一氧化氮供體和阿霉素的共遞送系統用于逆轉腫瘤低氧耐藥研究

鄭云茹，陳紅，魏欣琪，褚克丹，徐偉，劉劍

(福建中醫藥大學藥學院，福建 福州 350122)

低氧作為一種重要的微環境因子，在腫瘤的發生和發展過程中起著重要的作用。與正常組織氧壓(40～60 mmHg)(1 mmHg=0.133 322 kPa)相比，大多數實體瘤組織的氧中位數較低，約為10 mmHg[1-2]。腫瘤部位的低氧微環境不僅促進了腫瘤的生長與轉移，而且大大降低抗腫瘤藥物的治療效果，其原因是：①藥物不太可能以毒性濃度輸送到低氧區；②低氧有助于p53抑癌蛋白的丟失，導致細胞自身凋亡能力的喪失；③低氧細胞可以下調DNA拓撲異構酶Ⅱ的表達，因此，阿霉素和依托泊苷等針對該蛋白或DNA的藥物將是無效的；④低氧通過上調缺氧流導因子-1α(HIF-1α)，調控與細胞增殖、藥物外排、細胞凋亡、代謝和血管生成等有關蛋白的表達或基因的合成而引起化療抗性，包括編碼藥物外流泵P-糖蛋白的多重耐藥基因[3-7]。因此，低氧也常被認為是腫瘤治療失敗，導致腫瘤耐藥產生的重要因素之一。

為了解決腫瘤低氧耐藥性問題以及提高化療對腫瘤的治療效果，人們探索了許多方法。其中Graham課題組報道了低濃度的一氧化氮(NO)供體甘油三硝酸酯和異山梨醇二硝酸酯均能有效地解決腫瘤低氧誘導的耐藥，其原因是低濃度的一氧化氮供體藥物通過NO信號通路激活可溶性鳥苷酸環化酶(sGC)，進而使環鳥苷酸(cGMP)累積， cGMP再激活下游的蛋白激酶G(PKG) ，從而導致調節細胞功能和基因表達的各種靶分子的磷酸化，改善腫瘤乏氧微環境[8]。隨后，Stewar等[9]對抗癌藥舒林酸進行了硝酸酯類一氧化氮供體修飾，得到的結合物能顯著地抑制腫瘤細胞的增殖。但不幸的是，無論將一氧化氮供體與抗癌藥進行簡單的混合還是通過化學鍵連接，它們均不能有效地抑制體內腫瘤的生長，這主要因為低分子量的藥物和一氧化氮供體具有循環半衰期短和水溶性差等缺點，且無法特異性識別腫瘤細胞。

二硫化鉬(molybdenum disulfide，MoS2)是由中心對稱的S-Mo-S三個原子層組成的二維材料。其中，MoS2中的S元素是生物中的一種常見元素，而Mo元素是細胞中幾種酶發揮作用的必需微量元素，且在體內可被氧化成水溶性氧化物(如MnO42-等)，通過尿液和糞便兩種途徑有效排泄，不會造成在體內的大量積累，避免毒副作用的發生[10]。在生物應用方面，MoS2因其卓越的表面等離子共振特性，豐富的化學反應位點，高的光熱轉換效率,強的組織穿透能力，以及良好的生物相容性而成為理想的光熱材料[11]。除了可作為光熱材料之外，MoS2還具有超薄的厚度，較大的表面積，豐富的化學反應位點及各向異性的光學和熱學等特性，使其在生物醫學領域內展現了獨特的開發潛質，特別是在藥物、基因、光敏劑、造影劑等裝載和輸送方面[12]。近幾年，國內外學者積極地開發MoS2材料在生物醫學上應用，特別是在藥物輸送方面和疾病診斷方面。其中，Liu等[13]用聚乙二醇化(PEG)的MoS2納米片作為載體裝載了幾種抗癌藥物，通過對比發現，MoS2的載藥量遠大于其他幾個常見的納米材料，如氧化石墨烯等。Yin等[14]構建了殼聚糖修飾的MoS2藥物輸送系統，實現了近紅外光誘導的藥物釋放以及對腫瘤的光熱和化療的聯合治療。與此同時，本課題組制備了透明質酸修飾的MoS2納米片，以此作為載體，完成了表皮生長因子受體酪氨酸激酶抑制劑吉非替尼和造影劑釓的靶向共輸送，實現了磁共振成像指導下對肺癌的光熱和藥物治療的聯合治療[15]。隨后，我們又用PEG修飾的MoS2納米片同時裝載表皮生長因子受體酪氨酸激酶抑制劑厄洛替尼和化療藥物阿霉素，利用近紅外光控制藥物的釋放，使它們按設定順序作用于腫瘤，實現對肺癌的藥物協同化治療和光熱的聯合治療，取得了不錯的抑瘤效果[16]。這些證據充分說明了MoS2材料可以作為一種安全且有效的載體，實現單個或多個藥物的裝載，控制釋放及輸送。

因此，本研究設計了一種以MoS2納米片作為載體，利用酰胺縮合反應將羧基化的一氧化氮供體單硝酸異山梨酯(isosorbide mononitrate，IM)與靶向配體透明質酸(hyaluronic acid，HA)結合，再憑借硫化學作用將結合物嫁接于MoS2納米片上，最后通過疏水作用裝載抗癌藥物阿霉素(doxorubicin，DOX)，構建一氧化氮供體和抗癌藥物的共遞送系統(MoS2-HA-IM-DOX)。我們不僅考察了此系統的理化特性，而且在細胞水平上研究其抗腫瘤效果。

1 儀器與材料

1.1 儀器 TECNAI G2F20場發射透射電子顯微鏡(美國FEI公司)；Multimode8原子力顯微鏡(德國布魯克公司)；UV-2700i紫外/可見光分光光度計(日本島津公司)；尼高力360智能型傅立葉變換紅外光譜儀(美國尼高力公司)；Zetasizer Nano ZSE馬爾文帕納科納米粒度及電位分析儀(英國馬爾文儀器有限公司)；MDL-N-808激光器(長春新產業光電技術有限公司)；BD FACS AriaIII高端分選型流式細胞儀(美國BD公司)；AX315紅外成像儀(美國菲利爾公司)；TCS SP8激光共聚焦顯微鏡(德國徠卡公司)；Infinite M200Pro酶標儀(瑞士帝肯公司)；HypoxyLab低氧細胞工作站(英國Oxford Optronix公司)。

1.3 細胞 人非小細胞肺癌細胞PC-9、人胚肺成纖維細胞HELF(中科院上海細胞庫)。

2 實驗與方法

2.1 MoS2-HA-IM的制備

2.1.1 HA-IM的制備 EDC和NHS加入HA(20 mg·mL-1，10 mL)PBS溶液，攪拌1 h后，逐滴加到胱胺溶液(56 mg·mL-1，20 mL)內，繼續攪拌24 h后，加入冷乙醇，離心，將所得沉淀復溶于水，轉置于透析袋(3.5 kDa)，除雜72 h，冷凍干燥，可得固體HA-SS-NH2。

IM(1.92 g)溶解于二氯甲烷，加入4-二甲氨基吡啶(1.22 g)和琥珀酸酐(3 g)。無氧條件下，反應24 h，減壓蒸發，依次加入飽和NaHCO3溶液和5%鹽酸，萃取，收集有機相，再經硅膠柱色譜法純化(洗脫劑：石油醚/乙酸乙酯=1∶1)，即制得固體IM-COOH。

IM-COOH(10 mg)溶解于甲酰胺溶液，加入EDC和NHS，攪拌1 h。將活化的IM-COOH逐滴加入到HA-SS-NH2溶液(1 mg·mL-1)中。反應24 h后，加入冷乙醇，離心，將所得沉淀復溶于水，轉置于透析袋(3.5 kDa)，除雜72 h，最后冷凍干燥，即制得結合物HA-IM。

2.1.2 MoS2-HA-IM的制備 HA-IM(10 mg)溶解于水，加入等體積MoS2水溶液(0.5 mg·mL-1)。超聲20 min取出攪拌過夜后，將混合液轉入透析袋(100 kDa)內，透析72 h除去未結合的HA-IM，即制得MoS2-HA-IM溶液。

2.2 MoS2-HA-IM的表征 傅立葉變換紅外光譜儀和紫外/可見光分光光度計分析MoS2-HA-IM的化學結構。場發射透射電子顯微鏡(TEM)觀察MoS2-HA-IM表面形貌。原子力顯微鏡(AFM)測定MoS2-HA-IM的尺寸和厚度。Zeta電位與納米粒度儀測定MoS2-HA-IM的粒徑和電勢電位。

企業信用管理部門在收集客戶信用資料、運用信用評分模型等方面存在一定的局限性。然而術業有專攻，信用管理機構則由專門的財務、法律、經濟專家組成，他們對企業信息收集的范圍更廣，對信用評級的數據依據更加全面，對不同行業的應收賬款風險對應的客戶有不同的評估系統，應對應收賬款風險的預警機制也更加健全。

2.3 光熱特性 移取1 mL不同濃度的MoS2-HA-IM溶液(0、12.5、25、50和100 μg·mL-1)，加入比色皿中，調節808 nm激光器，使用1 W·cm-2的激光照射上述樣品10 min。光照過程中，每隔1 min使用紅外熱成像儀記錄一次樣品的溫度，收集數據并繪制光熱升溫曲線。

2.4 MoS2-HA-IM的細胞毒性 將PC-9細胞(6×103/孔)和HELF細胞(5×103/孔)分別接種于96孔細胞培養板，轉入20% O2的普通培養箱或1% O2低氧工作站中培養。待細胞貼壁后，加入含不同濃度MoS2-HA-IM的細胞培養基。再孵育48 h后，使用MTT法測定細胞活性。

2.5 藥物裝載和釋放 配置不同濃度的DOX溶液，向其中加入等體積的MoS2-HA-IM溶液(0.1 mg·mL-1)，調節pH至8.0。避光攪拌24 h后，將溶液移入至超濾管(Millipore，MWCO 100 kDa)內，其在3 000 r·min-1轉速下超濾離心10 min，并用去離子水反復洗滌離心至下層溶液無色，得到的MoS2-HA-IM-DOX溶液置于4 ℃冰箱保存，并根據裝載DOX前后的MoS2-HA-IM在480 nm波長處的吸收度變化來計算DOX的裝載量。

MoS2-HA-IM-DOX(1 mL)溶液封閉于透析袋內，隨后沉浸于9 mL不同pH值的PBS溶液中。光照組樣品受到808 nm激光(1 W·cm-2)照射10 min，而其他組避光處理。在隨后46 h內，所有樣品均避光處理。在設定的時間點，取出0.2 mL透析液，測定其在480 nm波長處的吸光度，隨后將其放回至原來的釋放體系中，維持該體系的體積恒定。48 h后，收集數據并繪制出藥物的累計釋放曲線。

2.6 細胞攝取 將PC-9細胞(3×105/皿)和HELF細胞(1×105/皿)分別接種于共聚焦小皿，隨后轉入1% O2的低氧工作站中培養。待細胞貼壁后，使用細胞培養基稀釋MoS2-HA-IM-DOX溶液至設定濃度([DOX]=20 μg·mL-1)，隨后加入共聚焦小皿內，培養2 h。待細胞核染色完成后，置于共聚焦顯微鏡下觀察細胞的熒光圖像。細胞表面HA受體封閉實驗是預先使用游離HA(4 mg·mL-1)孵育細胞2 h，然后加入MoS2-HA-IM-DOX稀釋液按相同方法處理。與此同時，采用流式細胞儀定量考察了PC-9細胞和HELF細胞對MoS2-HA-IM-DOX的攝取。

2.7 IM逆轉腫瘤低氧誘導的耐藥 將PC-9細胞(6×103/孔)接種于96孔細胞培養板，再轉入20% O2的普通培養箱或1% O2低氧工作站內。待細胞貼壁后，用細胞培養基將IM溶液稀釋到設定的濃度，加入培養孔內。共孵育2 h后，用PBS清洗細胞3次，再加入含DOX的細胞培養基。另外孵育48 h后，用MTT法測定細胞的活性。

2.8 MoS2-HA-IM-DOX的細胞毒性 PC-9細胞(6×103/孔)接種于96孔細胞培養板，在低氧環境下培育24 h。隨后將含有DOX或MoS2-HA-IM-DOX的細胞培養基加入培養孔內。孵育2 h后，用PBS溶液清洗細胞3次，每孔加入新鮮的細胞培養基。再孵育48 h后，用MTT法測定細胞的活性。

2.9 近紅外光照射下MoS2-HA-IM-DOX對肺癌細胞的殺傷作用 PC-9細胞(6×103/孔)接種于96孔細胞培養板，轉入1% O2低氧工作站中。待細胞貼壁之后，將細胞分為6組：①細胞培養基；②MoS2-HA-NH2；③MoS2-HA-IM；④DOX；⑤MoS2-HA-DOX；⑥MoS2-HA-IM-DOX([DOX]=20 μg·mL-1，[MoS2-HA-IM]=80 μg·mL-1)。待細胞與對應的材料共孵育2 h后，用PBS溶液清洗細胞3次，每孔加入新鮮的細胞培養基。光照組的細胞受到1 W·cm-2的808 nm激光照射10 min，而其他組的細胞避光處理。再孵育48 h后，用MTT法測定細胞的活性。

2.10 統計學分析 實驗結果均使用GraphPad Prism 8.0軟件進行統計學分析處理。實驗數據以平均值±標準差(Mean±SD)表示。采用t檢測分析兩實驗組間的差異；采用單因素方差分析方法(ANOVA)分析兩組以上實驗組間的差異。P<0.05被認為具有統計學差異。

3 結果與討論

3.1 MoS2-HA-IM的制備及表征 MoS2納米片是通過化學剝離法制備的[17-18]，從圖1b透射電鏡圖(TEM)和圖1c～1d原子力顯微鏡圖(AFM)可知制備的MoS2納米片結構為層狀，且平均厚度約為1.1 nm，表明其多為單層或少層。同時，我們也發現MoS2納米片可以穩定地分散在水中，但由于電子屏蔽效應，在生理鹽水溶液內會產生聚集，這嚴重影響了MoS2材料在生物醫學上的應用。在我們之前的研究中，HA修飾的MoS2納米片(MoS2-HA)具有較好的生理穩定性，能夠在生理鹽水內保持穩定達30 d以上[15]，而在這個工作的體系中，我們將IM引入到這MoS2-HA納米片內，以制備攜一氧化氮供體納米載體MoS2-HA-IM。

從圖2a紅外譜圖可以看出，相比于IM，IM-COOH在1 720 cm-1處有明顯的C=O伸縮振動峰，說明了IM中的羥基已轉化成羧基。隨后利用EDC/NHS技術，將HA-SS-NH2和IM-COOH結合起來。如我們預期所想，一些IM-COOH的特征峰出現在了HA-SS-NH2的紅外圖譜上，比如-NO2的伸縮振動峰(1 320 cm-1)，說明了HA-SS-NH2和IM-COOH的成功結合。將HA-IM與MoS2反應后，一些HA-IM的特征峰便出現在了MoS2的紅外光譜圖上，比如N-H伸縮振動峰(1 660 cm-1)和C-O變角彎曲振動峰(1 150 cm-1)，說明了HA-IM已成功地嫁接到了MoS2納米片上。同時，從圖2b MoS2-HA-IM的紫外-可見光-近紅外吸收光譜中可以看出，其在紫外200～250 nm范圍內的吸光度較MoS2高，進一步證實了HA-IM存在于MoS2納米片上。

在證實MoS2-HA-IM的成功制備后，我們考察了其形貌特征。如圖1f～1h所示，與MoS2納米片相比，MoS2-HA-IM仍具有2D層狀結構，平均厚度上升至4 nm，間接地提供了HA-IM存在于MoS2納米片上的證據，而粒徑卻由180 nm降低至90 nm，這一結果也得到了DLS測試的證實，其原因為超聲粉碎了納米片，結果見圖1i。

圖1 (a)MoS2-HA-IM的制備示意圖；(b～d)MoS2納米片的TEM圖，AFM圖以及其厚度；(e)MoS2和MoS2-HA-IM在水、PBS溶液和細胞培養基放置30 d后的光學照片;(f～h)MoS2-HA-IM納米片的TEM圖，AFM圖以及其厚度;(i)動態光散射(DLS)測試得到的MoS2和MoS2-HA-IM的水合粒徑

3.2 MoS2-HA-IM的光熱特性 由圖2b可知，HA-IM的存在不影響MoS2在近紅外區域的強吸收。為了研究MoS2-HA-IM的光熱性能，配制了不同濃度的MoS2-HA-IM溶液，隨后用1 W·cm-2的808 nm激光照射上述樣品10 min。結果發現，激光照射前后水樣的溫度只增加了6 ℃左右。相比之下，MoS2-HA-IM溶液的溫度在激光照射后出現明顯的升高，且樣品的濃度越大，溶液溫度的升高速率越快，最高溫度可達96 ℃，結果見圖3a、3b。相比人體的正常體溫為37 ℃而言，在近紅外光的照射下，積累在腫瘤部位的MoS2-HA-IM可以提高腫瘤區域的溫度至43 ℃以上，引起腫瘤細胞的消融和死亡，從而在一定程度上抑制腫瘤的生長[19]。

圖2 (a)MoS2-HA-IM的傅立葉變換紅外光譜圖;(b)HA-IM嫁接前后MoS2的紫外-可見-近紅外吸收光譜圖

圖3 (a)在功率密度為1 W·cm-2的激光照射下，水和不同濃度的MoS2-HA-IM溶液的光熱升溫曲線；(b)對應(a)中樣品的熱成像圖

3.3 MoS2-HA-IM的細胞毒性 選取PC-9細胞和HELF細胞作為細胞模型，使用MTT法評估MoS2-HA-IM的細胞毒性。結果如圖4a所示，當MoS2-HA-IM的濃度在12.5～400 μg·mL-1范圍內時，PC-9細胞和HELF細胞的活性均保持在90%以上。同時，我們也考察了MoS2-HA-IM在低氧環境下的細胞毒性，由圖4b中可知得到了與上述相似的結果，進一步說明MoS2-HA-IM具有較低的細胞毒性，具有在生物醫學領域應用的前景。

圖4 在常氧環境(a)或低氧環境(b)下，與不同濃度的MoS2-HA-IM溶液孵育48 h后PC-9細胞和HELF細胞的活性

3.4 藥物裝載以及雙重響應的藥物釋放 有文獻報道，在弱堿(pH=8.0)環境下,DOX·HCI會脫鹽而變得疏水，進而可通過疏水作用裝載于MoS2納米片上，實現藥物的有效輸送[13]。在本實驗中，為了探究MoS2-HA-IM對DOX的裝載能力，我們將MoS2-HA-IM溶液與不同濃度的DOX溶液相混合。攪拌24 h后，超濾以除去未裝載的DOX。由圖5a可知，DOX的吸收特征峰(480 nm)出現在了MoS2-HA-IM的紫外-可見光-近紅外吸收光譜上，說明了DOX已經成功裝載于MoS2-HA-IM上。同時可知，MoS2-HA-IM對DOX的裝載量隨著DOX濃度的增大而增加。然而，裝載量一旦超過50%，MoS2-HA-IM-DOX在生理條件下的穩定性受到了嚴重的影響，甚至出現了局部聚沉的現象，這可能是由于DOX的大量存在改變了MoS2-HA-IM的Zeta電勢。

實驗考察了MoS2-HA-IM-DOX的藥物釋放動力學。由圖5b可知，在pH為5.5的釋放介質中，MoS2-HA-IM-DOX在48 h內的藥物累計釋放百分比為25.7%，是pH為7.4條件下(9.3%)的2.6倍，表現出pH響應的藥物釋放行為。這是由于DOX分子中的氨基在酸性條件下易發生質子化，提高了DOX在水中的溶解性，減弱了DOX與MoS2載體之間的疏水作用，進而加快DOX的釋放速率[16]。經過近紅外光照射10 min后，pH為5.5環境下的藥物累計釋放百分比從15.4%迅速上升至41.3%，增長了25.9%，遠遠大于未激光照射，說明了MoS2-HA-IM-DOX具有近紅外光誘導藥物釋放的特性，綜上所述，pH和近紅外光雙重藥物釋放特性能夠有效地促使藥物脫離載體，可增強MoS2-HA-IM-DOX的化療效果。

圖5 (a)MoS2-HA-IM裝載不同濃度的藥物時的紫外-可見-近紅外吸收光譜圖；(b)在有/無近紅外光照射(1 W·cm-2)和不同pH值的環境下，DOX的累計釋放曲線

3.5 低氧環境下肺癌細胞對MoS2-HA-IM-DOX的攝取 圖6a為激光共聚焦顯微鏡觀察細胞的熒光圖像，結果發現相較于HELF細胞而言，PC-9細胞顯示出更強的DOX熒光，說明MoS2-HA-IM-DOX更容易進入PC-9細胞。且經過HA預處理的PC-9細胞顯示出非常弱的DOX熒光，與HELF細胞相仿，這主要因為游離的HA與PC-9細胞表面的HA受體結合，占據了MoS2-HA-IM-DOX與細胞結合的位點，使此納米復合物無法特異性識別細胞，導致其進入細胞內的效率大大降低。

使用流式細胞儀定量分析了PC-9細胞和HELF細胞內的熒光強度，結果見圖6b。流式細胞儀測試得到的胞內量化熒光數據與激光共聚焦細胞熒光成像的結果相吻合，進一步證實了HA修飾的MoS2材料具有對HA受體過表達的腫瘤細胞特定的靶向識別能力，可將裝載的藥物有效地輸送到腫瘤細胞內。

圖6 Nano：MoS2-HA-IM-DOX注：(a)在低氧及有/無游離HA存在的條件下，PC-9細胞和HELF細胞與Nano共孵育2 h后的激光共聚焦熒光圖像；(b)用流式細胞儀定量分析(a)中胞內DOX熒光強度

3.6 MoS2-HA-IM-DOX在細胞水平上的協同治療 由圖7a可知，在相同的DOX濃度下，低氧環境下PC-9細胞表現出較高的細胞活性，且低氧環境下DOX的IC50值是常氧環境下的3.2倍，表明腫瘤細胞在低氧環境下對DOX具有較強的耐受性。但當這些細胞與IM處理后，細胞的活性顯著下降，見圖7b。為了探究細胞活性變化的原因，考察了IM的細胞毒性，由圖7c發現，在濃度0.01～10 μg·mL-1范圍內，IM表現出無毒，且不會抑制腫瘤細胞的增殖。這一結果證實了IM+DOX組較低的細胞活性是因為IM能夠有效地減弱腫瘤細胞在低氧環境下對DOX的耐受性，增強了DOX的細胞毒性所導致的。

圖7 (a)在不同的氧分壓下，與不同濃度的游離DOX孵育后PC-9細胞的活性；(b)低氧環境下，PC-9細胞經IM處理后，再與DOX共孵育后的活性；(c)在不同的氧分壓下，與不同濃度的IM孵育48 h后PC-9細胞的活性

為了進一步證實IM能夠逆轉腫瘤在低氧環境下的耐藥性，緊接著，我們考察裝載有IM的MoS2-HA-IM-DOX能否在低氧環境下具有較強的細胞毒性。由圖8a可知，游離DOX、MoS2-HA-DOX、MoS2-HA-IM-DOX 3種材料都能在一定程度上抑制PC-9細胞的增殖，且均表現出明顯的濃度依賴性。但在相同的DOX濃度下，相較于與MoS2-HA-DOX或DOX共孵育的細胞而言，與MoS2-HA-IM-DOX共孵育的細胞顯示出較低的細胞活性，說明了IM能有效地增強MoS2-HA-DOX的細胞毒性，提高其化療效果。

圖8 (a)在低氧環境下，與不同濃度的MoS2-HA-IM-DOX孵育后PC-9細胞的活性;(b)在低氧環境下，經過不同方式處理后PC-9細胞的活性

考察MoS2-HA-IM-DOX對細胞的殺傷力是否在近紅外光的照射下得到進一步的增強。由圖8b可知，單獨的近紅外光照射不會對腫瘤細胞的增殖產生影響，也不會增強游離DOX的細胞毒性。但給予MoS2材料處理的腫瘤細胞經過近紅外光照射后，其活性下降顯著。這主要因為MoS2納米材料可以將吸收到的近紅外光轉換成熱能，引起腫瘤細胞的消融，并部分抑制其增殖。此外，載有DOX的MoS2材料在光照之后對腫瘤細胞殺傷能力得到顯著的增強，特別是MoS2-HA-IM-DOX，僅有6.4%的細胞處于存活狀態，明顯低于其他實驗組。出現這種結果的原因是：第一，MoS2材料經過光照之后產生的光熱能有效地誘導DOX釋放，提高細胞內游離DOX的濃度；第二，裝載的IM削弱了腫瘤細胞對DOX的耐受性，增強了游離DOX的細胞毒性；第三，化療和光熱的協同效應。

4 結論

在本研究中，我們以胱胺為連接體，利用EDC/NHS技術，將IM與HA結合，再通過硫化學作用將其嫁接到MoS2納米片上。制備的納米載體MoS2-HA-IM具有較高的生理穩定性，優異的光熱特性以及較低的細胞毒性，且通過疏水作用裝載抗癌藥物DOX，成功構建一氧化氮供體和阿霉素的共遞送系統。此系統可憑借HA受體介導的內吞作用有效地將DOX輸送到腫瘤細胞內。在近紅外光和pH雙重刺激下，藥物盡可能地從載體中脫離出來，提高了MoS2-HA-IM-DOX的藥物治療效果，且裝載的IM削弱腫瘤細胞在低氧環境下對藥物的耐受性，進一步增強了藥物治療效果，再聯合近紅外光照射MoS2材料產生的光熱，一起有效地抑制了腫瘤細胞的增殖。