陳 薔,達列亞·阿合買提,張崇威,司慧民,張 磊,宋志超*
(1.河南省獸藥飼料監察所,鄭州 450008;2.新疆獸藥飼料監察所,烏魯木齊 830063)
氟喹諾酮類藥物(Fluoroquinolones)是一類人工合成的廣譜殺菌性抗菌藥物,因其具有廣譜、高效、低毒以及與其它抗菌藥物無交叉耐藥性等特點,已廣泛應用于獸醫臨床。但人們若長期使用含較低濃度氟喹諾酮類藥物的動物食品后,易誘導耐藥性的產生[1-2]。目前,雞蛋中氟喹諾酮類藥物殘留的檢測方法有液質聯用法[3-5]、液相色譜法[6-8]、酶聯免疫法[9]等,其中一些是現行的檢測標準[5-7]。在日常檢測中,采用國內農業部781號公告-6-2006和NY 5039-2005的方法對雞蛋中4種氟喹諾酮類藥物檢測時發現回收率較低且平行性較差。本實驗結合幾種常見的氟喹諾酮類藥物檢測標準,優化了樣品提取凈化條件,建立了雞蛋中環丙沙星、達氟沙星、恩諾沙星和沙拉沙星4種氟喹諾酮類藥物多殘留的液相色譜-熒光檢測器分析方法。本方法檢測結果靈敏度高、準確度好,適用雞蛋中氟喹諾酮類藥物殘留的分析檢測。
1.1 儀器和材料 高效液相色譜儀Waters2695(配熒光檢測器2475),美國Waters公司;分析天平(感量0.00001 g),METTLE TOLEDO XP205;天平(感量0.01 g),ALC-1100;渦旋混合器,IKA MS2;振蕩器,江蘇金壇市正基儀器有限公司HZ-82;離心機, Sigma公司3-30 K;C18固相萃取柱,美國Agilent公司,規格100 mg,3 mL。
1.2 試劑 乙腈、甲醇均為色譜純;氫氧化鈉、磷酸、三乙胺、磷酸二氫鉀、正己烷為分析純; 實驗用水為高純水;鹽酸環丙沙星、甲磺酸達氟沙星、恩諾沙星、沙拉沙星對照品(中國獸醫藥品監察所,純度≥99%)。
1.3 試劑的配制 5.0 mol/L氫氧化鈉溶液, 取氫氧化鈉20 g或飽和溶液28 mL,加水稀釋至100 mL;0.03 mol/L氫氧化鈉溶液,取5.0 mol/L氫氧化鈉溶液0.6 mL,加水稀釋至100 mL;磷酸鹽緩沖液,取磷酸二氫鉀6.8 g,加水使溶解并稀釋至500 mL(pH≈4.4),用5.0 mol/L氫氧化鈉溶液調節pH值至7.0;0.05 mol/L磷酸/三乙胺溶液,取85%磷酸3.4 mL,用水稀釋至1000 mL(pH≈1.7),用三乙胺調節pH值至2.4)。
1.4 試驗方法
1.4.1 色譜條件 色譜柱:XBridgeTMC18(5 μm,4.6×150 mm);柱溫:30 ℃;流動相:0.05 mol/L磷酸溶液/三乙胺-乙腈(87+13);流速:1.0 mL/min;進樣量:20 μL;檢測波長:激發波長280 nm;發射波長450 nm。
1.4.2 標準曲線繪制 分別稱取4種氟喹諾酮類藥物對照品,用0.03 mol/L氫氧化鈉溶液配制成濃度分別為1 mg/mL(環丙沙星、恩諾沙星、沙拉沙星)和0.2 mg/mL(達氟沙星)的標準貯備液; 用流動相稀釋成濃度分別為2、5、10、20、50、100、200 ng/mL(環丙沙星、恩諾沙星、沙拉沙星)和0.4、1、2、4、10、40 ng/mL(達氟沙星)的系列標準工作液。
1.4.3 樣品前處理 雞蛋去殼,混合均勻。-20 ℃以下貯存備用。稱取新鮮或解凍的試料2±0.02 g置50 mL離心管中,加入磷酸鹽緩沖液10 mL,渦旋混合,中速振蕩10 min,10000 r/min離心10 min,轉移上清液于25 mL容量瓶中。用磷酸鹽緩沖液10 mL重復提取一次。合并兩次上清液,定容,混勻,轉移到50 mL離心管中。加入正己烷10 mL,渦旋混合,中速振蕩5 min。10000 r/min離心10 min,吸取下層清液備用。C18固相萃取柱依次用甲醇2 mL,磷酸鹽緩沖液2 mL預洗。取上述備用液10.0 mL以1 mL/min的速度過柱。用水2 mL洗柱,擠干。用洗脫液2.0 mL以1 mL/min的速度將樣品洗脫入10 mL離心管中,擠干,渦旋混合,過0.22 μm微孔濾膜,供高效液相色譜-熒光檢測器測定。
1.4.4 樣品回收率與精密度 取空白樣品,分別添加5、10、20、50 μg/kg(環丙沙星、恩諾沙星、沙拉沙星)和1、2、4、10 μg/kg(達氟沙星)4個濃度,按1.4.3項進行測定。每個濃度分別測定6次,連續測定4 d,計算回收率及批內批間相對標準偏差。
1.4.5 檢測限 取20個空白樣品進行適當濃度的添加,按上述步驟操作,測得噪音信號的平均值,按信噪比≥3為檢測限。
2.1 色譜分離與測定 圖1 為混合標準溶液色譜圖,4種氟喹諾酮類藥物的保留時間依次為環丙沙星5.5 min、達氟沙星6.6 min、恩諾沙星7.7 min、沙拉沙星12.1 min。圖2、圖3分別為雞蛋空白樣品、空白添加樣品的色譜圖。

圖1 2 ng/mL標準溶液中氟喹諾酮類藥物色譜圖Fig 1 Chromatogram of standard solution of fluoroquinolones

圖2 空白雞蛋中氟喹諾酮類藥物色譜圖Fig 2 Chromatogram of fluoroquinolones in blank egg

圖3 5 μg/kg空白雞蛋添加試樣中氟喹諾酮類藥物色譜圖Fig 3 Chromatogram of fluoroquinolones with 5 μg/kg added to blank egg
2.2 標準曲線 在選定的色譜條件下,配制系列標準工作液(1.4.3項)進行色譜分析,4種氟喹諾酮類藥物的回歸方程及相關系數見表1,標準曲線見圖4。

表1 4種氟喹諾酮類藥物測定的工作曲線Tab 1 Standard curves of 4 fluoroquinolones

圖4 4種氟喹諾酮類藥物標準曲線Fig 4 Standard curves of 4 fluoroquinolones
2.3 回收率與精密度 用空白雞蛋添加后進行方法回收率試驗,結果見表2。由表2可見4種氟喹諾酮類藥物均具有良好的回收率和重現性。

表2 雞蛋中氟喹諾酮類藥物殘留回收率試驗及批內批間相對標準偏差Tab 2 Recoveries of fluoroquinolone Remained in Eggs and the Intra-batch and Inter-batch RSDs

化合物Compound添加濃度Add concentration/(μg·kg-1)測定次數Number of determinations平均回收率/%Average recovery批內相對標準偏差Intra-assay coefficientof variation/%(n=6)批間相對標準偏差Inter-assay coefficient ofvariation/%(n=4)恩諾沙星Enrofloxacin5102050123412341234123492.090.194.484.992.893.394.392.091.691.694.590.988.488.493.986.02.35.54.54.62.63.53.51.91.21.62.34.11.12.82.83.54.51.01.73.8沙拉沙星Sarafloxacin5102050123412341234123494.092.395.285.196.095.895.589.196.996.797.793.494.092.894.089.33.95.73.64.82.71.83.74.61.41.41.52.42.62.13.83.25.03.52.02.4
2.4 檢測限 本方法的檢測限為環丙沙星、恩諾沙星、沙拉沙星5 μg/kg,達氟沙星1 μg/kg。
3.1 提取條件的選擇 目前,雞蛋中氟喹諾酮類藥物的提取液有乙腈[3]、甲酸乙腈溶液[8]、EDTA-Mcllvaine緩沖溶液[5]、磷酸鹽緩沖溶液[6-7]等。采用乙腈或酸化乙腈提取均需要增加濃縮步驟,較為繁瑣,而EDTA-Mcllvaine緩沖溶液的配制也較為復雜,故本實驗借鑒文獻[6-7]的提取方法,采用磷酸鹽緩沖溶液(pH 7.0)對雞蛋中氟喹諾酮類藥物進行提取。本實驗對振蕩時間、提取次數進行了考察,結果發現,樣品提取的振蕩時間大于10 min,4種氟喹諾酮類藥物的回收率無明顯變化。用磷酸鹽緩沖溶液(pH 7.0)提取2次比提取1次回收率提高9.8% ~15.6%,提取3次后,回收率無明顯增加。此外,由于雞蛋中含有大量水分,提取時與提取液混合在一起,用加入的提取液體積來計算結果會引起較大偏差,所以本實驗采用用磷酸鹽緩沖溶液(pH 7.0)提取2次,合并后定容的方法準確定量提取液體積。
3.2 脫脂條件的選擇 由于雞蛋中含有大量的脂肪、蛋白質及氨基酸等組分,樣品的提取液呈渾濁狀,高速離心無法使其澄清。所以,在固相萃取前應先進行脫脂。本實驗考察了不同體積、不同次數的正己烷脫脂效果,結果發現,用10 mL正己烷脫脂1次即能達到脫脂效果。需要注意的是,加入正己烷振蕩離心后正己烷和提取液會產生乳化,形成凝絮狀物質,低速離心往往使正己烷、乳化層、提取液層分層不明晰,采用高速(10000 r/min)離心10 min可改善分層現象。然而,用吸管不易吸取凝絮狀物質,所以,可用吸管小心吸取下層清液備用。
3.3 固相萃取條件的選擇 本實驗采用3 mL C18固相萃取柱凈化,比1 mL C18固相萃取柱能有效減少堵塞現象發生。首先用2 mL甲醇活化柱子,盡可能除去填料中存在的雜質,使填料溶劑化,提高固相萃取的重現性。再用2 mL磷酸鹽緩沖溶液平衡,為上樣創造一致的溶劑環境。本實驗比較了5、10、15、20 mL4種上樣體積的回收率,結果發現,5 mL和10 mL上樣量的回收率無明顯差異,但對于的低殘留樣品,采用5 mL上樣凈化時最終上機測試溶液的濃度較低,靈敏度不能滿足需要;而當上樣體積增加到15 mL以上后會出現不同程度的過柱緩慢甚至堵塞現象,回收率有所降低。所以,最終選擇取備用液10 mL進行凈化。之后用2 mL水淋洗固相萃取柱,除去其中的干擾物。淋洗完后,擠干固相萃取柱,盡可能除去柱中的殘留液體,再用2 mL 0.05 mol/L磷酸溶液/三乙胺(pH 2.4)-乙腈(82+18)即可完全洗脫。本實驗比較了不同體積、不同洗脫液組成比例的洗脫效果,結果發現,1 mL 0.05 mol/L磷酸溶液/三乙胺(pH 2.4)-乙腈(82+18)洗脫不完全,若增大乙腈比例,雖然可以提高洗脫效率但會引起色譜峰展寬。
3.4 方法比較 在空白雞蛋中添加環丙沙星、恩諾沙星、沙拉沙星20 μg/kg和達氟沙星4 μg/kg,采用該方法與常用標準進行比較,實驗結果見表3。

表3 不同方法測定雞蛋中氟喹諾酮類藥物殘留的比較Tab 3 Comparison of Different Methods for Testing of Fluoroquinolone Drugs Residues in Eggs
結果顯示:采用農業部781號公告-6-2006的檢測方法平均回收率低,原因在于合并提取液后脫脂時正己烷和提取液形成凝絮狀沉淀,除去沉淀后損失部分提取液,致使凈化液體積減少。按照公式A·Cs·V/As/m計算,凈化液與提取液體積不相等,樣品最終的稀釋體積產生偏差。而且,對于不同的樣品,視其脂肪等雜質含量的高低,形成的凝絮狀沉淀量不同,損失的提取液體積也不盡相同,其回收率的相對標準偏差也較大。
采用NY 5039-2005附錄A的方法回收率較低的主要原因是2次提取合并后雞蛋中本身的水分進入提取液,影響提取液的體積,且不同的樣品水分有所差別,致使提取液體積無法準確計量,按照公式A·Cs·V提取·V洗脫/As/m/V凈化計算,樣品提取液體積V1應為20 mL,實際值一般有24 mL左右,所以按加入的提取液體積計算的回收率結果會較低,且對于水分不同的樣品,它們之間的回收率的相對標準偏差也較大。
采用本實驗方法,平均回收率和相對標準偏差均滿意,提取后定容可以視為提取液體積為25 mL,脫脂后雖然提取液有損失,但取部分脫脂后的提取液凈化,其提取液、凈化液和定容液的體積均準確,按照公式A·Cs·V提取·V洗脫/As/m/V凈化計算,結果準確,回收率穩定,相對標準偏差小。將稱樣量增大至5 g時,平均回收率和相對標準偏差也均較滿意,但由于增加樣品的稱樣量,其脂肪等雜質的含量也相應提高,一般需要進行2次脫脂,增加了實驗步驟,故舍去該方法。
本研究通過優化前處理方法,建立起了液相色譜-熒光法同時檢測雞蛋中4種氟喹諾酮類藥物的方法,該方法線性范圍寬,靈敏度高,重復性好,可滿足日常樣品的檢測需求,完全適合雞蛋中氟喹諾酮類藥物殘留的檢測。