高效液相色譜法測(cè)定雞蛋、雞肉中五種類(lèi)胡蘿卜素物質(zhì)

蘭 韜，閆 娜,2，裴 棟，劉佳雯,2，于聰聰，初 僑，李篤信

（1.中國(guó)標(biāo)準(zhǔn)化研究院，北京 100191；2.蘇州大學(xué)藥學(xué)院，江蘇蘇州 215006；3.青島市資源化學(xué)與新材料研究中心，山東青島 266000）

斑蝥黃（Canthaxanthin，C40H52O2）又稱(chēng)角黃素，屬于類(lèi)胡蘿卜素[1]，可通過(guò)家禽消化道吸收并最終富集于蛋黃[2]，是一種較為常用的飼料添加劑。葉黃素、玉米黃素、蝦青素、β-胡蘿卜素等都屬于類(lèi)胡蘿卜素，被廣泛用于食品、醫(yī)藥、化妝品、飼料等行業(yè)[3?4]。這些色素能提高肉雞皮膚、腳脛和胴體的顏色，使雞肉的新鮮度和健康度提高，提高雞肉制品的附加值[5]。同時(shí)這些色素也可以加深蛋黃色澤，有商家就把這種“美容蛋”冒充土雞蛋，賺取高額差價(jià)[6]。2019年“3.15”央視晚會(huì)也報(bào)道了斑蝥黃染色雞蛋冒充土雞蛋的問(wèn)題，引起了社會(huì)的廣泛關(guān)注[7]。

這些著色劑在低劑量時(shí)對(duì)人體具有一定的保健作用[8]，但是如果過(guò)量攝入可能會(huì)對(duì)人體造成一定的危害，如斑蝥黃積累會(huì)造成視力減退等眼疾[9]，所以歐盟于2003年規(guī)定飼料中斑蝥黃的含量為25 mg/kg[10]，聯(lián)合國(guó)糧食及農(nóng)業(yè)組織和世界衛(wèi)生組織聯(lián)合食品添加劑專(zhuān)家委員會(huì)規(guī)定斑蝥黃每日允許攝入量為0.03 mg/kg BW[11]，日本“肯定列表制度”規(guī)定禽蛋中斑蝥黃的最大殘留限量為0.1 mg/kg[12]，我國(guó)也在2018年《飼料添加劑安全使用規(guī)范》中規(guī)定飼料中斑蝥黃的限量為25 mg/kg[13]。因此，建立禽蛋制品中斑蝥黃等色素含量的檢測(cè)方法標(biāo)準(zhǔn)以監(jiān)控色素的使用勢(shì)在必行。

目前針對(duì)天然色素的檢測(cè)方法主要包括分光光度計(jì)法[14]、高效液相色譜法[15?17]、液相色譜-質(zhì)譜聯(lián)用法[18?20]等，其中高效液相色譜法分析速度快，普及率高，成為分離此類(lèi)物質(zhì)的首選方法。然而玉米黃質(zhì)和葉黃素兩者互為異構(gòu)體，分離起來(lái)比較困難，對(duì)其分離仍然是一項(xiàng)挑戰(zhàn)[21]。通過(guò)查閱文獻(xiàn)資料發(fā)現(xiàn)，我國(guó)針對(duì)這些著色劑分別制定了相應(yīng)的檢測(cè)方法標(biāo)準(zhǔn)[22?23]，并做了系列研究[24?25]。其中，分析檢測(cè)主要采用高效液相色譜法（HPLC）。然而這些標(biāo)準(zhǔn)和研究都以飼料或肉為基質(zhì)，而且基本都是只針對(duì)一到兩種著色劑進(jìn)行檢測(cè)，較少涉及復(fù)雜基質(zhì)中多種色素的同時(shí)檢測(cè)。因此，本文基于HPLC法建立了同時(shí)測(cè)定雞蛋、雞肉等復(fù)雜基質(zhì)中5種類(lèi)胡蘿卜素色素的檢測(cè)方法。并通過(guò)方法學(xué)考察，實(shí)現(xiàn)方法的標(biāo)準(zhǔn)化，為相關(guān)產(chǎn)品的質(zhì)量控制奠定基礎(chǔ)。

1 材料與方法

1.1 材料與儀器

雞蛋、雞肉 采購(gòu)于北京當(dāng)?shù)爻校瑢㈦u蛋、雞肉樣品凍干后研磨成粉末，保存于?18 ℃冰箱；蝦青素（Astaxanthin）、葉黃素（Xanthin）、斑蝥黃（Canthaxanthin）、玉米黃素（Zeaxanthine）、β-胡蘿卜素（β-carotene）標(biāo)準(zhǔn)品 保存在4 ℃冰箱，美國(guó)Cerilliant公司；乙腈、二氯甲烷、甲醇（色譜純） 德國(guó)默克公司（中國(guó)）。

iChrom5100分析型 國(guó)產(chǎn)液相色譜儀（配DAD檢測(cè)器）、Supersil-ODS2色譜柱（4.6 mm×250 mm，5 μm） 大連依利特分析儀器有限公司；Thmorgan-VM200型渦旋振蕩器 托摩根生物科技有限公司；HITACHI-CF15RXII離心機(jī) 日立公司；Sartorius分析天平 賽多利斯科學(xué)儀器（北京）有限公司；ELGA純水儀 北京誠(chéng)驛恒儀科技有限公司。

1.2 實(shí)驗(yàn)方法

1.2.1 樣品前處理 分別準(zhǔn)確稱(chēng)取50.0 g（精確到0.001 g）雞蛋、雞肉樣品，用高速組織搗碎機(jī)充分搗碎、混勻，形成雞蛋、雞肉樣品粉末，裝入密封瓶保存。

分別采用兩種樣品提取凈化方法進(jìn)行了對(duì)比和優(yōu)化，其中方法1具體操作方法為：稱(chēng)取試樣約5.0 g（精確至0.001 g）于50 mL離心管中，加入30 mL乙腈提取劑及10 g無(wú)水硫酸鈉后，渦旋混合1 min，在35 ℃以下水浴超聲提取10 min，再以3000 r/min離心5 min。將上清液移入預(yù)置有20 mL正己烷的125 mL分液漏斗中，振搖0.5 min后，靜置分層；收集下層乙腈相，正己烷相留在分液漏斗，待本試樣后續(xù)脫脂重復(fù)使用。按上述步驟對(duì)離心管中的殘留物每次用20 mL乙腈提取劑再重復(fù)提取兩次，所得提取液用上述正己烷相依次脫脂。合并三次脫脂后所收集的乙腈相，加入5 mL正丙醇，于40 ℃以下旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)濃縮至近干，用乙腈溶解并定容至5.0 mL，0.20 μm濾膜過(guò)濾，濾液待測(cè)。測(cè)定操作應(yīng)避強(qiáng)光、連續(xù)進(jìn)行。

方法2為QuEChERS方法，分別準(zhǔn)確稱(chēng)取5.0 g（精確到0.001 g）雞蛋、雞肉樣品粉末于50 mL離心管，加入30 mL 60%二氯甲烷/乙腈溶液進(jìn)行提取，并加入10 g無(wú)水硫酸鈉，渦旋1 min，35 ℃水浴超聲10 min，離心3500 r/min 5 min，過(guò)0.22 μm濾膜，得基質(zhì)溶液。

1.2.2 溶液配制

1.2.2.1 標(biāo)準(zhǔn)儲(chǔ)備液 取蝦青素、葉黃素、玉米黃素、斑蝥黃、β-胡蘿卜素標(biāo)準(zhǔn)品各2 mg，分別溶于1 mL二氯甲烷中，分別制得2 mg/mL的五種類(lèi)胡蘿卜素標(biāo)準(zhǔn)品溶液。分別取500 μL各種類(lèi)胡蘿卜素標(biāo)準(zhǔn)品溶液入10 mL棕色容量瓶，并加入3.5 mL二氯甲烷，并用乙腈定容，得到10 mL 100 μg/mL的混合標(biāo)準(zhǔn)品（60%二氯甲烷/乙腈），4 ℃冰箱冷藏保存，有效期為6個(gè)月。

1.2.2.2 標(biāo)準(zhǔn)工作溶液 準(zhǔn)確吸取混合標(biāo)準(zhǔn)儲(chǔ)備液0.05、0.10、0.20、0.50、1.00、2.00、5.00 mL分別置于10 mL容量瓶中，用60%二氯甲烷/乙腈溶液定容，配制為質(zhì)量濃度為0.5、1.0、2.0、5.0、10.0、20.0、50.0 μg/mL的系列混合標(biāo)準(zhǔn)工作液，現(xiàn)用現(xiàn)配。

1.2.2.3 基質(zhì)標(biāo)準(zhǔn)儲(chǔ)備溶液 分別取2 mg/mL的蝦青素、葉黃素、斑蝥黃、β-胡蘿卜素、玉米黃素各500 μL入10 mL棕色容量瓶，以基質(zhì)溶液定容，得到總體積為10 mL100 μg/mL的基質(zhì)標(biāo)準(zhǔn)儲(chǔ)備溶液，4 ℃冰箱冷藏保存，有效期為6個(gè)月。

1.2.2.4 基質(zhì)標(biāo)準(zhǔn)工作溶液 準(zhǔn)確吸取混合標(biāo)準(zhǔn)儲(chǔ)備液0.05、0.10、0.20、0.50、1.00、2.00、5.00 mL分別置于10 mL容量瓶中，用基質(zhì)溶液定容，配制為質(zhì)量濃度為0.5、1.0、2.0、5.0、10.0、20.0、50.0 μg/mL的系列基質(zhì)標(biāo)準(zhǔn)工作溶液，現(xiàn)用現(xiàn)配。

1.2.3 液相色譜條件 色譜柱：Supersil-ODS2色譜柱（4.6 mm×250 mm，5 μm）。柱溫：30 ℃。進(jìn)樣量：10 μL。流速：1.0 mL/min。檢測(cè)波長(zhǎng)：470 nm。洗脫時(shí)間：20 min。流動(dòng)相分別采用流動(dòng)相A為乙腈，流動(dòng)相B為0.1%甲酸水溶液的體系1；流動(dòng)相A為乙腈，流動(dòng)相B為氯仿的體系2；流動(dòng)相A為乙腈，流動(dòng)相B為二氯甲烷的體系3這三個(gè)體系進(jìn)行優(yōu)化。最后選擇流動(dòng)相A為乙腈，流動(dòng)相B為二氯甲烷（使用前經(jīng)有機(jī)相濾膜抽濾，超聲脫氣）。梯度洗脫程序：0~13 min，3%B；13~17 min，3%~90%B；17~20 min，90%~3%B。

1.2.4 標(biāo)準(zhǔn)曲線繪制 將配制好的0.5、1、2.5、5、10、25、50 μg/mL混合標(biāo)準(zhǔn)工作溶液按“1.2.3”的液相色譜條件進(jìn)樣分析，分別以5種化合物的濃度為橫坐標(biāo)，峰面積響應(yīng)值為縱坐標(biāo)，繪制系列標(biāo)準(zhǔn)曲線，進(jìn)行線性回歸，得到5種類(lèi)胡蘿卜素的標(biāo)準(zhǔn)曲線線性回歸方程。

1.2.5 方法學(xué)考察

1.2.5.1 定量限、檢出限 將1.2.2.2的標(biāo)準(zhǔn)工作溶液按“1.2.3”的液相色譜條件測(cè)定，測(cè)得5種類(lèi)胡蘿卜素的峰面積，帶入相應(yīng)物質(zhì)的標(biāo)準(zhǔn)曲線回歸方程中。以最低水平標(biāo)準(zhǔn)溶液中目標(biāo)組分的3倍平均信噪比為檢出限（LOD），10倍平均信噪比為定量限（LOQ），計(jì)算得本方法的LOD和LOQ。

1.2.5.2 重復(fù)性實(shí)驗(yàn) 在相同的儀器條件下，精密稱(chēng)取0.5 g（精確到0.001 g）雞蛋或雞肉粉末樣品6份，分別加標(biāo)1.0 μg/mL的混合標(biāo)準(zhǔn)工作液0.5 mL，按“1.2.1” 項(xiàng)下方法操作，將處理好的6份待測(cè)液按“1.2.3”色譜條件進(jìn)樣分析，測(cè)得5種類(lèi)胡蘿卜素類(lèi)物質(zhì)的峰面積，代入標(biāo)準(zhǔn)曲線方程，計(jì)算測(cè)定濃度的標(biāo)準(zhǔn)偏差RSD。

1.2.5.3 加標(biāo)回收率 分別準(zhǔn)確稱(chēng)取5.0 g（精確到0.001 g）雞蛋、雞肉樣品粉末各12份于50 mL離心管，編號(hào)1~12，其中1~3號(hào)作為本底，4~6號(hào)加標(biāo)配成1 mg/kg待測(cè)液，7~9號(hào)加標(biāo)配成10 mg/kg待測(cè)液，10~12號(hào)加標(biāo)配成20 mg/kg待測(cè)液，加入30 mL 60%二氯甲烷/乙腈溶液，并加入10 g無(wú)水硫酸鈉，渦旋1 min，35 ℃水浴超聲10 min，離心3500 r/min 5 min，過(guò)0.22 μm濾膜，將處理好的待測(cè)液以及低、中、高3種濃度的加標(biāo)樣品經(jīng)HPLC分析，測(cè)得峰面積，計(jì)算回收率。

1.2.5.4 基質(zhì)效應(yīng) 本研究以“1.2.3”色譜條件對(duì)雞蛋、雞肉樣品不含基質(zhì)的標(biāo)準(zhǔn)工作溶液標(biāo)準(zhǔn)工作溶液和含基質(zhì)的標(biāo)準(zhǔn)工作溶液分別進(jìn)行分析，分別對(duì)比雞蛋、雞肉樣品不含基質(zhì)的標(biāo)準(zhǔn)工作溶液標(biāo)準(zhǔn)曲線（A1、A2）和含基質(zhì)的標(biāo)準(zhǔn)工作溶液標(biāo)準(zhǔn)曲線（B1、B2）的斜率。分別計(jì)算各目標(biāo)物的標(biāo)準(zhǔn)曲線方程的斜率比。

1.3 數(shù)據(jù)處理

本文標(biāo)準(zhǔn)曲線線性回歸方程及相關(guān)系數(shù)由依利特ichrom5100 workstation處理所得，其他數(shù)據(jù)采用Origin 8.5和Excel 2010軟件對(duì)數(shù)據(jù)進(jìn)行處理并作圖，實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)取3次平行實(shí)驗(yàn)的平均值。

2 結(jié)果與分析

2.1 前處理方法優(yōu)化

大多數(shù)類(lèi)胡蘿卜素可溶解于大部分有機(jī)溶劑中，不溶于水。這五種類(lèi)胡蘿卜素均具有較強(qiáng)的極性，在二氯甲烷中具有較好的溶解度[26]。文獻(xiàn)報(bào)道丙酮、乙腈、二氯甲烷/乙腈、甲醇/二氯甲烷等極性有機(jī)溶劑的提取效果均能滿足要求，但用乙腈提取對(duì)動(dòng)物性基體具有可減少脂肪進(jìn)入提取液的優(yōu)點(diǎn)[27]。故先采用乙腈提取，正己烷脫脂。但發(fā)現(xiàn)樣品中類(lèi)胡蘿卜素類(lèi)物質(zhì)有損失，回收率較低，所以選擇不用正己烷脫脂。又采用純二氯甲烷提取，發(fā)現(xiàn)雞蛋液漂浮在上方，不易分離以及過(guò)濾。因而選擇60%二氯甲烷/乙腈溶液進(jìn)行提取，回收率較好，具有較好的提取效果。兩種提取溶劑體系的提取結(jié)果如表1所示。同時(shí)加無(wú)水Na2SO4有助于吸收樣品中水分，改善提取效果[28]。

表1 2種不同溶劑提取結(jié)果對(duì)比Table 1 Comparison of extraction results of two different solvent

2.2 液相色譜條件優(yōu)化

本實(shí)驗(yàn)對(duì)比了乙腈-0.1%甲酸水溶液、乙腈-氯仿和乙腈-二氯甲烷三個(gè)流動(dòng)相體系下，對(duì)于5種類(lèi)胡蘿卜素的分離情況，結(jié)果如圖1所示。從圖1中可以看出，乙腈?0.1%甲酸水溶液體系下，由于樣品脂溶性較強(qiáng)，析出現(xiàn)象比較嚴(yán)重，有些物質(zhì)可能已經(jīng)析出，不利于樣品分離。乙腈-氯仿體系分離的各個(gè)組分出峰時(shí)間較長(zhǎng)，分析時(shí)間需要40 min左右，分析效率較差。而乙腈-二氯甲烷體系下分離的各個(gè)組分出峰較快，峰性尖銳，各物質(zhì)均得到了較好分離，結(jié)果如圖1所示，可見(jiàn)在最佳條件下5種類(lèi)胡蘿卜素的分離度良好，在20 min內(nèi)可完成5種色素的基線分離。故本實(shí)驗(yàn)選用乙腈-二氯甲烷作為本實(shí)驗(yàn)流動(dòng)相體系。

圖1 三種流動(dòng)相體系下5種類(lèi)胡蘿卜素的色譜分離圖Fig.1 Chromatogram of 5 carotenes under three mobile phase systems

2.3 標(biāo)準(zhǔn)曲線、定量限、檢出限

以該方法對(duì)5種類(lèi)胡蘿卜素混合標(biāo)準(zhǔn)工作溶液進(jìn)行測(cè)定，以最低水平標(biāo)準(zhǔn)溶液中目標(biāo)組分的3倍平均信噪比為檢出限（LOD），10倍平均信噪比為定量限（LOQ），計(jì)算得本方法的LOD和LOQ。其線性范圍、相關(guān)系數(shù)、LOD及LOQ如下表2所示。從表2可以看出，這5種類(lèi)胡蘿卜素在0.5~100 μg/mL線性范圍內(nèi)有較好的線性關(guān)系，決定系數(shù)R2均>0.996。經(jīng)計(jì)算，5種類(lèi)胡蘿卜素物質(zhì)的檢出限（LOD，S/N=3）均在0.10~0.20 mg/kg之間，定量限（LOQ，S/N=10）均在0.33~0.66 mg/kg之間。

表2 5種類(lèi)胡蘿卜素物質(zhì)的線性范圍、LOD和LOQ Table 2 Linear range, LOD and LOQ of 5 carotenes

2.4 重復(fù)性試驗(yàn)

本文對(duì)該HPLC方法的重復(fù)性進(jìn)行了考察，在相同的儀器條件下，按照1.2.5.2實(shí)驗(yàn)步驟，分別測(cè)得平行6組雞肉和雞蛋中蝦青素、葉黃素、斑蝥黃、β-胡蘿卜素、玉米黃素五種物質(zhì)的濃度及RSD如下表3所示。6次重復(fù)試驗(yàn)的濃度RSD均小于5%，說(shuō)明方法的重復(fù)性較好。

表3 方法的重復(fù)性試驗(yàn)結(jié)果（n=6）Table 3 Repeatability test results of this method(n=6)

2.5 方法的回收率

為了驗(yàn)證方法的可靠性，本文對(duì)雞蛋、雞肉樣品進(jìn)行加標(biāo)回收實(shí)驗(yàn)，加標(biāo)水平均為1、10、20 mg/kg的混合標(biāo)準(zhǔn)品，每個(gè)加標(biāo)水平做6次平行實(shí)驗(yàn)，經(jīng)處理后上機(jī)分析。方法回收率和精密度列于表4中。對(duì)于雞蛋樣品的加標(biāo)回收試驗(yàn)來(lái)說(shuō)，在3個(gè)加標(biāo)水平下，5種類(lèi)胡蘿卜素的平均回收率在71.6%~112.9%之間，RSD≤6.9%；對(duì)于雞肉樣品的加標(biāo)回收實(shí)驗(yàn)來(lái)說(shuō)，在3個(gè)加標(biāo)水平下，5種類(lèi)胡蘿卜素的平均回收率在88.6%~119.7%之間，RSD≤7.2%。該結(jié)果表明，本研究建立的檢測(cè)方法在不同加標(biāo)水平下，具有較高的回收率和良好的精密度，能夠滿足多種雞蛋、雞肉樣品中5種類(lèi)胡蘿卜素類(lèi)物質(zhì)檢測(cè)的要求。

表4 雞蛋、雞肉樣品的加標(biāo)回收試驗(yàn)結(jié)果Table 4 Recoveries of 5 carotenes in egg and chicken samples

2.6 基質(zhì)效應(yīng)

基質(zhì)效應(yīng)的存在使得在實(shí)際的痕量物質(zhì)檢測(cè)過(guò)程中，當(dāng)使用純?nèi)軇?biāo)準(zhǔn)曲線進(jìn)行校準(zhǔn)時(shí)，常常會(huì)引起分析結(jié)果的偏差和對(duì)樣品制備過(guò)程回收率的錯(cuò)誤估算[29]。對(duì)基質(zhì)效應(yīng)不明顯的樣品，其基質(zhì)標(biāo)準(zhǔn)曲線和溶劑標(biāo)準(zhǔn)曲線基本重合。基質(zhì)效應(yīng)為基質(zhì)匹配校準(zhǔn)曲線的斜率與溶劑標(biāo)準(zhǔn)校準(zhǔn)曲線的斜率兩者之比，比值越接近1，則基質(zhì)效應(yīng)越小[30?31]。本研究通過(guò)分別對(duì)比雞蛋、雞肉樣品不含基質(zhì)的標(biāo)準(zhǔn)工作溶液標(biāo)準(zhǔn)曲線（A）和含基質(zhì)的標(biāo)準(zhǔn)工作溶液標(biāo)準(zhǔn)曲線（B）的斜率，以表征5種色素的基質(zhì)效應(yīng)，結(jié)果見(jiàn)表5。結(jié)果表明，雞蛋樣品中，蝦青素、葉黃素、玉米黃素和斑蝥黃的基質(zhì)效應(yīng)不明顯，β-胡蘿卜素存在一定的基質(zhì)增強(qiáng)效應(yīng)；雞肉樣品中，葉黃素和玉米黃素的基質(zhì)效應(yīng)不明顯，蝦青素、斑蝥黃和β-胡蘿卜素存在明顯的基質(zhì)減弱效應(yīng)，綜上所述，雞蛋、雞肉樣品均需要基于基質(zhì)溶液進(jìn)行實(shí)驗(yàn)。所以后續(xù)實(shí)驗(yàn)均基于基質(zhì)溶液進(jìn)行。

表5 雞蛋、雞肉樣品的基質(zhì)效應(yīng)Table 5 Matrix effect of egg and chicken samples

2.7 實(shí)際樣品測(cè)定

以本方法的提取工藝和色譜條件對(duì)市售的雞蛋和雞肉樣品中的五種類(lèi)胡蘿卜素類(lèi)物質(zhì)進(jìn)行了分離分析，各物質(zhì)含量的計(jì)算結(jié)果如表6所示。實(shí)際樣品分析結(jié)果表明，雞蛋和雞肉中均有五種類(lèi)胡蘿卜素類(lèi)物質(zhì)檢出，但是含量都較少，其中有部分雞蛋和雞肉樣品檢出斑蝥黃，可能存在一定斑蝥黃添加劑飼喂的現(xiàn)象，但是檢出量較低，未超過(guò)標(biāo)準(zhǔn)規(guī)定的限值。說(shuō)明我國(guó)在相關(guān)飼料添加劑的使用方面管控較嚴(yán)。

表6 不同雞蛋雞肉樣品中5種類(lèi)胡蘿卜素含量Table 6 Contents of 5 carotenes in egg and chicken samples

3 結(jié)論

本文借鑒了QuEChERS凈化方法，基于雞蛋、雞肉和五種類(lèi)胡蘿卜素類(lèi)物質(zhì)的特性，對(duì)基質(zhì)的提取凈化方法以及目標(biāo)物的檢測(cè)方法進(jìn)行了優(yōu)化，建立了雞蛋、雞肉中五種類(lèi)胡蘿卜素的HPLC檢測(cè)方法，使一次性同時(shí)檢測(cè)復(fù)雜基質(zhì)中5種主要類(lèi)胡蘿卜素的含量成為可能。該方法對(duì)5種類(lèi)胡蘿卜素在0.5~100 μg/mL線性范圍內(nèi)有較好的線性關(guān)系，決定系數(shù)R2均大于0.996，方法的檢出限均在0.10~0.20 mg/kg之間，定量限在0.33~0.66 mg/kg之間。在1、10、20 mg/kg的加標(biāo)水平下，雞蛋和雞肉樣品的加標(biāo)回收率分別在71.6%~112.9%和88.6%~119.7%之間，RSD≤7.2%。該方法具有定量準(zhǔn)確、操作簡(jiǎn)便、省時(shí)省力的優(yōu)點(diǎn)，可用于色素飼喂的土雞蛋、雞肉的真?zhèn)舞b別，降低檢測(cè)機(jī)構(gòu)和企業(yè)的檢測(cè)成本，促進(jìn)市場(chǎng)監(jiān)管的便利化。