抗體。

畢道榮[9]等根據WSSV的保守序列,構建含有WSSV目的擴增片段的質粒為標準品,建立了WSSV實時定量PCR檢測體系,進行定量PCR擴增,利用該方法檢測WSSV,快速、特異、靈敏。

張燕飛[10]等提取了95%酒精保存的病蝦組織(鰓、肌肉、表皮、附肢、復眼)的基因組總DNA,利用PCR對WSSV進行了檢測,從而檢測WSSV的組織特異性,結果發現,對蝦不同組織洋相檢出率高低順序為:鰓>肌肉=表皮>附肢>復眼,所以鰓和肌肉可作為WSSVPCR檢測的合適部位。

3 ?防治對策

病毒性白斑病目前沒有有效的治療方法,加強蝦苗引進的質量管理和為對蝦提供優質的環境成為養殖的關鍵。在采購蝦苗時,加強親蝦和蝦苗的檢測,可從源頭上減少蝦苗帶毒的概率;同時在養殖時每天排污、換水并進行正確處理,隨時清潔設備和工具,定期清除病蝦。一旦發病基本在一周內就排塘,定期消毒。

參考文獻

[1]Food and Agriculture Organization of the United Nations (FAO). 2000. Aquaculture production 1984-1990. Fisheries Circular 185, Review 4, Roma, Italia.

[2]Chou, H. Y., C. Y. Huang, C. F. Lo, 1998. Studies of transmission of white spot syndrome associated baculovirus (WSBV) in Penaeus monodon and P.japonicus via water-borne contact and oral ingestion. Aquaculture 164:263-276.

[3]Durand, S.V., D.V. Lightner, R.M. Redman, y J.R. Bonami. 1997. Ultrastructure and morphogenesis of white spot syndrome baculovirus (WSSV). Diseases of AquaticOrganisms 29:205-211.

[4]Wongteerasupaya, C., J.E. Vickers, S. Sriurairatana. 1995. A non-occluded, systemic baculovirus that occurs in cells of ectodemal and mesodermal arigin and causes high mortality in the black tiger prawn Penaeus monodon. Diseases of Aquatic Organisms 21:69-77.

[5]Inouye, K., S. N. Miwa, H. Oseko, T. Nakano, K. Kimura, M. Monoyama, y H. Hiraoka.1994. Mass mortalities of cultured Kuruma shrimp Penaeus japonicus in Japan in 1993: electron microscopic evidence of the causative virus. Fish Pathology 29:149-158.

[6] Lo, C.F., C.H. Ho, C.H. Chen, K.F. Liu, Y.L. Chiu. 1997. Detection and tissue tropism of white spot syndrome baculovirus (WSBV) in captured brooders of Penaeus monodon with a special emphasis on reproductive organs. Diseases of Aquatic Organisms 30(1):53-72.

[7]汪岷,戴繼勛,等.用ELISA檢驗中國對蝦的白斑綜合癥病毒[J].海洋學報,2000,22(2):132-136.

[8]高宏,袁必鋒,等.一種篩選對蝦白斑綜合癥病毒中和抗體的新辦法[J].水生生物學報,2002,26(3):259-263.

[9]畢道榮,岳志芹,梁成珠,等.實時定量PCR快速檢測對蝦白斑綜合癥病毒[J].山東農業大學學報,2009,40(1):54-58.

[10]張燕飛,簡賀君,謝俊剛.PCR檢測對蝦白斑綜合癥病毒的組織特異性[J].安徽農學通報,2017,23.(13):132-133.

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