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著絲粒蛋白U對胃癌細胞增殖、糖酵解的影響及機制

2022-04-07 09:24:36鄧桃枝江雪梅何周桃蔡曼妮陳超超許澤文
山東醫藥 2022年10期
關鍵詞:胃癌研究

鄧桃枝,江雪梅,何周桃,蔡曼妮,陳超超,許澤文

1 海南省腫瘤醫院消化內科,海口 570312;2 海南省人民醫院消化內科

胃癌是全球常見的惡性腫瘤之一,有較高發病率及病死率,盡管臨床在胃癌的診斷和治療方面已取得重大進展,但研究顯示,與胃癌相關的病死率將繼續增加[1]。癌細胞異常代謝是癌癥進展的關鍵因素之一,有氧或缺氧環境下癌細胞均最先以糖酵解途徑供能,使癌細胞具有更強的耐受能力[2]。研究表明,當肺正常細胞由于外界環境因素或基因突變等發生癌變后,肺癌細胞新陳代謝速度加快,能量代謝活躍、細胞膜通透性增加、增殖速度加快,都導致癌細胞對能量的需求量增加,最終通過增加糖酵解途徑加速提供能量及產生必要的大分子產物[3]。因此,有效抑制癌細胞糖酵解可能有助于改善和發現針對癌癥的新策略。研究表明,糖酵解途徑產生可三磷酸腺苷(ATP),而ATP 水解釋放的能量使著絲粒微管(著絲粒纖維)向細胞紡錘體極端延伸,進而促進細胞有絲分裂[4]。著絲粒蛋白(CENPU)是有絲分裂階段染色體分離的主要成分,CENPU 是CENP家族一員,又稱為骨髓增生異常/髓樣白血病因子1相互作用蛋白(MLF1IP)、KHSVLNA相互作用蛋白1(KLIP1)[5]。研究顯示,下調CENPU 表達可抑制惡性腫瘤進展[6]。TCGA 數據庫顯示,MLF1IP 即CENPU 在胃癌組織中異常高表達,但其在胃癌中的作用尚未明確。2020 年5 月—11 月,我們探討了CENPU對胃癌細胞增殖、糖酵解的影響及機制,以期為臨床精準治療胃癌提供參考。

1 材料與方法

1.1 材料 人胃上皮細胞GES-1、胃癌細胞系AGS、MKN45、HGC-27 均購自北京北納創聯生物技術研究院。RPMI1640 培養基購自武漢益普生物科技有限公司;Lipo-fectamineTM3000 轉染試劑盒購自美國Invitrogen 公司;si-CENPU、si-CENPU-NC 序列引物序列均由上海生工生物工程技術有限公司合成;CCK-8 試劑盒試劑盒購自福州飛凈生物科技有限公司;葡萄糖消耗(GC)、乳酸脫氫酶(LDH)、ATP、丙酮酸激酶(PK)、己糖激酶(HK)酶聯免疫吸附(ELISA)試劑盒、兔抗人蛋白激酶B(AKT)、磷酸化AKT(p-AKT)、轉錄激活因子3(STAT3)及β-肌動蛋白(β-actin)多克隆抗體、山羊抗兔HRP 二抗均購自北京義翹神州科技股份有限公司。CO2細胞培養箱購自美國Thermo 公司;ELx800 型酶標儀、C1000型熒光定量PCR儀購自美國Bio-rad公司。

1.2 細胞培養 復蘇并解凍GES-1、AGS、MKN45、HGC-27 細胞,于含10% 滅活胎牛血清(FBS)+90%RPMI1640 的培養液、37℃、5%CO2、95%O2培養箱中培養,每2~3 d換1次培養液,傳代培養。

1.3 各細胞系中CENPU mRNA 表達測定 采用實時熒光定量PCR 法。分別取對數生長期的各細胞并提取總RNA、測濃度,以RNA 為模板行反轉錄反應,將所得cDNA 進行實時熒光定量PCR 反應。體系20 μL:10 μL ULtraSYBR mixture、2.0 μL cDNA、正反向引物各2.0 μL、4.0 μL H2O2;共40 個循環:95 ℃15 s、60 ℃60 s;溶解曲線60~95 ℃,每15 s 升溫0.3℃。以β-actin 為內參,CENPU 正向引物:5'-AAGGTGAAGGTCGGAGTCAAC-3',反向引物:5'-GGGGTCATTGATGGCAACAATA-3';β-actin 正向引物:5'-GCAGAAGTGCGAAGAGGAGG-3',反向引物:5'-GCTTGATGGAGTTGTCGGTGTA-3'。 采用2-ΔΔCt方法計算各細胞中CENPU mRNA表達。

1.4 HGC-27 細胞分組及處理 選擇1.2 結果中CENPU mRNA 表達最高的HGC-27 細胞為研究對象。取對數生長期的HGC-27 細胞,接種于24 孔板(2.5×104/孔),待細胞融合至70%~80%時,更換無FBS 的培養液培養,將細胞隨機分為3 組:①陰性對照組(si-CENPU-NC 組):先用無FBS 的培養液將LipofectamineTM3000 稀釋,用消毒的移液槍頭吸取5 μL LipofectamineTM3000 轉染試劑溶入250 μL Opti-MEM 培養基,吹打混勻,靜置5 min;用消毒移液槍頭吸取10 μL 含si-CENPU 的溶液溶入250 μL Opti-MEM 培養基,吹打混勻,靜置5 min;上述兩種靜置后的溶液放入同一EP 管中,吹打混勻,靜置20 min,后將混合液全部轉移到6 格板中的其中1 個小孔中,搖勻法晃動6格板,使細胞培養基與轉染混合液充分混勻;②沉默CENPU 表達組(si-CENPU組):操作同si-CENPU-NC 組;③同時將未經特殊處理細胞設置為空白對照組(NG 組)。各組細胞繼續培養24 h,每組設置6個復孔,實驗重復3次。

1.5 各組HGC-27細胞增殖能力檢測 采用CCK-8法。分別取1.4 各組HGC-27 細胞、消化,接種至24孔板(2.5×104/孔),分別于培養24 h 后嚴格按照CCK-8 試劑盒說明書加入CCK-8 試劑,繼續培養2 h,檢測570 nm 處各孔細胞光密度(OD)值。計算細胞增殖抑制率(%)=(1-實驗組OD 值/NG 組OD值)×100%,每組設置6個復孔,實驗重復3次。

1.6 各組HGC-27 細胞克隆形成率測定 采用平板克隆實驗。分別取1.4 各組HGC-27 細胞,于6 孔板(每孔500 個細胞),每組6 個復孔,于37 ℃、5%CO2、95%O2條件下培養15 d,4%多聚甲醛固定、0.25%結晶紫染色30 min;拍照并計算克隆形成率。克隆形成率(%)=克隆形成數/接種細胞數×100%。

1.7 各組HGC-27 細胞糖酵解過程關鍵指標測定 采用ELISA 法。分別取1.4各組HGC-27細胞,吸取細胞培養上清液,按照LD檢測試劑盒說明書檢測上清中GC、LD 含量及關鍵酶HK、PK 水平;將細胞消化,接種至24 孔板(2.5×104個/孔),用生理鹽水洗滌細胞并制成細胞懸浮液,按照ATP 檢測試劑盒說明書檢測細胞中ATP 含量。以上操作嚴格按照ELISA試劑盒書進行操作。

1.8 各組HGC-27 細胞AKT/STAT3 通路相關蛋白表達檢測 采用免疫印跡法。分別取1.4 各組HGC-27 細胞,以RIPA 裂解并提取總蛋白,電泳、轉膜,放入脫脂奶粉溶封閉,分別加入LDHA(1∶500)、GLUT1(1∶500)、AKT(1∶500)、p-AKT(1∶500)、STAT3(1∶500)、p-STAT3(1∶500)及內參β-actin(1∶500)為一抗,過夜,加入HRP 標記山羊抗兔二抗(1∶1 000),室溫孵育30 min,顯影、定影,以各基因條帶灰度值計算各目標基因蛋白相對表達量。

1.9 統計學方法 采用SPSS22.0 統計軟件。計量資料符合正態分布以xˉ±s表示,多組間比較采用單因素方差分析,進一步兩兩比較采用SNK-q檢驗。P<0.05為差異有統計學意義。

2 結果

2.1 人胃癌不同細胞系中CENPU mRNA 表達比較 GES-1細胞、AGS、MKN45、HGC-27細胞中CENPU mRNA 相對表達量分別為1.00 ± 0.15、1.58 ±0.23、1.79±0.26、2.13±0.32,與GES-1細胞比較,AGS、MKN45、HGC-27 細胞中CENPU mRNA 表達均升高(P均<0.05),且HGC-27 細胞中CENPU mRNA表達最高(P<0.05)。因此選擇HGC-27 細胞進行后續實驗。

2.2 各組HGC-27 細胞增殖情況比較 NG 組、si-CENPU-NC 組、si-CENPU 組HGC-27 細胞增殖抑制率分別為0、(0.32 ± 0.03)%、(18.96 ± 2.87)%,與NG 組、si-CENPU-NC 組比較,si-CENPU 組HGC-27細胞增殖抑制率升高(P均<0.05)。

2.3 各組HGC-27 細胞克隆形成率比較 NG 組、si-CENPU-NC 組、si-CENPU 組HGC-27 細胞克隆形成率分別為(83.27±12.73)%、(85.95±12.89)%、(20.35 ± 3.01)%,與NG 組、si-CENPU-NC 組比較,si-CENPU 組HGC-27 細胞克隆形成率均降低(P均<0.05)。

2.4 各組HGC-27 細胞糖酵解過程關鍵指標水平比較 與NG 組、si-CENPU-NC 組比較,si-CENPU 組HGC-27 細胞GC、LDH、ATP 水平及糖酵解關鍵酶HK、PK水平均降低(P均<0.05)。見表1。

表1 各組HGC-27細胞GC、LDH、ATP、HK、PK水平比較(xˉ±s)

2.5 各組HGC-27 細胞AKT/STAT3 通路蛋白表達比較 NG 組、si-CENPU-NC 組、si-CENPU 組p-AKT/AKT 相對表達量分別為0.56 ± 0.09、0.58 ± 0.08、0.33 ± 0.05,p-STAT3/STAT3 相對表達量分別為0.89±0.13、0.91±0.15、0.52±0.09,與NG 組、si-CENPU-NC 組比較,si-CENPU 組HGC-27 細胞p-AKT/AKT、p-STAT3/STAT3 表達均降低(P均<0.05)。

3 討論

癌細胞有絲分裂是促進腫瘤進展的關鍵因素之一,DNA 在有絲分裂過程中可組裝成大的蛋白質載體即著絲粒,進而為細胞在有絲分裂中提供移動動力。CENPU 是CENP 家族成員之一,可以募集其他CENPs 如CENP-A 等及著絲粒,促進癌細胞分裂[7-8]。王欣欣[9]研究顯示,CENPU 在肺癌組織中異常高表達,且可促進肺癌細胞增殖進而促進腫瘤進展。本研究查閱Ualcan 數據庫(http://ualcan. path. uab.edu/analysis. html)結果顯示,MLF1IP 即CENPU 在胃腺癌組織中異常高表達,基于此本研究分析CENPU 在AGS、MKN45、HGC-27等不同胃癌細胞系中的表達情況。結果顯示,與正常胃上皮細胞GES-1 細胞比較,AGS、MKN45、HGC-27 等胃癌細胞中CENPU mRNA 水平異常高表達,與數據庫中表達趨勢一致,且HGC-27 細胞中CENPU mRNA 水平最高。因此本研究以HGC-27 細胞進行后續實驗,探究下調CENPU表達對胃癌細胞生物學行為及代謝的影響。

腫瘤細胞過度增殖是腫瘤進展關鍵因素[10]。本研究結果顯示,與NG 組、si-CENPU-NC 組比較,si-CENPU 組HGC-27 細胞增殖抑制率升高,克隆形成率降低。說明抑制CENPU表達可能抑制HGC-27細胞增殖。癌細胞異常代謝是癌癥發生發展的主要原因之一,為維持腫瘤細胞生存及滿足大分子合成需要,腫瘤細胞在缺氧或有氧條件下,將其能量代謝方式轉變為糖酵解過程,為滿足癌細胞迅速增殖對能量的需求,癌細胞對葡萄糖的攝取量及消耗量均增加,并產生大量LDH,累積的LDH 可導致酸性微環境,細胞外基質在酸性環境中變得相對不穩定,進而促進癌細胞轉移;此外,在糖酵解過程中有多種限速酶如PK、HK 等,直接影響糖酵解途徑[11-13]。研究表明,糖酵解途徑產生產生的ATP 水解釋放的能量,使著絲粒微管(著絲粒纖維)向細胞紡錘體極端延伸,進而促進細胞有絲分裂[4]。CENPU 是著絲粒蛋白家族成員之一。本研究結果顯示,與NG 組、si-CENPU-NC 組比較,si-CENPU 組HGC-27 細胞GC、LDH、ATP 水平及糖酵解關鍵酶HK、PK 水平均降低。說明抑制CENPU表達可能抑制HGC-27細胞糖酵解過程。

癌細胞的生長和能量代謝過程復雜,AKT/STAT3 通路細胞內重要的信號轉導途徑,在腫瘤中AKT異常活化并發生磷酸化反應生成p-AKT,進而促進下游基因STAT3 活化并發生磷酸化反應生成p-STAT3,調控腫瘤細胞增殖、能量代謝[14-15]。周立強等[16]研究顯示,抑制AKT通路活化可抑制胃癌細胞增殖及糖酵解過程。王勝男等[17]研究顯示,抑制AKT/STAT3通路活化可抑制胃癌細胞增殖并誘導細胞凋亡。本研究結果顯示,與NG 組、si-CENPU-NC 組比較,si-CENPU組HGC-27細胞p-AKT/AKT、p-STAT3/STAT3水平均降低。與既往研究結果一致,說明沉默CENPU表達可抑制HGC-27細胞增殖及糖酵解,可能通過抑制AKT/STAT3通路活化實現。

綜上所述,沉默CENPU 表達可抑制HGC-27 細胞增殖及糖酵解,其機制可能通過抑制AKT/STAT3通路活化實現。

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