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槲皮素對病毒性腦炎幼鼠癥狀的緩解及對TLR9通路的調節作用研究

2022-02-28 07:34:48閆宇嬌王德莉石對先
吉林中醫藥 2022年2期
關鍵詞:模型

閆宇嬌,王德莉,石對先

(河南中醫藥大學第五臨床醫學院/鄭州人民醫院,鄭州 450000)

病毒性腦炎(viral encephalitis,VE)是一種常見于兒科的感染性中樞神經系統急癥[1]。該病因病毒種類以及侵犯部位的不同,臨床表現呈多樣化,主要為頭痛、嘔吐、抽搐、發熱、運動功能障礙、意識模糊等[2]。目前臨床對病毒性腦炎尚無有效的治療方法,通常采取控制發熱、炎癥,降低免疫反應損傷,防止呼吸衰竭等措施,但效果并不理想,且其臨床特征不明顯,易被誤診延誤治療,以致預后不佳,致殘率、病死率居高不下[3]。因此,探尋療效更加確切的病毒性腦炎治療方式,對于改善病毒性腦炎預后意義重大。槲皮素是慢性支氣管炎常用藥物,也可用于冠心病、高血壓的輔助治療,具有抗炎、抗氧化、清除氧自由基、免疫抑制、抗病毒等功效[4]。本研究通過建立病毒性腦炎幼鼠模型,研究槲皮素對病毒性腦炎的治療作用,并探討相關機制。

1 材料與方法

1.1 實驗材料 SPF級雄性BALB/c幼鼠50只,3周齡,體質量(9.45±0.45)g,購自上海茂生衍生物科技有限公司,生產許可SCXK(滬)2017-0004。槲皮素(純度≥98%,上海源葉生物科技有限公司),柯薩奇病毒B3懸液(武漢博威德生物技術有限公司),Toll樣受體(toll-like receptor,TLR)9/髓樣分化因子88(myeloid differentiation factor88,MyD88)信號通路激動劑CpG寡脫氧核苷酸(CpG oligodeoxynucleotide,CpG ODN)(上海易匯生物科技有限公司),腫瘤壞死因子-α(tumor necrosis factor-α,TNF-α)、白介素-1β(interleukin-1β,IL-1β)、干擾素γ(interferon-γ,IFN-γ)、鈣結合蛋白(S100 calciumbinding protein B,S-100B)酶聯免疫吸附實驗(enzyme-linked immunosorbent assay,ELISA)試劑盒(上海雅吉生物科技有限公司),二喹啉甲酸(bicinchoninic acid,BCA)蛋白定量試劑盒(美國Thermo Fisher Scientific公司),兔抗小鼠TLR9、MyD88、核轉錄因子-κB(nuclear factor κB,NF-κB)、p-NF-κB蛋白一抗(美國R&D公司)。CX23光學顯微鏡(日本奧林巴斯株式會社),iMark酶標儀、Gel Doc XR凝膠成像系統(美國Bio-Rad公司),TY-80電泳儀(南京普陽科學儀器研究所)。

1.2 建立病毒性腦炎模型[5]從50只BALB/c幼鼠中隨機抽取10只作為對照組,其余建立病毒性腦炎模型。乙醚麻醉后,在右側眼角與耳根連線中點進針2~3 mm,顱內注射30 μL 100 TCID50 10-3病毒濃度,對照組同位置注射同體積生理鹽水。將建模幼鼠隨機分為模型組(13只)、槲皮素組(13只)、槲皮素加激動劑組(14只)。實驗結束后觀察腦組織病理變化,以出現明顯病理改變為建模成功。剔除建模失敗幼鼠數據及實驗過程中死亡幼鼠數據,模型組、槲皮素組建模失敗2只,死亡1只,槲皮素加激動劑組建模失敗2只,死亡2只,最終各組均納入10只。

1.3 干預[6-7]建模完成后,槲皮素組灌胃槲皮素生理鹽水溶液1 mL(含藥量100 mg/kg),腹腔注射生理鹽水0.6 μg/g,槲皮素加激動劑組灌胃槲皮素生理鹽水溶液1 mL(含藥量100 mg/kg)后腹腔注射CpG ODN 0.6 μg/g,對照組、模型組灌胃等體積生理鹽水,腹腔注射生理鹽水0.6 μg/g。每天1次,持續7 d。

1.4 組織取材 末次干預后,各組幼鼠禁食禁水6 h,腹腔注射戊巴比妥鈉深度麻醉,抽取腹主動脈血注入離心管內,3 000 r/min離心15 min,取其上清,置于液氮中保存,后脫頸處死幼鼠,摘取腦組織,分成3份,1份用4%多聚甲醛固定24 h,梯度乙醇脫水、透明、浸蠟、石蠟包埋,經病理切片機制作為厚度4 μm連續切片用于HE染色;兩份置于液氮中保存用于ELISA實驗及蛋白檢測。

1.5 檢測腦組織炎癥指標TNF-α、IL-1β水平 取液氮保存的腦組織,剪碎后加入PBS 1 mL,注入預冷玻璃勻漿器中,充分研磨,4 ℃ 10 000 r/min離心15 min(離心半徑8 cm),取其上清,采用ELISA法檢測腦組織中TNF-α、IL-1β水平,按照ELISA試劑盒說明書要求設計實驗步驟,經酶標儀測定波長570 nm位置吸光度值,通過標準曲線計算TNF-α、IL-1β濃度。

1.6 檢測血清神經功能指標IFN-γ、S-100B水平 取液氮保存的主動脈血清,采用ELISA法檢測血清中IFN-γ、S-100B水平,按照ELISA試劑盒說明書要求設計實驗步驟,經酶標儀測定波長570 nm位置吸光度值,通過標準曲線計算IFN-γ、S-100B濃度。

1.7 HE染色觀察腦組織病理學改變 取腦組織切片常規脫蠟,自來水沖洗,加入蘇木精液染色,自來水沖洗,鹽酸乙醇沖洗3 s,自來水沖洗,加入Scott藍化液反藍,自來水沖洗,伊紅液染色,梯度乙醇脫水、透明,滴入中性樹膠封片,光鏡下觀察腦組織病理學變化,并拍照記錄。

1.8 Western blot法檢測腦組織TLR9、MyD88、NF-κB p65、p-NF-κB p65蛋白表達 取液氮保存的腦組織研磨器研磨,加入PBS洗滌勻漿,置于離心管中,注入RIPA裂解液裂解,8 500 r/min離心15 min(離心半徑8 cm),經BCA試劑盒定量蛋白。取40 μg樣品與上樣緩沖液1:5體積比混合,沸水浴5 min,離心取其上清,恒壓80 V行上樣電泳分離,改110 V濕法轉膜,5%脫脂牛奶常溫封閉2 h,TBST洗膜,加入兔抗小鼠TLR9、MyD88、NF-κB p65、p-NF-κB p65一抗(1:500),4 ℃搖床孵育2 h,TBST洗膜,加入山羊抗兔IgG二抗(1:2 000),常溫孵育2 h,TBST洗膜,加入ECL發光液顯色,暗室曝光,經凝膠成像系統掃描拍照,分析灰度值,以TLR9、MyD88、NF-κB p65、p-NF-κB p65蛋白灰度值/GAPDH灰度值表示TLR9、MyD88、NF-κB p65、p-NF-κB p65蛋白相對表達量。計算p-NF-κB p65/NF-κB p65。

1.9 統計學處理 采用SPSS 19.0對數據進行分析與處理,采用均數±標準差(x±s)描述計量資料,采用單因素方差分析比較多樣本計量資料,以LSD-t檢驗比較兩兩樣本。

2 結果

2.1 行為學觀察 對照組幼鼠未見行為學異常;建模后幼鼠接種病毒后陸續出現活動量減少、蜷縮、毛發松散、食欲減輕等表現,3 d后出現肢體麻痹、抽搐、耳廓尾部壞死等表現,4只幼鼠死亡,槲皮素組、槲皮素加激動劑組干預后上述癥狀均有所改善。

2.2 炎癥指標水平 與對照組比較,模型組腦組織TNF-α、IL-1β水平升高(P<0.05);與模型組比較,槲皮素組腦組織TNF-α、IL-1β水平降低(P<0.05);與槲皮素組比較,槲皮素加激動劑組腦組織TNF-α、IL-1β水平升高(P<0.05)。見表1。

表1 各組幼鼠腦組織炎癥指標水平比較(,n =10)ng/mL

表1 各組幼鼠腦組織炎癥指標水平比較(,n =10)ng/mL

注:與對照組比較,# P<0.05;與模型組比較,△P<0.05;與槲皮素組比較,▲P<0.05

2.3 神經功能指標IFN-γ、S-100B水平 與對照組比較,模型組血清IFN-γ、S-100B水平升高(P<0.05);與模型組比較,槲皮素組血清IFN-γ、S-100B水平降低(P<0.05);與槲皮素組比較,槲皮素加激動劑組血清IFN-γ、S-100B水平升高(P<0.05)。見表2。

表2 各組幼鼠腦組織神經功能指標水平比較(,n =10)

表2 各組幼鼠腦組織神經功能指標水平比較(,n =10)

注:與對照組比較,# P<0.05;與模型組比較,△P<0.05;與槲皮素組比較,▲P<0.05

2.4 HE染色觀察腦組織病理學改變 HE染色結果顯示,對照組幼鼠腦組織神經元結構正常;模型組幼鼠腦組織明顯水腫,大量神經細胞壞死,神經元樹突消失、細胞核染色重,炎性細胞大量浸潤;槲皮素組、槲皮素加激動劑組幼鼠腦組織水腫程度減輕,神經元少量變性,炎性細胞少量浸潤,槲皮素組病理改善程度更為明顯。見圖1。

圖1 HE染色觀察各組腦組織病理變化(×400,標尺25 μm)

2.5 腦組織TLR9、MyD88蛋白表達量、p-NF-κB p65/NF-κB p65 與對照組比較,模型組腦組織TLR9、MyD88蛋白表達量、p-NF-κB p65/NF-κB p65升高(P<0.05);與模型組比較,槲皮素組腦組織TLR9、MyD88蛋白表達量、p-NF-κB p65/NF-κB p65降低(P<0.05);與槲皮素組比較,槲皮素加激動劑組腦組織TLR9、MyD88蛋白表達量、p-NF-κB p65/NF-κB p65升高(P<0.05)。見圖2,表3。

圖2 Western blot法檢測腦組織TLR9、MyD88、NF-κB p65、p-NF-κB p65蛋白表達

表3 各組腦組織TLR9、MyD88、NF-κB p65、p-NF-κB p65蛋白表達(,n =10)

表3 各組腦組織TLR9、MyD88、NF-κB p65、p-NF-κB p65蛋白表達(,n =10)

注:與對照組比較,# P<0.05;與模型組比較,△P<0.05;與槲皮素組比較,▲P<0.05

3 討論

病毒性腦炎是由于腦實質被各種病毒侵犯而引發的急性炎癥疾病,其病情與患者的免疫狀態關系密切,智力降低、癱瘓、癲癇等預后不良后遺癥頻發[8]。皰疹病毒、小腸病毒、日本腦炎病毒、巨細胞病毒均是病毒性腦炎的常見病原體,我國流行病調查研究顯示,小腸病毒是病毒性腦炎最常見的病因[9]。目前病毒性腦炎發病機制尚不明確,通常認為與灰質炎癥反應及免疫介導損傷有關[10]。盡管西藥可在一定程度上保護病毒性腦炎腦損傷,但由于藥物自身療效的局限性及不良反應,臨床應用受到一定限制。隨著對祖國醫學研究的逐步深入,相對安全的中藥及其單體成分逐漸應用于病毒性腦炎治療中。

IFN-γ是輔助T1樣細胞、自然殺傷細胞活化后產生的單糖蛋白,可間接活化巨噬細胞、中性粒細胞,增強其吞噬能力及抗病毒能力,是機體重要免疫調控因子,常用來作為神經功能損傷標記物[11]。S-100B是腦組織膠質細胞分泌的高度保守的鈣結合蛋白,在機體中樞神經系統中廣泛分布,其會在腦組織損傷時溢出,進入腦脊液及血液中,是判斷腦損傷程度的特異性指標之一[12]。槲皮素是提取自殼斗科、小檗科、金絲桃科植物皮葉的黃酮醇類化合物,在植物界廣泛分布,是一種天然抗氧化劑,國外常被用于治療前列腺癌[13]。有研究表明[14],槲皮素通過抑制小膠質細胞衍生的氧化應激反應和炎癥反應,有效減輕小鼠腦梗塞體積及認知、運動功能缺陷,提示其對腦損傷的治療作用。本研究結果顯示,與模型組比較,槲皮素組腦組織TNF-α、IL-1β水平、血清IFN-γ、S-100B水平降低,HE染色結果顯示,與模型組比較,槲皮素組腦組織水腫程度減輕,神經元變性、炎性細胞浸潤減少,提示槲皮素可降低腦組織炎癥反應,減輕神經功能損傷及腦組織病理學變化。

TLR9/MyD88信號通路是機體經典炎癥反應通路。TLR9是模式識別受體蛋白,廣泛分布于多種細胞膜及細胞內,參與介導機體先天及特異性免疫[15]。MyD88是其下游轉接蛋白,TLR9與相關損傷因子配體結合后,激活MyD88蛋白,通過信號傳導刺激NF-κB,其磷酸化后轉移至細胞核,誘導巨噬細胞、單核細胞合成并釋放TNF-α、IL-1β等炎癥因子,促進炎癥反應發生[16]。Zhou等[17]研究認為,抑制TLR9信號通路可下調腦組織炎癥因子IL-1β、TNF-α水平,對小鼠腦缺血再灌注損傷具有保護作用。本研究結果顯示,與對照組比較,模型組腦組織TLR9、MyD88蛋白表達量、p-NF-κB p65/NF-κB p65升高,經槲皮素干預后均降低,且在槲皮素基礎上增用TLR9/MyD88信號通路激動劑CpG ODN可減弱槲皮素對病毒性腦炎的治療作用,提示TLR9/MyD88信號通路在病毒性腦炎中異常激活,槲皮素可能通過抑制該通路對病毒性腦炎幼鼠產生治療作用。

綜上所述,槲皮素可緩解病毒性腦炎幼鼠癥狀,減輕炎癥反應及神經功能損傷,推測其作用機制與抑制TLR9/MyD88信號通路有關。

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