基于miR-370-3p與JAK2/STAT3通路相關(guān)性探討活血榮絡(luò)方促缺血性腦卒中后血管新生的機制

龔翠蘭，楊仁義，周德生，凌 佳，傅馨瑩，李俊熙

(1.湖南中醫(yī)藥大學(xué)，湖南 長沙 410208；2.湖南中醫(yī)藥大學(xué)附屬常德醫(yī)院，湖南 常德 415000；3.湖南中醫(yī)藥大學(xué)第一附屬醫(yī)院，湖南 長沙 410007；4湖南省中藥粉體與創(chuàng)新藥物省部共建國家重點實驗室培育基地，湖南 長沙 410208)

缺血性腦卒中又稱“腦梗死”，是臨床常見腦血管病，占急性腦血管病的70%左右，具有高發(fā)病率、高致殘率、高死亡率的特點，給社會帶來了嚴(yán)重的經(jīng)濟(jì)負(fù)擔(dān)[1]。缺血性腦卒中后機體啟動內(nèi)源性血管新生保護(hù)機制，改善缺血區(qū)側(cè)支循環(huán)和腦微循環(huán)，增加局部腦缺血區(qū)血流灌注，促進(jìn)機體神經(jīng)功能恢復(fù)。

前期研究提出，“榮氣虛滯”是缺血性腦卒中的關(guān)鍵病機，榮氣氣化的“精化氣-氣生變-變成形”過程是缺血性腦卒中后血管新生的中醫(yī)理論基礎(chǔ)[2]，在活血榮絡(luò)法指導(dǎo)下創(chuàng)立活血榮絡(luò)方，納入湖南中醫(yī)藥大學(xué)第一附屬醫(yī)院臨床路徑13年，具有滋陰養(yǎng)血、活血通絡(luò)的功效，臨床治療缺血性腦卒中陰虛血瘀證頗有療效[3]。同時，實驗研究發(fā)現(xiàn)活血榮絡(luò)方能增加腦缺血區(qū)微血管密度，促進(jìn)血管新生，改善缺血性腦卒中后神經(jīng)功能缺損癥狀[4]。因此，為進(jìn)一步研究活血榮絡(luò)方改善腦循環(huán)血管新生的作用機制，本研究以miR-370-3p介導(dǎo)JAK2/STAT3通路調(diào)控血管新生的機制為切入點，探討活血榮絡(luò)方治療缺血性腦卒中的保護(hù)作用。

1 材料

1.1 動物10～12周SPF級雄性SD大鼠60只，體質(zhì)量為(250～280)g，購自湖南斯萊克景達(dá)實驗動物有限公司，動物許可證號：SCXK(湘)2019-0004，飼養(yǎng)于湖南中醫(yī)藥大學(xué)第一附屬醫(yī)院實驗動物中心，實驗許可證號：SYXK(湘)2015-0003，自由飲食，溫度(25±2)℃，濕度45%～60%，晝夜均勻交替。適應(yīng)性喂養(yǎng)7 d后進(jìn)行實驗，動物實驗經(jīng)湖南中醫(yī)藥大學(xué)第一附屬醫(yī)院倫理委員會批準(zhǔn)(倫理批準(zhǔn)號：20201010-8)。

1.2 藥物與試劑

1.2.1藥物 活血榮絡(luò)方(湘藥制字20080472)：雞血藤30 g、石楠藤30 g、生地黃15 g、黃精15 g、玄參10 g、川芎10 g、乳香10 g、沒藥10 g。各藥混合于置圓底燒瓶中，加10倍量水浸泡12 h后用冷凝回流裝置加熱回流2 h，提取第一次液過濾，殘渣加8倍量水，繼續(xù)冷凝回流1 h，提取第二次液過濾，合并兩次過濾液于旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀上進(jìn)行濃縮，即得活血榮絡(luò)方浸膏，無菌玻璃瓶分裝，4 ℃貯存?zhèn)溆谩６”教浤z囊(中國石藥集團(tuán)恩必普藥業(yè)有限公司，批號：H20050299)。STAT3抑制劑Stattic(美國Selleck公司，批號：S7024)。

1.2.2主要試劑 MACO大鼠栓線(北京西濃，批號2636A4、2638A4)。EDTA(PH8.0)抗原修復(fù)液、自發(fā)熒光淬滅劑(中國Servicebio，批號分別為：G1206、G1221-2)；CD31、vWF熒光一抗(中國Servicebio，批號分別為：GB12063、GB11020)；VEGF熒光一抗(武漢三鷹，批號：19003-1-ap)；熒光二抗：488山羊抗兔、CY3-山羊抗小鼠、CY3熒光TSA(中國Servicebio，批號分別為GB25303、GB21301、G1223)；DAPI(中國Servicebio，批號：G1012)。SDS-PAGE凝膠配置試劑盒(中國康為世紀(jì)生物，批號：CW0022S)；Immobilon Western HRP底物(美國Millipore，批號：WBKLS0100)；JAK2、p-JAK2、STAT3、p-STAT3抗體(英國Abcam，批號分別為ab108596、ab32101、ab68153、ab76315)；β-Actin(美國Proteintech，批號：20536-1-AP)；Goat Anti-Rabbit IgG H&L(HRP)(英國Abcam，批號：ab150120)。RNA提取試劑盒，RT First Strand cDNA Synthesis Kit，2×SYBR Green qPCR Master Mix (中國Servicebio，批號分別為G3013、G3330、G3322)；HyPure TMMolecular Biology Grade Water(美國HyClone，批號SH30538.02)。

1.3 主要儀器石蠟切片機(美國Thermo Scientific)；顯微成像系統(tǒng)(中國Motic)；Mini-Protean Tetra小型垂直電泳槽、Mini Trans-Blot型轉(zhuǎn)印槽、PowerPac Basic基礎(chǔ)電泳儀、Gel Doc XR+凝膠成像系統(tǒng)、熒光定量PCR儀(美國Bio-Rad公司)；臺式高速冷凍型微量離心機(中國DragonLab)；超微量分光光度計(美國Thermo Scientific)；多功能酶標(biāo)儀(美國Perkinelmer)；正置熒光顯微鏡(日本尼康)。

2 方法

2.1 大鼠腦缺血/再灌注模型的制備大鼠適應(yīng)性喂養(yǎng)7 d后，10%水合氯醛(0.35 g·kg-1)腹腔注射麻醉大鼠，麻醉滿意后，參考Longa等[5]報道的大腦中動脈阻塞法(middle cerebral artery occlusion，MCAO)，鈍性分離右側(cè)頸總動脈(CCA)、頸外動脈(ECA)和頸內(nèi)動脈(ICA)，從距ECA與ICA分叉部約4 mm處斜45°剪口進(jìn)拴線，插入拴線約18 mm梗阻右側(cè)大腦中動脈；梗阻2 h后拔出拴線進(jìn)行再灌注，以建立局灶性腦缺血/再灌注大鼠(middle cerebral artery occlusion reperfusion，MCAO/R)模型。

2.2 動物分組與給藥將60只SD大鼠隨機分成假手術(shù)組10只，造模組分別為模型組、活血榮絡(luò)方組、丁苯酞組、Stattic組、活血榮絡(luò)方+ Stattic組(聯(lián)用組)，每組各10只。假手術(shù)組分離CCA、ECA、ICA，不插入拴線，余操作與造模組相同，造模組予以MCAO/R法造模。實驗過程中出現(xiàn)死亡、取材時發(fā)現(xiàn)蛛網(wǎng)膜下腔出血或腦出血剔除，根據(jù)需要予以補充。

手術(shù)6 h后對大鼠進(jìn)行灌胃給藥，藥物劑量及時間參照前期實驗研究及藥物說明書。活血榮絡(luò)方組、聯(lián)合組予以活血榮絡(luò)方藥液(11.7 g·kg-1)，丁苯酞組予以丁苯酞混懸液(6 mg·kg-1)，假手術(shù)組、模型組、Stattic組予以等體積的生理鹽水，每日固定時間點灌胃給藥1次；Stattic組、聯(lián)合組予以Stattic工作液(3.75 mg·kg-1)，假手術(shù)組、模型組、活血榮絡(luò)方組、丁苯酞組予以等體積生理鹽水，每日固定時間點灌胃給藥1次，各組大鼠連續(xù)給藥7 d后，進(jìn)行指標(biāo)檢測。

2.3 神經(jīng)功能缺損評分評價神經(jīng)功能缺損程度各組大鼠分別于d 1、3、7按Zea-Longa′s評分法[5]進(jìn)行神經(jīng)功能缺損評分，標(biāo)準(zhǔn)如下：0 =無障礙；1=不能完全伸展對側(cè)前肢；2=向?qū)?cè)轉(zhuǎn)圈；3=向?qū)?cè)傾倒，站立不穩(wěn)；4=無自主活動、意識障礙、不能自發(fā)行走。分值越高提示神經(jīng)功能缺損越嚴(yán)重。

2.4 免疫熒光染色觀察腦組織皮質(zhì)區(qū)CD31、vWF、VEGF表達(dá)采用免疫熒光染色法檢測腦組織CD31、vWF、VEGF表達(dá)，以CD31與vWF雙染陽性細(xì)胞計算微血管密度，同時檢測VEGF表達(dá)，測定平均熒光強度。石蠟切片脫蠟至水后，置于EDTA抗原修復(fù)緩沖液中，放置于微波爐內(nèi)，中火8 min停火8 min轉(zhuǎn)中低火7 min，進(jìn)行抗原修復(fù)，自然冷卻后置于PBS中脫色。然后BSA孵育30 min封閉后，將切片與1 ∶200抗CD31、1 ∶200抗vWF和1 ∶3 000抗VEGF在4 ℃孵育過夜。PBS洗滌后，加與一抗相應(yīng)種屬的二抗，避光室溫孵育50 min，洗滌后加DAPI染液，避光室溫孵育10 min，洗滌后用抗熒光淬滅封片劑封片。熒光顯微鏡觀察并采集圖像，采用ImageJ隨機在鏡下取5個視野，對5個視野中CD31與vWF雙染陽性細(xì)胞計數(shù)，取5個視野均數(shù)，計算微血管密度；同時采用ImageJ測定腦組織中VEGF平均熒光強度。

2.5 Western blot法檢測腦組織JAK2、p-JAK2、STAT3、p-STAT3蛋白的表達(dá)采用Western blot法檢測腦組織中JAK2、p-JAK2、STAT3、p-STAT3蛋白的表達(dá)。取梗死側(cè)腦組織于冰上，加入裂解液(組織裂解液 ∶PMSF=100 ∶1)后，經(jīng)組織搗碎勻漿機充分研磨提取總蛋白。采用BCA法測定總蛋白濃度。蛋白上樣量為3 g·L-1，10 μL/孔。經(jīng)SDS-PAGE凝膠電泳，轉(zhuǎn)膜，JAK2、STAT3用5%脫脂牛奶室溫封閉1.5 h，p-JAK2、p-STAT3用5%BSA封閉1.5 h，一抗JAK2(1 ∶2 000)，p-JAK2(1 ∶2 000)，STAT3(1 ∶2 000)，p-STAT3(1 ∶2 000)4 ℃孵育過夜，洗膜3次，10 min/次，二抗(山羊抗兔，1 ∶10 000)37 ℃恒溫水浴搖床孵育60 min，再次洗膜后顯色成像。使用ImageJ分析圖像灰度值，以目的蛋白與β-actin灰度值的比值表示蛋白相對表達(dá)量。

2.6 Real-time PCR法檢測腦組織JAK2、STAT3 mRNA及miR-370-3p的表達(dá)采用Real-time PCR(RT-PCR)法檢測各組大鼠腦組織中JAK2、STAT3 mRNA與miR-370-3p的表達(dá)。取液氮凍存后的腦組織100 mg，用1 mL的TRIzol Reagent提取腦組織總RNA，使用Nanodrop 2000檢測RNA濃度及純度。采用RT First Strand cDNA Synthesis Kit逆轉(zhuǎn)錄試劑盒進(jìn)行逆轉(zhuǎn)錄，按照試劑盒說明書進(jìn)行擴增。反應(yīng)體系為：2×qPCR Mix 7.5 μL，2.5 μmol·L-1基因引物1.5 μL，反轉(zhuǎn)錄產(chǎn)物2.0 μL，ddH2O 4.0 μL。預(yù)變性95 ℃，10 min，循環(huán)(40次)95 ℃，15 s→60 ℃，60 s，熔解曲線60 ℃→95 ℃，每15 s升溫0.3 ℃。mRNA以GAPDH為內(nèi)參；miRNA以U6為內(nèi)參，相對表達(dá)量用2-ΔΔCt對進(jìn)行分析，引物序列見Tab 1。

Tab 1 PCR primer sequence

2.7 Pearson相關(guān)性分析腦組織miR-370-3p與JAK2/STAT3通路的相關(guān)性根據(jù)模型組、活血榮絡(luò)方組、丁苯酞組、Stattic組、聯(lián)用組大鼠的miR-370-3p與JAK2、STAT3 mRNA表達(dá)值，采用SPSS 23.0軟件進(jìn)行Pearson相關(guān)性分析，并通過R語言繪制miR-370-3p與JAK2、STAT3的相關(guān)系數(shù)圖。當(dāng)P<0.05時，則兩變量存在相關(guān)性；R>0時為正相關(guān)，R<0為負(fù)相關(guān)；0≤|R|<0.3為低度相關(guān)，0.3≤|R|<0.5為中度相關(guān)，0.5≤|R|<1為高度相關(guān)；|R|越大，相關(guān)性越大。

2.8 LncRNA-H19靶向miR-370-3p調(diào)節(jié)JAK2/STAT3信號通路培養(yǎng)大鼠腦血管平滑肌細(xì)胞，對照組正常培養(yǎng)，TNF-α組的細(xì)胞用100 μg·L-1TNF-α處理；將si-NC、si-H19、miR-NC、miR-370-3p mimics轉(zhuǎn)染至TNF-α誘導(dǎo)的大鼠腦血管平滑肌細(xì)胞，分別記為TNF-α+si-NC組、TNF-α+si-H19組、TNF-α+miR-NC組、TNF-α+miR-370-3p組；將si-H19和anti-miR-NC、si-H19和miR-370-3p共轉(zhuǎn)染至TNF-α誘導(dǎo)的大鼠腦血管平滑肌細(xì)胞，記為TNF-α+si-H19+anti-miR-NC組、TNF-α+si-H19+anti-miR-370-3p組。RT-qPCR檢測LncRNA-H19和miR-370-3p表達(dá)水平；熒光素酶報告實驗檢測LncRNA-H19和miR-370-3p的靶向關(guān)系。

3 結(jié)果

3.1 各組大鼠神經(jīng)功能缺損評分Zea-Longa′s評分越高，神經(jīng)功能缺損越嚴(yán)重，其結(jié)果顯示，與假手術(shù)組比較，1 d、3 d、7 d神經(jīng)功能缺損評分模型組明顯升高(P<0.01)。與模型組比較，活血榮絡(luò)方組與丁苯酞組1 d評分無明顯變化(P>0.05)，3 d評分降低(P<0.05)，7 d評分明顯下降(P<0.01)；Stattic組1 d、3 d、7 d評分均無明顯變化(P>0.05)；聯(lián)用組1 d、3 d評分無明顯變化(P>0.05)，7 d評分明顯降低(P<0.01)。與活血榮絡(luò)方組比較，丁苯酞組1 d、3 d、7 d評分均無明顯變化(P>0.05)；Stattic組1 d評分無明顯變化(P>0.05)，3 d、7 d評分明顯升高(P<0.01)；聯(lián)用組1 d、3 d評分均無明顯變化(P>0.05)，7 d評分升高(P<0.01)；與Stattic組比較，聯(lián)用組1 d評分無明顯變化(P>0.05)，3 d評分降低(P<0.05)，7 d評分明顯降低(P<0.01)，見Tab 2。

Tab 2 The neurological deficit score of rats

3.2 各組大鼠腦組織皮質(zhì)區(qū)CD31、vWF及VEGF表達(dá)大鼠腦組織免疫熒光結(jié)果顯示，以CD31和vWF共表達(dá)陽性細(xì)胞作為新生血管，計算MVD，結(jié)果顯示，與假手術(shù)組比較，模型組MVD明顯升高(P<0.01)。與模型組比較，活血榮絡(luò)方組、丁苯酞組、聯(lián)用組MVD明顯升高(P<0.01)，Stattic組降低(P<0.05)。與活血榮絡(luò)方組比較，丁苯酞組無明顯變化(P>0.05)，Stattic組與聯(lián)用組明顯降低(P<0.01)。與Stattic組比較，聯(lián)用組明顯升高(P<0.01)。VEGF免疫熒光平均熒光強度結(jié)果顯示，與假手術(shù)組比較，模型組明顯升高。與模型組比較，活血榮絡(luò)方組、丁苯酞組明顯升高(P<0.01)，Stattic組明顯降低(P<0.01)，聯(lián)用組無明顯變化(P>0.05)。與活血榮絡(luò)方組比較，丁苯酞組無明顯變化(P>0.05)，Stattic組明顯降低(P<0.01)，聯(lián)用組降低(P<0.05)。與Stattic組比較，聯(lián)用組明顯升高(P<0.01)。免疫熒光圖譜見Fig 1、Fig 2，MVD與VEGF平均熒光強度結(jié)果見Fig 3。

3.3 各組大鼠腦組織JAK2、p-JAK2、STAT3、p-STAT3蛋白的表達(dá)Western blot結(jié)果顯示，與假手術(shù)組比較，模型組JAK2、p-JAK2、STAT3、p-STAT3明顯升高(P<0.01)。與模型組比較，活血榮絡(luò)方組JAK2、p-JAK2、p-STAT3明顯升高(P<0.01)，STAT3升高(P<0.05)；丁苯酞組JAK2、p-JAK2、STAT3、p-STAT3明顯升高(P<0.01)；Stattic組p-JAK2、STAT3、p-STAT3明顯降低(P<0.01)，JAK2降低(P<0.05)；聯(lián)用組JAK2、p-JAK2、p-STAT3無明顯變化(P>0.05)，STAT3明顯降低(P<0.01)。與活血榮絡(luò)方組比較，丁苯酞組JAK2、p-JAK2、STAT3、p-STAT3無明顯變化(P>0.05)；Stattic組與聯(lián)用組JAK2、p-JAK2、STAT3、p-STAT3均明顯降低(P<0.01)。與Stattic組比較，聯(lián)用組p-JAK2、STAT3、p-STAT3明顯升高(P<0.01)，JAK2升高(P<0.05)，見Fig 4。

Fig 1 Double immunofluorescence staining of CD31 and vWF in brain tissue of rats in each groupA:Sham operation；B：Model；C:Huoxue rongluo prescription；D:Butylphthalide；E:Stattic；F:Combination

Fig 2 Immunofluorescence staining of VEGF in brain tissue of rats in each groupA:Sham operation；B:Model；C:Huoxue rongluo prescription；D:Butylphthalide；E:Stattic；F:Combination

Fig 3 Mean fluorescence intensity of MVD and VEGF in cerebral cortex of A:Sham operation；B:Model；C:Huoxue rongluo prescription；D:Butylphthalide；E:Stattic；F:Combination.**P<0.01 vs Sham operation；#P<0.05，##P<0.01 vs Model；&&P<0.01 vs Huoxue rongluo prescription;△△P<0.01 vs Stattic

3.4 各組大鼠腦組織JAK2、STAT3 mRNA及miR-370-3p的表達(dá)RT-PCR結(jié)果顯示，與假手術(shù)組比較，模型組JAK2、STAT3 mRNA及miR-370-3p均明顯升高。與模型組比較，活血榮絡(luò)方組、丁苯酞組JAK2、STAT3 mRNA均明顯升高(P<0.01)，miR-370-3p明顯降低(P<0.01)；Stattic組JAK2 mRNA、miR-370-3p無明顯變化(P>0.05)，STAT3 mRNA明顯降低(P<0.01)；聯(lián)用組JAK2 mRNA均明顯升高(P<0.01)，STAT3 mRNA與miR-370-3p明顯降低(P<0.01)。與活血榮絡(luò)方組比較，Stattic組JAK2、STAT3 mRNA明顯降低(P<0.01)，miR-370-3p明顯升高(P<0.01)；聯(lián)用組JAK2、STAT3 mRNA明顯降低(P<0.01)，miR-370-3p無明顯變化(P>0.05)。與Stattic組比較，聯(lián)用組JAK2、STAT3 mRNA明顯升高(P<0.01)，miR-370-3p明顯降低(P<0.01)，見Fig 5。

Fig 4 Relative expression values of JAK2，p-jak2，STAT3 and p-STAT3 proteins in brain tissue of rats in each groupA.Sham operation；B.Model；C.Huoxue rongluo prescription；D.Butylphthalide；E.Stattic；F.Combination.**P<0.01 vs Sham operation；##P<0.01，#P<0.05 vs Model；&P<0.05，&&P<0.01 vs Huoxue rongluo prescription；△△P<0.01，△P<0.05 vs Stattic

Fig 5 Expression of JAK2，STAT3 mRNA and mir-370-3p in brain tissue of rats in each groupA：Sham operation；B：Model；C：Huoxue rongluo prescription；D：Butylphthalide；E：Stattic；F：Combination.**P<0.01 vs Sham operation；##P<0.01 vs Model；&&P<0.01 vs Huoxue rongluo prescription；△△P<0.01 vs Stattic

3.5 大鼠腦組織miR-370-3p與JAK2、STAT3的相關(guān)性Pearson相關(guān)性分析結(jié)果顯示，miR-370-3p與JAK2、STAT3高度負(fù)相關(guān)，相關(guān)系數(shù)分別為-0.92、-0.53；JAK2與STAT3高度正相關(guān)，相關(guān)系數(shù)為0.64，見Fig 6。

Fig 6 Correlation coefficient of mir-370-3p with JAK2 and STAT3

3.6 LncRNA-H19和miR-370-3p在TNF-α誘導(dǎo)的大鼠腦血管平滑肌細(xì)胞中的表達(dá)與對照組比較，LncRNA-H19在TNF-α誘導(dǎo)的大鼠腦血管平滑肌細(xì)胞中的表達(dá)水平明顯升高，miR-370-3p在TNF-α誘導(dǎo)的大鼠腦血管平滑肌細(xì)胞中的表達(dá)水平明顯降低(P<0.05)，見Tab 3。

Tab 3 TNF-α of lncRNA-h19 and miR-370-3p expression level of brain vascular smooth muscle cells induced by TNF-α

3.7 LncRNA-H19和miR-370-3p的靶向調(diào)控關(guān)系雙熒光素酶報告實驗結(jié)果顯示，TNF-α+miR-370-3p組與TNF-α+miR-NC組比較，WT-H19熒光素酶活性差異具有明顯性(P<0.05)，MUT-H19熒光素酶活性差異無明顯性(P>0.05)，見Tab 4、Fig 7。

Fig 7 The targeted regulatory relationship between lncRNA-H19 and miR-370-3p

Tab 4 Double luciferase report

4 討論

缺血性腦卒中發(fā)生后，機體可啟動內(nèi)源性血管新生系統(tǒng)，改善腦側(cè)支循環(huán)，增加腦血流灌注，為局部缺血區(qū)供氧及營養(yǎng)物質(zhì)，以挽救腦組織缺血缺氧狀態(tài)，加快神經(jīng)功能恢復(fù)。

STAT/HIF-1α/VEGF通路是缺血性腦卒中后血管新生的關(guān)鍵通路，缺血性腦卒中發(fā)生后，IL-6、TNF等多種炎癥因子、細(xì)胞因子與細(xì)胞膜上受體結(jié)合后，通過磷酸化的方式激活JAK2/STAT3通路，在細(xì)胞核內(nèi)形成同源或異源STAT3二聚體，易位入核，促進(jìn)核內(nèi)HIF-1α轉(zhuǎn)錄，使得HIF-1α下游VEGF轉(zhuǎn)錄進(jìn)一步激活，介導(dǎo)下游PI3K-AKT通路、PLCγ1-PKC通路、MAPK通路[6]，促進(jìn)內(nèi)皮細(xì)胞(ECs)增殖、遷移、分化成管，調(diào)控Rho家族蛋白促進(jìn)血管偽足形成，在多種疾病血管新生中發(fā)揮重要作用[7]。miRNA能特異性識別下游目的基因mRNA 3′UTR，抑制下游基因表達(dá)，參與調(diào)控血管新生的進(jìn)程[8]。Stattic是非肽類STAT3 SH2結(jié)構(gòu)域抑制劑，能有效抑制STAT3激活和核易位，Xue等[9]研究發(fā)現(xiàn)，JAK2/STAT3通路抑制劑Stattic抑制ECs增殖，下調(diào)了VEGFA/B、VEGFR2的表達(dá)，抑制血管新生。

團(tuán)隊前期研究發(fā)現(xiàn)，“陰虛血瘀—榮氣虛滯”理論立方的活血榮絡(luò)方在缺血性腦卒中早期能調(diào)控JAK2/STAT3通路，降低IL-1β、TNF-α、MMP-9的表達(dá)，減輕腦缺血再灌注后炎癥損傷[10]；在缺血性腦卒中后期能促進(jìn)Caveolin-1蛋白表達(dá)，增加梗死區(qū)微血管密度，促進(jìn)腦梗死后血管新生；其有效成分可能通過 STAT3/miRNA 反饋環(huán)路激活 STAT/HIF-1/VEGF 信號通路促腦梗死后血管新生[11]，為中醫(yī)藥治療腦梗死疾病提出了深層次的分子機制及新的方向。前期檢索Targetscan數(shù)據(jù)庫發(fā)現(xiàn)，STAT3的轉(zhuǎn)錄后翻譯過程受10位上游miRNA的調(diào)控，根據(jù)預(yù)測分?jǐn)?shù)及權(quán)重分?jǐn)?shù)可知，排列前三位的是miR-370-3p、miR-290、miR-292-5p(預(yù)測分?jǐn)?shù)均達(dá)85)，因此推測缺血性腦卒中的發(fā)生機制可能與miR-370-3p調(diào)控JAK2/STAT3通路有關(guān)，且活血榮絡(luò)方可能參與此機制促進(jìn)缺血性腦卒中后期血管新生。

CD31與vWF是ECs的特異性標(biāo)志蛋白，大鼠腦組織免疫熒光染色后CD31、vWF和DAPI分別呈現(xiàn)紅色、綠色和藍(lán)色，CD31與vWF共表達(dá)的陽性細(xì)胞作為新生血管，計算微血管密度，結(jié)果顯示活血榮絡(luò)方能明顯促進(jìn)缺血性腦卒中大鼠血管新生及腦組織中VEGF的表達(dá)，Stattic能明顯抑制缺血性腦卒中大鼠血管新生及腦組織中VEGF的表達(dá)。提示在大鼠缺血性腦卒中后，機體內(nèi)源性血管新生啟動，活血榮絡(luò)方可能有促進(jìn)作用，而Stattic作為特異性STAT3抑制劑，在一定程度上可能抑制了內(nèi)源性血管新生的啟動。

LncRNAH19為父系印記基因，位于人類染色體11p15.5的端粒區(qū)域附近的H19/IGF2基因簇上，該區(qū)域常涉及兒童和成人腫瘤。研究發(fā)現(xiàn)，lncRNA H19可作為ceRNA競爭結(jié)合DUSP5，并解除DUSP5對其靶基因Erk1/2的抑制，即通過lncRNA H19/DUSP5/Erk1/2調(diào)控軸激活自噬過程從而誘導(dǎo)腦IRI[12]；miR-370-3p是一個腫瘤相關(guān)miRNA,可調(diào)控細(xì)胞增殖、凋亡及侵襲等生理過程，抑制腦膠質(zhì)瘤、膀胱癌細(xì)胞的侵襲。Cui等[13]研究表明，miR-370-3p參與下丘腦的慢性電針耐受過程，過表達(dá)miR-370-3p可降低電針耐受，提示miR-370-3p可能具有神經(jīng)生理調(diào)節(jié)能力,可能作為一種靶點干預(yù)抑郁癥。另外，經(jīng)過TargetScan3.1軟件預(yù)測miR-370-3p可能與lncRNA H19存在靶向關(guān)系,雙熒光素酶報告驗證lncRNA H19是miR-370-3p靶向調(diào)控分子。

Western blot、RT-PCR及Pearson相關(guān)性分析結(jié)果顯示JAK2與STAT3呈高度正相關(guān)，二者與miR-370-3p呈高度負(fù)相關(guān)；活血榮絡(luò)方能上調(diào)JAK2、STAT3 mRNA表達(dá)，也能促進(jìn)JAK2、p-JAK2、STAT3、p-STAT3蛋白表達(dá)；而Stattic能下調(diào)STAT3 mRNA表達(dá)，且能抑制JAK2、p-JAK2、STAT3、p-STAT3蛋白表達(dá)，提示活血榮絡(luò)方與丁苯酞能下調(diào)miR-370-3p的表達(dá)，激活JAK2/STAT3通路；Stattic在不影響miR-370-3p的表達(dá)的條件下，可能通過磷酸化途徑抑制JAK2/STAT3通路。Ruan等[14]研究發(fā)現(xiàn)，miR-370在MCAO大鼠腦組織中過表達(dá)，能靶向抑制SIRT6表達(dá)，激活Nrf2/ARE通路，加重神經(jīng)功能缺損。Zhang等[15]研究發(fā)現(xiàn)，激活STAT3能上調(diào)VEGF的表達(dá)，此過程能被Stattic逆轉(zhuǎn)，與Carbajo等[16]報道的Stattic阻斷HIF-1α/STAT3通路，抑制VEGF表達(dá)，抗血管新生的結(jié)果相互佐證。Li等[17]研究發(fā)現(xiàn)，丁苯酞能激活JAK2/STAT3通路，減輕海馬神經(jīng)元細(xì)胞凋亡，改善腦缺血損傷。

同時，TNF-α+si-H19組和TNF-α+si-H19+anti-miR-370-3p組p-JAK2、p-STAT3蛋白表達(dá)明顯升高。提示活血榮絡(luò)方可能下調(diào)miR-370-3p的表達(dá)及l(fā)ncRNA H19靶向激活JAK2/STAT3通路，從而促進(jìn)VEGF表達(dá)并刺激血管新生，改善大鼠缺血性腦卒中后神經(jīng)功能癥狀。

綜上所述，活血榮絡(luò)方治療缺血性腦卒中的機制可能與其下調(diào)miR-370-3p的表達(dá)，激活JAK2/STAT3通路，促進(jìn)下游VEGF的表達(dá)，刺激缺血性腦卒中后血管新生，改善神經(jīng)功能缺損癥狀有關(guān)，為進(jìn)一步中醫(yī)藥防治缺血性腦卒中提供了實驗基礎(chǔ)。