肖惠玲 李艷紅 趙 申 李俊杰 (湖北文理學院附屬醫院,襄陽市中心醫院兒科,襄陽 441000)
支氣管哮喘是一種十分常見的呼吸系統炎癥性疾病,不同患者哮喘嚴重程度差距明顯,目前臨床上用于哮喘治療的藥物主要是糖皮質激素等,部分患者經這些藥物治療后癥狀明顯改善,但有些患者出現激素抵抗,治療效果不佳現象[1]。免疫-炎癥反應、支氣管上皮細胞過度凋亡等是目前公認的哮喘發病機制[2]。近年來,哮喘已被證實是由多種基因調控引起,且分子靶向治療也成為哮喘治療的潛在途徑[3]。miRNA 的長度為20~24 nt,是一種內源性的小分子RNA,沒有編碼蛋白質的作用,其主要通過影響下游靶基因和信號通路發揮作用[4]。miRNA不僅與胚胎發育和機體穩態維持有關,還與炎癥、細胞凋亡、細胞生長、腫瘤等進程關系密切[5]。miR-125b 為miR-125 家族成員,也是miR-125 家族中較為活躍的成員,miR-125b 在腫瘤、腦梗死、阿爾茨海默病等進展中發揮調控作用[6]。既往研究顯示,miR-125b 與哮喘有關,在哮喘患者中發現miR-125b表達下調,且上調miR-125b能夠抑制塵螨誘導的哮喘小鼠氣道炎癥[7]。現階段仍不明確miR-125b在過敏原刺激后支氣管上皮細胞凋亡和炎癥因子分泌中的作用。有研究發現,miR-125b 抵抗骨關節炎軟骨細胞炎癥分泌與下調NF-κB 信號有關[8]。NF-κB 信號通路在人體組織中廣泛存在,是典型的炎癥反應樞紐,其激活能夠誘導下游炎癥因子釋放,促進炎癥反應[9]。另外,NF-κB 還參與調控細胞凋亡過程,是一個多功能信號通路[10]。本實驗以塵螨抗原提取物刺激支氣管上皮細胞系16HBE 進行體外研究,探討miR-125b 在哮喘支氣管上皮細胞凋亡和分泌炎癥因子中的作用和可能機制,為分子靶向治療哮喘提供思路。
1.1 材料 支氣管上皮細胞系16HBE 購自通派(上海)生物科技有限公司;mimics control、miR-125b mimics購自百奧邁科生物技術有限公司;Lipo?fectamine2000 試劑盒購自上海源葉生物科技有限公司;Bax 抗體、p65 抗體購自美國Santa Cruz;Bcl-2抗體購自美國BioVision;IL-29檢測試劑盒購自美國Abcam;IL-6 檢測試劑盒購自美國Cayman Chemical;塵螨抗原提取物(安脫達)購自丹麥ALK-Abello A/S。
1.2 方法
1.2.1 細胞轉染處理 支氣管上皮細胞接種于6 孔板,以不含青鏈霉素的細胞培養液培養,24 h 后觀察細胞密度為80%,轉染mimics control、miR-125b mimics。轉染試劑為Lipofectamine2000,轉染步驟按照轉染試劑說明書進行。支氣管上皮細胞分為Control 組、Model 組、miR-NC 組、miR-125b 組,miR-NC 組、miR-125b 組在用300 U/L 塵螨抗原提取物刺激前轉染mimics control、miR-125b mimics。Control 組、Model 組均為沒有轉染的正常支氣管上皮細胞,Model 組細胞用300 U/L 塵螨抗原提取物刺激。各組細胞培養24 h以后,用于后續實驗檢測。
1.2.2 qRT-PCR 分析miR-125b 表達 在Control組、Model 組、miR-NC 組、miR-125b 組細胞中添加1 ml TRIzol試劑,按照常規方法提取細胞RNA,RNA溶解于0.1%的DEPC 水。以微量紫外分光光度計測定OD260/OD280,分析RNA 的濃度和純度,RNA 置于-80 ℃冰箱內保存。分別在EP 管內添加如下試劑進行cDNA 合成:2μl 5×PrimeScript Buffer、0.5μl PrimeScript RT Enzyme mixⅠ、0.5μl RT引物、300 ng總RNA,最后添加RNAse Free dH2O 至10 μl,cDNA合成條件為:37 ℃15 min,85 ℃5 s,4 ℃1 min。PCR 反應體系為:5 μl SYBR Premix Ex Taq、0.2 μl ROX Reference DyeⅡ、1.0 μl cDNA、0.5 μl 正向引物和反向引物,最后添加ddH2O 至10μl。PCR 儀設置反應程序為:預變性(95 ℃30 s,1 個循環),PCR反應(95 ℃5 s,60 ℃34 s,40 個循環)。根據反應的Ct 值,以2-ΔΔCt法計算miR-125b 的表達變化。miR-125b F:5'-TGAAGAACTGTCCTTACGTGACC-3',miR-125b R:5'-AGAGCACCAAGACTGGCTCT-3';U6 F:5'-TTGGTATCGTGGAAGGACTCA-3',U6 R:5'-TGT?CATCATATTTGGCAGGTT-3'。
1.2.3 流式細胞術分析細胞凋亡 在Control、Model、miR-NC、miR-125b組細胞中加入0.25%的胰蛋白酶消化細胞,1 000 g 離心10 min,棄上清液,添加提前預冷的PBS 溶液洗滌細胞2 次。每組收集1×106個細胞,添加結合緩沖溶液400μl,吸取5μl PI和Annexin V-FITC溶液至細胞中,置于室溫、避光環境中結合15 min。流式細胞儀檢測各組細胞凋亡情況。
1.2.4 ELISA 分析IL-6、IL-29 水平 收集Control、Model、miR-NC、miR-125b組細胞培養液上清,ELISA法檢測上清中IL-6、IL-29 含量,步驟完全參照IL-6、IL-29檢測試劑盒。
1.2.5 Western blot 分析Bax、Bcl-2、p65 蛋白表達變化 在Control、Model、miR-NC、miR-125b 組細胞中加入以1∶99比例添加PMSF后的RIPA溶液,用移液器反復吹打混合后,冰上靜置20 min。收集裂解溶液,以14 000 g 離心10 min,將上清溶液吸取、分裝后置于-80 ℃冰箱中保存。按照BCA 方法檢測蛋白濃度。在蛋白樣品中添加5×SDS-PAGE 緩沖溶液,二者比例為4∶1,100 ℃孵育5 min,冷卻后4 ℃備用。選擇10%的分離膠及4%的濃縮膠進行SDSPAGE 電泳。每個孔中添加30μg蛋白樣品,上層膠采用80 V 電壓電泳20 min,下層膠采用110 V 電壓電泳90 min。根據目的蛋白分子量大小裁剪NC膜,設置300 mA 電流轉膜,轉膜時間為90 min。以TBST 洗滌NC 膜,5 min/次,共洗滌3 次。將NC 膜置于封閉液(5%牛血清白蛋白)中,室溫反應2 h。將NC 膜置于一抗溶液,4 ℃孵育8 h。然后將NC 膜置于二抗溶液,室溫結合2 h。Bax、Bcl-2 一抗按照1∶1 000 稀釋,p65 一抗按照1∶800 稀釋,二抗按照1∶4 000 稀釋。ECL 顯色試劑盒顯色。分析條帶灰度值,以GAPDH 為內參,對目的蛋白表達水平進行半定量分析。
1.2.6 激活NF-κB 信號對miR-125b 調控支氣管上皮細胞凋亡和炎癥因子分泌作用檢測 取轉染miR-125b mimics后的支氣管上皮細胞,用含300 U/L塵螨抗原提取物和1 μmol/L NF-κB 信號激活劑PMA 的細胞培養液刺激24 h,記為miR-125b+PMA組,以miR-125b組為參照,按照1.2.3、1.2.4、1.2.5中流式細胞術、ELISA法、Western blot法分別檢測細胞凋亡和分泌IL-6、IL-29 的水平以及Bax、Bcl-2、p65蛋白表達變化。
1.3 統計學分析 采用SPSS21.0 軟件分析數據,計量資料以±s表示,兩組間數據比較采用t檢驗,多組差異比較采用單因素方差分析,P<0.05為差異有統計學意義。
2.1 miR-125b mimics 對過敏原誘導的支氣管上皮細胞中miR-125b表達的影響 Model組支氣管上皮細胞中miR-125b 表達水平低于Control 組(P<0.05)。miR-125b組支氣管上皮細胞中miR-125b表達水平高于miR-NC 組(P<0.05)。見表1。提示miR-125b mimics 提高過敏原誘導的支氣管上皮細胞中miR-125b表達水平。
表1 miR-125b mimics 轉染后過敏原誘導的支氣管上皮細胞中miR-125b水平(±s)Tab.1 Level of miR-125b in bronchial epithelial cells induced by allergens after miR-125b mimics trans?fection(±s)

表1 miR-125b mimics 轉染后過敏原誘導的支氣管上皮細胞中miR-125b水平(±s)Tab.1 Level of miR-125b in bronchial epithelial cells induced by allergens after miR-125b mimics trans?fection(±s)
Note:Compared with Control group,1)P<0.05;compared with miRNC group,2)P<0.05.
miR-125b level 1.00±0.12 0.43±0.061)0.44±0.04 0.95±0.132)96.296<0.001 Groups Control Model miR-NC miR-125b FP
2.2 上調miR-125b對過敏原誘導的支氣管上皮細胞凋亡的影響 Model 組支氣管上皮細胞凋亡率升高,Bax 蛋白表達增多,Bcl-2 蛋白表達減少,與Con?trol組相比,差異有統計學意義(P<0.05)。miR-125b組支氣管上皮細胞凋亡率降低,Bax 蛋白表達減少,Bcl-2蛋白表達增加,與miR-NC組相比,差異有統計學意義(P<0.05)。見圖1、表2。提示上調miR-125b抑制過敏原誘導的支氣管上皮細胞凋亡。
表2 miR-125b mimics 轉染后過敏原誘導的支氣管上皮細胞凋亡率和Bax、Bcl-2蛋白水平(±s)Tab.2 Allergen-induced apoptosis rate and Bax and Bcl-2 protein levels of bronchial epithelial cells after miR-125b mimics transfection(±s)

表2 miR-125b mimics 轉染后過敏原誘導的支氣管上皮細胞凋亡率和Bax、Bcl-2蛋白水平(±s)Tab.2 Allergen-induced apoptosis rate and Bax and Bcl-2 protein levels of bronchial epithelial cells after miR-125b mimics transfection(±s)
Note:Compared with Control group,1)P<0.05;compared with miR-NC group,2)P<0.05.
Bcl-2 0.65±0.05 0.29±0.041)0.30±0.04 0.38±0.032)154.364<0.001 Groups Control Model miR-NC miR-125b FP Apoptosis rate/%7.52±0.65 26.85±2.111)24.96±2.87 14.21±1.332)201.902<0.001 Bax 0.26±0.03 0.85±0.091)0.87±0.07 0.43±0.042)216.677<0.001

圖1 miR-125b mimics 轉染后過敏原誘導的支氣管上皮細胞凋亡Fig.1 Allergen-induced apoptosis of bronchial epithelial cells after miR-125b mimics transfection
2.3 上調miR-125b 對過敏原誘導的支氣管上皮細胞炎癥因子分泌的影響 Model 組支氣管上皮細胞分泌IL-6、IL-29水平升高,與Control組相比,差異有統計學意義(P<0.05)。miR-125b 組支氣管上皮細胞分泌IL-6、IL-29 減少,與miR-NC 組相比,差異有統計學意義(P<0.05),見表3。提示上調miR-125b抑制過敏原誘導的支氣管上皮細胞分泌IL-6、IL-29。2.4 上調miR-125b 對過敏原誘導的支氣管上皮細胞中NF-κB 信號通路的影響 Model 組支氣管上皮細胞中p65蛋白表達水平升高,與Control組相比,差異有統計學意義(P<0.05)。miR-125b 組支氣管上皮細胞中p65 蛋白表達水平降低,與miR-NC 組相比,差異有統計學意義(P<0.05)。見圖2、表4。提示上調miR-125b 抑制過敏原誘導的支氣管上皮細胞中NF-κB信號激活。
表4 miR-125b mimics 轉染后過敏原誘導的支氣管上皮細胞中p65蛋白水平(±s)Tab.4 Allergen-induced p65 protein level in bronchial epi?thelial cells after miR-125b mimics transfection(±s)

表4 miR-125b mimics 轉染后過敏原誘導的支氣管上皮細胞中p65蛋白水平(±s)Tab.4 Allergen-induced p65 protein level in bronchial epi?thelial cells after miR-125b mimics transfection(±s)
Note:Compared with Control group,1)P<0.05;compared with miRNC group,2)P<0.05.
p65 0.23±0.03 0.58±0.041)0.56±0.07 0.29±0.022)150.923<0.001 Groups Control Model miR-NC miR-125b FP

圖2 Western blot 檢測miR-125b mimics 轉染后過敏原誘導的支氣管上皮細胞中p65蛋白表達水平Fig.2 Western blot detection of p65 protein expression in bronchial epithelial cells induced by allergens after miR-125b mimics transfection
表3 miR-125b mimics 轉染后過敏原誘導的支氣管上皮細胞分泌IL-6、IL-29水平(±s,pg/ml)Tab.3 Allergen-induced IL-6 and IL-29 levels of bronchial epithelial cells after miR-125b mimics transfection(±s,pg/ml)

表3 miR-125b mimics 轉染后過敏原誘導的支氣管上皮細胞分泌IL-6、IL-29水平(±s,pg/ml)Tab.3 Allergen-induced IL-6 and IL-29 levels of bronchial epithelial cells after miR-125b mimics transfection(±s,pg/ml)
Note:Compared with Control group,1)P<0.05;compared with miR-NC group,2)P<0.05.
IL-29 52.69±4.72 169.85±15.481)167.55±16.27 83.74±6.392)223.777<0.001 Groups Control Model miR-NC miR-125b FP IL-6 99.52±10.23 315.24±25.691)310.86±29.97 189.47±14.202)208.955<0.001
2.5 NF-κB 信號激活劑PMA 促進支氣管上皮細胞中NF-κB 信號激活 miR-125b+PMA 組支氣管上皮細胞中p65 蛋白表達水平升高,與miR-125b 組相比,差異有統計學意義(P<0.05)。見圖3、表5。提示NF-κB信號激活劑促進支氣管上皮細胞中NF-κB信號激活。
表5 PMA 處理和miR-125b mimics 轉染后過敏原誘導的支氣管上皮細胞中p65蛋白水平(±s)Tab.5 Levels of p65 protein in bronchial epithelial cells induced by allergens after PMA treatment and miR-125b mimics transfection(±s)

表5 PMA 處理和miR-125b mimics 轉染后過敏原誘導的支氣管上皮細胞中p65蛋白水平(±s)Tab.5 Levels of p65 protein in bronchial epithelial cells induced by allergens after PMA treatment and miR-125b mimics transfection(±s)
Note:Compared with miR-125b group,1)P<0.05.
p65 0.28±0.04 0.63±0.071)13.024<0.001 Groups miR-125b miR-125b+PMA tP

圖3 Western blot檢測miR-125b mimics和PMA對過敏原誘導的支氣管上皮細胞中p65蛋白表達的影響Fig.3 Western blot detection of effect of miR-125b mimics and PMA on expression of p65 protein in bronchial epithelial cells induced by allergens
2.6 NF-κB信號激活劑PMA 對miR-125b影響過敏原誘導的支氣管上皮細胞凋亡和分泌炎癥因子的作用 miR-125b+PMA 組支氣管上皮細胞凋亡率升高,細胞中Bax 蛋白表達增多,Bcl-2 蛋白表達減少,細胞分泌的IL-6、IL-29增多,與miR-125b組相比,差異具有統計學意義(P<0.05),見圖4、表6。提示NF-κB 信號激活劑逆轉miR-125b 影響過敏原誘導的支氣管上皮細胞凋亡和分泌炎癥因子的作用。
表6 PMA 處理和miR-125b mimics 轉染后過敏原誘導的支氣管上皮細胞凋亡率和Bax、Bcl-2 蛋白水平及細胞分泌IL-6、IL-29水平(±s)Tab.6 Allergen-induced bronchial epithelial cell apoptosis,Bax and Bcl-2 protein levels,and cell secretion of IL-6 and IL-29 levels after treatment with PMA and miR-125b mimics transfection(±s)

表6 PMA 處理和miR-125b mimics 轉染后過敏原誘導的支氣管上皮細胞凋亡率和Bax、Bcl-2 蛋白水平及細胞分泌IL-6、IL-29水平(±s)Tab.6 Allergen-induced bronchial epithelial cell apoptosis,Bax and Bcl-2 protein levels,and cell secretion of IL-6 and IL-29 levels after treatment with PMA and miR-125b mimics transfection(±s)
Note:Compared with miR-125b group,1)P<0.05.
IL-29/(pg·ml-1)84.17±6.69 142.01±12.741)12.059<0.001 Groups miR-125b miR-125b+PMA tP Apoptosis rate/%13.56±1.20 22.84±1.651)13.646<0.001 Bax 0.45±0.05 0.75±0.071)10.462<0.001 Bcl-2 0.37±0.04 0.26±0.031)6.600<0.001 IL-6/(pg·ml-1)190.25±15.58 276.39±20.851)9.929<0.001

圖4 miR-125b mimics和PMA對過敏原誘導的支氣管上皮細胞凋亡的影響Fig.4 Effect of miR-125b mimics and PMA on allergeninduced apoptosis of bronchial epithelial cells
哮喘有多種誘導因素,如氣候變化、感染、精神因素、過敏原、藥物等,塵螨是最常見的哮喘氣道炎癥誘導因子,也是氣道高反應性發生的重要原因。塵螨刺激后的支氣管上皮細胞脫落,細胞凋亡水平增加,同時產生大量炎癥因子,這些炎癥因子又可進一步刺激支氣管上皮細胞,加速細胞凋亡[11-12]。IL-29是常見的哮喘炎癥因子,其在哮喘患者中表達上調,IL-29具有促進CD4+T細胞分泌IL-6等炎癥因子的作用,放大單核細胞炎癥反應[13]。IL-6 介導Th1/Th2 及Th17/Treg 平衡,是與哮喘氣道炎癥密切相關的促炎因子[14]。細胞凋亡是一個復雜的過程,是細胞內多種基因經過復雜的調控網絡呈現的最終表現,目前發現的與細胞凋亡有關的蛋白家族主要有Bcl-2等,根據在細胞凋亡中的作用,將Bcl-2蛋白家族中的蛋白成員分為促凋亡蛋白和抗凋亡蛋白,Bax 是Bcl-2 蛋白家族中的促凋亡蛋白,其表達升高后促進細胞凋亡;Bcl-2 是Bcl-2 蛋白家族中的抗凋亡蛋白,其表達升高后抑制細胞凋亡[15-16]。本實驗顯示,塵螨抗原提取物誘導后的支氣管上皮細胞凋亡水平升高,細胞中Bax 蛋白表達增多,Bcl-2蛋白表達減少,細胞分泌的IL-29、IL-6 水平升高,提示塵螨抗原提取物誘導支氣管上皮細胞凋亡和炎癥因子分泌,說明成功構建了體外哮喘支氣管上皮細胞模型。
哮喘的發生受細胞內多種基因的調控,闡明基因在哮喘發生中的作用對于分子靶向治療哮喘具有重要意義[17]。miRNA 是研究較多的非編碼RNA,在人體的不同組織和器官中均有表達,并發揮極為重要的作用,miRNA 在組織中的表達具有時序性、組織特異性,這與miRNA 的功能有關[18]。miR-125b參與腫瘤、心血管系統疾病、關節炎等疾病進程,在人體的不同組織中幾乎均有表達[6,19-20]。既往研究發現,miR-125b 在哮喘患者中表達降低,且可上調miR-125b 抑制塵螨誘導的哮喘小鼠氣道炎癥,改善氣道損傷[7]。本研究發現,塵螨抗原提取物刺激后的支氣管上皮細胞中miR-125b表達水平降低,且可上調miR-125b 表達水平抑制塵螨抗原提取物誘導的支氣管上皮細胞凋亡和IL-29、IL-6 分泌,提示miR-125b 可能具有抑制哮喘支氣管上皮細胞損傷的作用。
NF-κB是在B細胞中發現的一種核因子,NF-κB以二聚體的形式存在于細胞內,p65 是NF-κB 的關鍵亞單位,其表達水平高低與NF-κB 信號激活有關[21]。NF-κB 具有多種作用,如調控細胞生長、凋亡、分化、代謝、炎癥等[22-23]。既往研究發現,NF-κB在哮喘中過度激活,NF-κB激活后誘導炎癥發生,促進細胞凋亡,造成氣道損傷,加重哮喘進程[9,11]。有報道顯示,miR-125b 發揮抗炎作用與下調NF-κB 信號通路有關[8]。本研究發現,塵螨抗原提取物刺激后的支氣管上皮細胞中p65 蛋白表達水平升高,而上調miR-125b 抑制p65 蛋白表達,NF-κB 信號激活劑逆轉miR-125b 對塵螨抗原提取物刺激后的支氣管上皮細胞凋亡和炎癥因子分泌,提示miR-125b通過抑制NF-κB 信號參與哮喘支氣管上皮細胞損傷進程。
綜上所述,miR-125b 可能是哮喘治療的分子靶點,上調miR-125b抑制塵螨抗原提取物誘導的支氣管上皮細胞凋亡和炎癥因子分泌,其機制與下調NF-κB 信號通路有關。目前尚不清楚miR-125b 通過何種具體靶向機制影響NF-κB 信號進而參與哮喘進程,課題組在以后實驗中會進行深入研究。