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黃芪甲苷上調(diào)miR-199a-5p表達(dá)抑制氧糖剝奪/再灌注誘導(dǎo)的神經(jīng)干細(xì)胞凋亡

2022-06-21 06:49:28李鈺丁文倩李琳許家棟方燕楊琰胡小偉儲利勝

李鈺 丁文倩 李琳 許家棟 方燕 楊琰 胡小偉 儲利勝

浙江中醫(yī)藥大學(xué)基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)院 杭州 310053

缺血性腦卒中是中樞神經(jīng)系統(tǒng)常見疾病,也是成年人致死致殘的主要原因。目前,組織型纖溶酶原激活劑是臨床治療腦缺血的唯一有效藥物,但治療時間窗狹窄和顱內(nèi)出血的風(fēng)險限制了其臨床應(yīng)用[1]。研究表明,內(nèi)源性神經(jīng)發(fā)生或神經(jīng)干細(xì)胞移植可促進(jìn)腦缺血后神經(jīng)修復(fù)和神經(jīng)功能恢復(fù)[2-3],然而腦缺血損傷區(qū)的微環(huán)境導(dǎo)致細(xì)胞大量死亡,限制了其療效[4]。因此,促進(jìn)神經(jīng)干細(xì)胞存活為腦缺血的治療提供了一個有效策略。

黃芪是中醫(yī)臨床治療腦缺血的常用中藥,黃芪甲苷是黃芪的主要有效成分之一。既往研究發(fā)現(xiàn),黃芪甲苷對腦缺血急性期損傷具有保護(hù)作用[5]。最近研究發(fā)現(xiàn),黃芪甲苷能促進(jìn)氧糖剝奪/再灌注(oxygen-glucose deprivation/reperfusion,OGD/R)損傷的神經(jīng)干細(xì)胞增殖和分化[6],增強腦缺血后神經(jīng)發(fā)生和神經(jīng)功能恢復(fù)[7-8],還能促進(jìn)移植的神經(jīng)干細(xì)胞增殖和分化,改善阿爾茨海默病模型大鼠的認(rèn)知能力[9],但具體機制尚不完全清楚。微小核糖核酸(microRNA,miR)是一類長度為19~22個的核苷酸的單鏈非編碼RNA,通過與靶基因mRNA的3’端非翻譯區(qū)不完全或完全互補結(jié)合,抑制mRNA翻譯或使其降解,從而負(fù)性調(diào)控靶基因表達(dá)[10]。近年來研究證實,miRNA調(diào)控神經(jīng)干細(xì)胞增殖、分化、遷移和凋亡等過程[11-12]。 研究發(fā)現(xiàn),miR-199a-5p在腦內(nèi)廣泛表達(dá)[13],腦和脊髓缺血再灌注損傷后miR-199a-5p表達(dá)減少,miR-199a-5p過表達(dá)抑制神經(jīng)細(xì)胞凋亡[14-15]。上述研究提示miR-199a-5p可能介導(dǎo)腦缺血后神經(jīng)干細(xì)胞凋亡。本研究旨在體外觀察黃芪甲苷是否通過上調(diào)miR-199a-5p緩解OGD/R誘導(dǎo)的神經(jīng)干細(xì)胞損傷,為腦缺血后的臨床治療提供指導(dǎo)。

1 材料和方法

1.1 材料

1.1.1 動物 無特定病原體(specific pathogen free,SPF)級孕14 d雌性SD大鼠,購于上海西普爾-必凱實驗動物有限公司[實驗動物生產(chǎn)許可證號:SCXK(滬)2018-0006],飼養(yǎng)于浙江中醫(yī)藥大學(xué)實驗動物中心[實驗動物使用許可證號:SYXK(浙)2018-0012]。飼養(yǎng)環(huán)境溫度(22±1)℃,相對濕度40%~60%,12 h/12 h明暗循環(huán),自由進(jìn)食和飲水。本研究嚴(yán)格按照動物實驗倫理規(guī)范進(jìn)行實驗(倫理審查批準(zhǔn)號:ZSLL-2017-111)。

1.1.2 主要試劑 黃芪甲苷(純度為97.4%)購于中國食品藥品檢定研究院(批號:110781-201616);DMEM/F12培養(yǎng)基購于杭州吉諾生物醫(yī)藥技術(shù)有限公司(批號:17011001);胎牛血清、B-27和表皮生長因子(epidermal growth factor,EGF)均購于美國Gibco公司(批號:1527494、1827407、1745454);堿性成纖維細(xì)胞生長因子(basic fibroblast growth factor,bFGF)購于美國PeproTech公司(批號:1860104);脂質(zhì)體2000購于美國Thermo Fisher Scientific公司 (批號:1854316);Accutase和5-溴脫氧尿嘧啶核苷(5-bromo-2-deoxyuridine,BrdU)均購于美國Sigma公司(批號:SLBS1935V、HMBD8875V);綿羊多克隆BrdU抗體購于美國Abcam公司(批號:GR3380504-2);小鼠單克隆抗體巢蛋白(Nestin)和小鼠單克隆抗體神經(jīng)膠質(zhì)纖維酸性蛋白(glial fibrillary acidic protein,GFAP)均購于美國Santa Cruz公司 (批號:B2515、A2510);兔多克隆抗體神經(jīng)元特異性核蛋白(neuronal nuclei,NeuN)購于美國Millipore公司 (批號:3305071);兔切割型半胱氨酸天冬氨酸蛋白水解酶-3(cleaved caspase-3)多克隆抗體和兔caspase-3多克隆抗體均購于美國Cell Signaling Technology公司(批號:07、08);小鼠甘油醛-3-磷酸脫氫酶(glyceraldehyde-3-phosphate dehydrogenase,GAPDH) 單克隆抗體購于杭州華安生物技術(shù)有限公司(批號:HO0408);異硫氰酸熒光素標(biāo)記磷脂結(jié)合蛋白/碘化丙啶(Annexin-fluorescein isothiocyanate isomer/propidium iodide,Annexin Ⅴ-FITC/PI)細(xì)胞凋亡檢測試劑盒購于美國BD公司(批號:4293719);Trizol試劑購于 德 國 QIAGEN 公 司 (批 號 :55708000);Mir-XTMmiRNA First-Strand Synthesis Kit和SYBR Premix Ex TaqTMⅡ試劑盒購于寶生物工程(大連)有限公司(批號:1701060A、AKA1005);miR-199a-5p拮抗劑和miR-199a-5p拮抗劑對照購于廣州銳博生物科技有限公司(批號:1518697130、111439753)。

1.1.3 主要儀器 4111型二氧化碳培養(yǎng)箱購于美國Thermo Fisher Scientific公司;27310型缺氧小室購于美國Stemcell公司;ELx800型全自動酶標(biāo)儀購于美國Bio-Tech公司;C6型流式細(xì)胞儀為美國BD公司產(chǎn)品;DMIL型倒置熒光顯微鏡購于德國Leica公司;Light-Cycler 96型實時熒光定量聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)(Realtime quantitative polymerase chain reaction,Realtime qPCR)儀為美國Roche公司產(chǎn)品;T100型RNA反轉(zhuǎn)錄儀、PowerPacTMBasic型垂直電泳轉(zhuǎn)膜系統(tǒng)和FluorChem Q型凝膠成像系統(tǒng)均購于美國Bio-Rad公司。

1.2 方法

1.2.1 神經(jīng)干細(xì)胞分離、原代培養(yǎng)與傳代 取14 d胎鼠的大腦皮層,切成1 mm3的組織塊,0.25%胰酶消化15 min,經(jīng)200目篩網(wǎng)過濾,1 000 r/min離心5 min后棄上清液,以神經(jīng)干細(xì)胞完全培養(yǎng)基(DMEM/F12+2%B27+20 ng·mL-1EGF+20 ng·mL-1bFGF+1%青-鏈霉素)重懸,接種于培養(yǎng)瓶中,置于37℃、5%CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng),前3 d每天換液,待神經(jīng)球形成后,2~3 d換液1次。 1周后傳代,每3 d換液1次,每7~8 d傳代1次,將第3~5代細(xì)胞用于后續(xù)實驗。

1.2.2 神經(jīng)干細(xì)胞鑒定

1.2.2.1 神經(jīng)干細(xì)胞標(biāo)志物檢測 將神經(jīng)干細(xì)胞球經(jīng)Accutase消化成單細(xì)胞懸液,以每孔2×104個細(xì)胞的數(shù)量接種到0.1 mg·mL-1多聚賴氨酸包被的96孔板,正常貼壁培養(yǎng)24 h后進(jìn)行后續(xù)實驗。4%多聚甲醛固定30 min,0.1%聚乙二醇辛基苯基醚(Triton X-100)處理細(xì)胞15 min,10%山羊血清封閉1 h,加小鼠Nestin單克隆抗體 (稀釋比例:1∶100),4 ℃孵育過夜,加入FITC標(biāo)記的山羊抗小鼠二抗(稀釋比例:1∶100)孵育1 h,4′,6-二脒基-2-苯基吲哚(4′,6-diamidino-2-phenylindole,DAPI)復(fù)染,封片,倒置熒光顯微鏡下觀察并拍照。每組設(shè)5個平行復(fù)孔,每孔隨機取3個不同視野,對Nestin標(biāo)記細(xì)胞進(jìn)行計數(shù),取平均值作為測量值。

1.2.2.2 神經(jīng)干細(xì)胞增殖特性檢測 以BrdU/Nestin免疫熒光雙標(biāo)染色檢測神經(jīng)干細(xì)胞增殖特性。將神經(jīng)干細(xì)胞以每孔2×104個細(xì)胞的數(shù)量接種于96孔板,在神經(jīng)干細(xì)胞完全培養(yǎng)基中加入終濃度為10 μmol·L-1的BrdU培養(yǎng)24 h。以4%多聚甲醛固定30 min,0.1%Triton X-100破膜15 min,2 mol·L-1氯化氫變性30 min,0.1 mol·L-1硼酸于室溫下中和反應(yīng)10 min,3%過氧化氫滅活內(nèi)源性過氧化物酶20 min,5%驢血清封閉1 h,加入綿羊BrdU多克隆抗體(稀釋比例:1∶200)及鼠Nestin抗體(稀釋比例:1∶100),4 ℃孵育過夜,加Cy3標(biāo)記驢抗綿羊二抗(稀釋比例:1∶100)和FITC標(biāo)記驢抗鼠二抗(稀釋比例:1∶100),37 ℃避光孵育1 h,DAPI復(fù)染,封片,倒置熒光顯微鏡觀察并拍照。每組設(shè)5個平行復(fù)孔,每孔隨機取3個不同視野,對雙標(biāo)記細(xì)胞進(jìn)行計數(shù),取平均值作為測量值。

1.2.2.3 神經(jīng)干細(xì)胞分化能力檢測 以NeuN、GFAP免疫熒光染色檢測神經(jīng)干細(xì)胞分化為神經(jīng)元和星形膠質(zhì)細(xì)胞的情況。神經(jīng)干細(xì)胞用無定向分化培養(yǎng)基(DMEM/F12培養(yǎng)基+1%胎牛血清)培養(yǎng)7 d,4%多聚甲醛固定30 min,0.1%TritonX-100破膜15 min,10%羊血清封閉1 h,加入兔NeuN多克隆抗體(稀釋比例:1∶100)及小鼠GFAP單克隆抗體(稀釋比例:1∶100),4℃避光孵育過夜后,加入FITC標(biāo)記羊抗兔二抗(稀釋比例:1∶100)和Cy3標(biāo)記羊抗小鼠二抗(稀釋比例:1∶100),37 ℃孵育1 h,DAPI復(fù)染,封片,倒置熒光顯微鏡觀察并拍照。每組設(shè)5個平行復(fù)孔,每孔隨機取3個不同視野,細(xì)胞數(shù)計數(shù),取平均值作為測量值。

1.2.3 OGD/R模型的建立 參照文獻(xiàn)[16]中的方法,神經(jīng)干細(xì)胞經(jīng)Accutase消化成單細(xì)胞懸液,以每孔2×104個細(xì)胞的數(shù)量接種于96孔板,培養(yǎng)24 h后將DMEM/F12培養(yǎng)基更換為無糖培養(yǎng)基,并將細(xì)胞置于缺氧小室中,以三元混合氣(94%N2、5%CO2、1%O2)培養(yǎng)8 h,然后更換為正常細(xì)胞培養(yǎng)基,37℃,5%CO2培養(yǎng)箱中繼續(xù)培養(yǎng)72 h。正常對照組采用正常培養(yǎng)基,在37℃,5%CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng)相同時間。

1.2.4 細(xì)胞分組與干預(yù)措施 除正常對照組外,將神經(jīng)干細(xì)胞消化成單細(xì)胞懸液后重懸,并按1×106個/mL的數(shù)量接種于6孔板,分為模型對照組、黃芪甲苷組、黃芪甲苷+miR-199a-5p拮抗劑組(拮抗劑組)、黃芪甲苷+miR-199a-5p拮抗劑對照組 (拮抗劑對照組)。采用脂質(zhì)體2000,將miR-199a-5p拮抗劑及對照轉(zhuǎn)染到神經(jīng)干細(xì)胞,具體方法參照說明書進(jìn)行。轉(zhuǎn)染前1 d,神經(jīng)干細(xì)胞經(jīng)Accutase消化成單細(xì)胞懸液,按1×106個/mL的數(shù)量接種于6孔板,待細(xì)胞融合到70%~80%時轉(zhuǎn)染。 轉(zhuǎn)染前,取4 μL的脂質(zhì)體2000,以96 μL的Opti-MEM培養(yǎng)基稀釋;10 μL拮抗劑或拮抗劑對照以90 μL的Opti-MEM培養(yǎng)基稀釋,然后將兩者混勻,室溫孵育15 min,將混合液加至不含抗生素的完全培養(yǎng)基中,拮抗劑和拮抗劑對照轉(zhuǎn)染濃度均為100 nmol·L-1。 將細(xì)胞放置在37 ℃、5%CO2的培養(yǎng)箱中培養(yǎng)4 h后換液,繼續(xù)培養(yǎng)24 h后,進(jìn)行OGD/R干預(yù),再灌注時加入黃芪甲苷處理72 h。

1.2.5 細(xì)胞活性檢測 采用2-(2-甲氧基-4-硝基苯基)-3-(4-硝基苯基)-5-(2,4-二磺酸苯)-2H-四唑單鈉鹽[2-(2-methoxy-4-nitrophenyl)-3-(4-nitrophenyl)-5-(2,4-disulfonic acid benzene)-2H-tetrazole monosodium salt,CCK-8]法檢測黃芪甲苷對正常神經(jīng)干細(xì)胞活性的影響。神經(jīng)干細(xì)胞以Accutase消化成單細(xì)胞懸液,以每孔2×104個細(xì)胞的數(shù)量接種于96孔板中,每孔100 μL。神經(jīng)干細(xì)胞OGD干預(yù)8 h后,分別加入含0、1、10、25、50、100、200 μmol·L-1黃芪甲苷的正常培養(yǎng)基孵育72 h,每孔加入10 μL CCK-8溶液繼續(xù)培養(yǎng)4 h,酶標(biāo)儀450 nm測定每孔的吸光度值,計算細(xì)胞存活率。細(xì)胞存活率(%)=(各組吸光度值-空白孔吸光度值)/(正常對照組吸光度值-空白孔吸光度值)×100%。每組設(shè)5個平行復(fù)孔。

1.2.6 Annexin Ⅴ-FITC/PI雙染法檢測神經(jīng)干細(xì)胞凋亡 各組細(xì)胞以Accutase消化成單細(xì)胞懸液,并接種于6孔板(數(shù)量為1×106個/mL)中,每組設(shè)3個復(fù)孔,按照試劑盒說明書進(jìn)行操作。4℃預(yù)冷磷酸緩沖鹽溶液(phosphate buffered saline,PBS)洗滌兩次,加入5 μL Annexin Ⅴ-FITC,稍混勻后避光孵育15 min,再加入5 μL PI染液避光孵育5 min,加入300 μL結(jié)合緩沖液混勻,流式細(xì)胞儀檢測細(xì)胞凋亡率。

1.2.7 Real-time qPCR檢測miR-199a-5p基因表達(dá)采用Trizol法提取總RNA,按照Mir-XTMmiRNA First-Strand Synthesis Kit試劑盒說明書進(jìn)行逆轉(zhuǎn)錄,反應(yīng)條件為:37℃ 60 min,85℃ 5 s。按照SYBR Premix Ex TaqTMⅡ 試劑盒說明書進(jìn)行PCR,反應(yīng)條件為:95℃預(yù)變性30 s;95 ℃ 5 s,60 ℃ 30 s,40個循環(huán)。以U6為內(nèi)參,采用2-△△Ct法計算基因相對表達(dá)量。每個樣品設(shè)3個復(fù)孔,引物序列見表1。

表1 引物序列Tab.1 Primer sequence

1.2.8 免疫印跡法檢測caspase-3、cleaved caspase-3蛋白表達(dá) 收集各組細(xì)胞,加入200 μL蛋白裂解液,冰上裂解30 min,4 ℃下12 000 r/min離心15 min,取上清液,二喹啉甲酸(bicinchoninic acid,BCA)法測定總蛋白含量。取20 μg蛋白樣品進(jìn)行凝膠電泳,恒流轉(zhuǎn)膜2 h,常溫下5%牛血清白蛋白(bovine albumin,BSA)封閉2 h,加入兔caspase-3多克隆抗體(稀釋比例:1∶1 000)、兔cleaved caspase-3多克隆抗體(稀釋比例:1∶1 000)和小鼠GAPDH單克隆抗體(稀釋比例:1∶1 000),4℃孵育過夜;洗膜后分別加入羊抗兔辣根過氧化物酶IgG和羊抗鼠辣根過氧化物酶IgG(稀釋比例:1∶5 000),室溫孵育2 h;化學(xué)發(fā)光底物顯色,Bio-Rad成像系統(tǒng)顯影成像,采用Image J軟件分析各條帶的灰度值,結(jié)果用cleaved caspase-3/caspase-3灰度值比值表示。

1.3 統(tǒng)計學(xué)分析 采用SPSS 25.0統(tǒng)計軟件進(jìn)行統(tǒng)計學(xué)分析。計量資料以±s表示。多組樣本均數(shù)之間比較采用單因素方差分析,組間兩兩比較采用Student-Newman-Keuls法。以P<0.05為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。

2 結(jié)果

2.1 神經(jīng)干細(xì)胞的體外培養(yǎng)與鑒定 神經(jīng)干細(xì)胞呈懸浮狀態(tài),聚集成球,中心變暗,折光性好。見圖1A。Nestin免疫熒光染色結(jié)果顯示,神經(jīng)干細(xì)胞陽性率約為98.41%。見圖1B。神經(jīng)干細(xì)胞增殖檢測顯示,BrdU/Nestin陽性細(xì)胞百分比約為17.14%。見圖1C。神經(jīng)干細(xì)胞分化檢測結(jié)果顯示,神經(jīng)干細(xì)胞約19.32%分化為神經(jīng)元(NeuN陽性細(xì)胞),約67.83%分化為星形膠質(zhì)細(xì)胞(GFAP陽性細(xì)胞)。見圖1D。上述結(jié)果提示,所培養(yǎng)的細(xì)胞為神經(jīng)干細(xì)胞。

圖1 神經(jīng)干細(xì)胞的體外培養(yǎng)與鑒定Fig.1 Culture and identification of neural stem cells in vitro

2.2 黃芪甲苷促進(jìn)OGD/R損傷的神經(jīng)干細(xì)胞存活首先評價黃芪甲苷對正常培養(yǎng)的神經(jīng)干細(xì)胞活性影響。黃芪甲苷處理72 h后,與正常對照組比較,黃芪甲苷(1~100 μmol·L-1)干預(yù)后神經(jīng)干細(xì)胞活性差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05),但200 μmol·L-1黃芪甲苷抑制了神經(jīng)干細(xì)胞活性(P<0.01)。 見圖2A。

然后觀察黃芪甲苷對OGD/R損傷的神經(jīng)干細(xì)胞活性的影響。神經(jīng)干細(xì)胞OGD/R處理后,與正常對照組比較,模型對照組神經(jīng)干細(xì)胞活性下降(P<0.01);與模型對照組比較,50 μmol·L-1和100 μmol·L-1黃芪甲苷組 神經(jīng) 干 細(xì)胞 活性 提 高(P<0.01,P<0.05),且50 μmol·L-1黃芪甲苷效果最佳,因此選取該濃度用于后續(xù)實驗。見圖2B。

圖2 黃芪甲苷促進(jìn)OGD/R損傷后神經(jīng)干細(xì)胞的存活Fig.2 Astragaloside Ⅳ promotes the survival of neural stem cells after OGD/R injury

2.3 黃芪甲苷抑制OGD/R誘導(dǎo)的神經(jīng)干細(xì)胞凋亡 流式細(xì)胞術(shù)檢測結(jié)果表明,與正常對照組比較,模型對照組細(xì)胞凋亡率顯著增加(P<0.01);與模型對照組比較,黃芪甲苷組(50 μmol·L-1)處理后神經(jīng)干細(xì)胞凋亡率顯著減少(P<0.01)。 見圖3。 結(jié)果提示,黃芪甲苷抑制OGD/R誘導(dǎo)的神經(jīng)干細(xì)胞凋亡。

圖3 黃芪甲苷抑制OGD/R誘導(dǎo)的神經(jīng)干細(xì)胞凋亡Fig.3 Astragaloside Ⅳ inhibits apoptosis of neural stem cells after OGD/R injury

2.4 黃芪甲苷通過上調(diào)miR-199a-5p促進(jìn)OGD/R損傷的神經(jīng)干細(xì)胞存活 Real-time qPCR結(jié)果提示,與正常對照組比較,模型對照組miR-199a-5p表達(dá)顯著下調(diào)(P<0.01);與模型對照組比較,黃芪甲苷組(50 μmol·L-1)處理后miR-199a-5p表達(dá)顯著上調(diào)(P<0.01)。見圖4A。采用脂質(zhì)體2000將miR-199a-5p拮抗劑轉(zhuǎn)染到神經(jīng)干細(xì)胞,Real-time qPCR結(jié)果提示,神經(jīng)干細(xì)胞miR-199a-5p表達(dá)顯著下降約60.53%(P<0.01)。 見圖4B。

采用CCK-8檢測黃芪甲苷對轉(zhuǎn)染后神經(jīng)干細(xì)胞活性的影響。結(jié)果表明,與正常對照組比較,模型對照組神經(jīng)干細(xì)胞活性顯著降低(P<0.01);與模型對照組比較,黃芪甲苷(50 μmol·L-1)處理后神經(jīng)干細(xì)胞活性顯著升高(P<0.01);與黃芪甲苷組比較,拮抗劑組神經(jīng)干細(xì)胞活性顯著降低(P<0.01);拮抗劑對照組神經(jīng)干細(xì)胞活性與黃芪甲苷組差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05)。 見圖4C。

圖4 黃芪甲苷通過上調(diào)miR-199a-5p促進(jìn)OGD/R損傷的神經(jīng)干細(xì)胞存活Fig.4 Astragaloside Ⅳ promotes the survival of neural stem cells by up-regulating miR-199a-5p after OGD/R injury

2.5 黃芪甲苷通過上調(diào)miR-199a-5p抑制OGD/R誘導(dǎo)的神經(jīng)干細(xì)胞凋亡 流式細(xì)胞術(shù)檢測結(jié)果表明,與正常對照組比較,模型對照組神經(jīng)干細(xì)胞凋亡率顯著增加(P<0.01);與模型對照組比較,黃芪甲苷(50 μmol·L-1) 處理后神經(jīng)干細(xì)胞凋亡率顯著減少(P<0.01);與黃芪甲苷組比較,拮抗劑組神經(jīng)干細(xì)胞凋亡率顯著增加(P<0.01);拮抗劑對照組神經(jīng)干細(xì)胞凋亡率與黃芪甲苷組差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05)。見圖5。

圖5 黃芪甲苷通過上調(diào)miR-199a-5p抑制OGD/R誘導(dǎo)的神經(jīng)干細(xì)胞凋亡Fig.5 Astragaloside Ⅳ inhibits apoptosis of neural stem cells by up-regulating miR-199a-5p after OGD/R injury

2.6 黃芪甲苷下調(diào)OGD/R損傷的神經(jīng)干細(xì)胞cleaved caspase-3蛋白表達(dá) 免疫印跡實驗結(jié)果顯示,各組間caspase-3表達(dá)差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05);與正常對照組比較,模型對照組神經(jīng)干細(xì)胞cleaved caspase-3蛋白表達(dá)顯著增加(P<0.01);與模型對照組比較,黃芪甲苷(50 μmol·L-1)處理后神經(jīng)干細(xì)胞cleaved caspase-3蛋白表達(dá)顯著減少(P<0.01);與黃芪甲苷組比較,拮抗劑組神經(jīng)干細(xì)胞cleaved caspase-3蛋白表達(dá)顯著增加(P<0.01);拮抗劑對照組神經(jīng)干細(xì)胞cleaved caspase-3蛋白表達(dá)與黃芪甲苷組差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05)。 見圖6。

圖6 黃芪甲苷下調(diào)OGD/R損傷的神經(jīng)干細(xì)胞cleaved caspase-3蛋白表達(dá)Fig.6 Astragaloside Ⅳ reduces cleaved caspase-3 protein expression in neural stem cells after OGD/R injury

3 討論

內(nèi)源性神經(jīng)發(fā)生或神經(jīng)干細(xì)胞移植能夠促進(jìn)腦缺血損傷修復(fù)和神經(jīng)功能恢復(fù),但損傷局部微環(huán)境導(dǎo)致大量神經(jīng)干細(xì)胞死亡限制其療效[4]。近年來研究證實,藥物干預(yù)可以促進(jìn)OGD/R損傷的神經(jīng)干細(xì)胞存活,減少其凋亡,如阿伐他汀、黃芪多糖、人參皂苷Rg1和白藜蘆醇能夠促進(jìn)OGD/R損傷的神經(jīng)干細(xì)胞的存活,抑制其凋亡[16-19]。既往研究發(fā)現(xiàn),黃芪甲苷能夠抑制OGD/R損傷的心肌細(xì)胞、PC12細(xì)胞和神經(jīng)元凋亡[20-23]。另有研究報道,黃芪甲苷能夠促進(jìn)OGD/R損傷的神經(jīng)干細(xì)胞增殖分化和整體腦缺血損傷后內(nèi)源性神經(jīng)發(fā)生[6-8]。本研究結(jié)果進(jìn)一步證實,黃芪甲苷促進(jìn)體外OGD/R損傷的神經(jīng)干細(xì)胞存活,抑制其凋亡。

miRNA參與調(diào)控神經(jīng)干細(xì)胞增殖、凋亡、分化和遷移等過程[11-12]。caspase-3是天冬氨酸特異性半胱氨酸蛋白酶caspase家族成員,在凋亡程序的執(zhí)行中起核心作用[24-25]。研究發(fā)現(xiàn),腦和脊髓缺血再灌注損傷后miR-199a-5p表達(dá)顯著減少,上調(diào)miR-199a-5p表達(dá)顯著減少神經(jīng)元凋亡[14-15]。低氧抑制心肌細(xì)胞表達(dá)miR-199a,過表達(dá)miR-199a則能夠減少低氧誘導(dǎo)的心肌細(xì)胞凋亡,抑制caspase-3、caspase-6、caspase-9和caspase-12表達(dá)[26]。骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞外泌體通過轉(zhuǎn)運miR-199a-5p,抑制缺血再灌注損傷誘導(dǎo)的腎小管上皮細(xì)胞凋亡,減少cleaved caspase-3表達(dá)[27]。內(nèi)皮細(xì)胞來源的外泌體通過miR-199a-5p抑制內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激誘導(dǎo)的神經(jīng)細(xì)胞凋亡和炎癥反應(yīng)[28]。上述結(jié)果表明,miR-199a-5p抑制缺血再灌注損傷后細(xì)胞凋亡。研究發(fā)現(xiàn),黃芪甲苷通過下調(diào)miR-23a和miR-92a抑制cleaved-caspase-3表達(dá),減少低氧誘導(dǎo)的心肌細(xì)胞凋亡[23];還可通過抑制miR-124下調(diào)cleaved caspase-3表達(dá),減少低氧誘導(dǎo)的PC12細(xì)胞凋亡[22]。本研究發(fā)現(xiàn),OGD/R處理的神經(jīng)干細(xì)胞miR-199a-5p表達(dá)下降,黃芪甲苷上調(diào)miR-199a-5p表達(dá),促進(jìn)神經(jīng)干細(xì)胞存活、抑制凋亡。轉(zhuǎn)染miR-199a-5p拮抗劑后,黃芪甲苷的保護(hù)效應(yīng)被逆轉(zhuǎn)。這些結(jié)果表明,黃芪甲苷通過上調(diào)miR-199a-5p表達(dá)促進(jìn)OGD/R損傷的神經(jīng)干細(xì)胞存活,抑制其凋亡。

本研究采用體外OGD/R模型模擬整體腦缺血再灌注損傷。結(jié)果發(fā)現(xiàn),OGD/R抑制神經(jīng)干細(xì)胞存活,促進(jìn)其凋亡,減少miR-199a-5p表達(dá);黃芪甲苷促進(jìn)OGD/R損傷的神經(jīng)干細(xì)胞存活,抑制其凋亡,并能上調(diào)miR-199a-5p表達(dá),下調(diào)cleaved caspase-3蛋白表達(dá),而miR-199a-5p拮抗劑則逆轉(zhuǎn)黃芪甲苷的保護(hù)作用。上述結(jié)果表明,黃芪甲苷通過上調(diào)miR-199a-5p表達(dá)抑制OGD/R誘導(dǎo)的神經(jīng)干細(xì)胞損傷。

綜上所述,本研究證實黃芪甲苷促進(jìn)OGD/R損傷的神經(jīng)干細(xì)胞存活、抑制神經(jīng)干細(xì)胞凋亡,機制可能與其上調(diào)miR-199a-5p表達(dá),抑制cleaved caspase-3表達(dá)有關(guān)。但黃芪甲苷上調(diào)miR-199a-5p表達(dá)保護(hù)神經(jīng)干細(xì)胞缺血再灌注損傷的具體機制尚需進(jìn)一步研究。

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