王喜英 趙輝譚智勇 盧志宏 宋希娟
(銅仁學院,貴州銅仁 554300)
汞(Hg)是一種廣泛存在的金屬污染物,可在大氣中長距離傳輸,并在環境中持續存在或在食物鏈中積累(Lima et al.,2019)。在農業生產中,汞化合物已被用作殺蟲劑、除草劑和殺菌劑,導致土壤產生嚴重的局部汞污染(Bryan &Langston,1992);部分農業措施,如施用化肥、石灰、污泥和肥料等,也是土壤中汞的重要來源(Azevedo &Rodriguez,2012)。汞通過降低植物光合作用、呼吸速率,減少水分、養分吸收以及改變抗氧化酶活性等影響植物代謝(Azevedo &Rodriguez,2012)。在土壤微生物方面,汞會導致蛋白質變性、細胞膜破壞、細胞分裂和酶活性抑制等(Wang et al.,2020a)。研究表明,土壤微生物對重金屬脅迫的反應比植物更敏感(Shuaib et al.,2021)。然而,由于汞的形態不同會導致其溶解性、毒性及生物可利用性發生變化,因此其對土壤微生物群落的影響尚未形成共識(Frossard et al.,2017),有必要開展深入的研究。
相關研究認為,土壤重金屬污染往往伴隨氮元素的匱乏(劉晨 等,2018;孔天樂 等,2020)。生物固氮是指將大氣中的N在固氮微生物的固氮酶作用下轉化為可被植物吸收利用的含氮化合物的過程,是許多陸地和水生生境中氮元素輸入的重要來源(Bellenger et al.,2014)。生物固氮的挖掘和利用,在促進植物生長和影響土壤重金屬活性方面發揮著重要作用(劉晨 等,2018)。固氮酶主要由、和基因編碼(Gaby et al.,2018)。由于序列高度保守,因此被廣泛應用于土壤固氮微生物群落組成及其多樣性研究(楊亞東 等,2017)。由于固氮微生物能夠快速對重金屬污染做出響應,可用作重金屬污染的監測和評估指標(孔天樂 等,2020)。
當前,汞已成為菜地污染最嚴重的重金屬之一(崔曉峰 等,2012)。蔬菜作物中,葉菜類蔬菜吸收重金屬的風險相對其他種類蔬菜更大(Wang et al.,2020b)。普通白菜在我國各地廣泛種植,其對汞的富集作用較強,易對人類健康造成危害(高藝 等,2018)。目前,關于汞的危害研究主要集中在植物生長(劉振京,2019)、酶活性(Zheng et al.,2019)、汞積累(劉忠闖,2016)、土壤養分(Lima et al.,2019)、土壤細菌(Frossard et al.,2017)和真菌(Durand et al.,2020)等方面,而汞對菜地土壤固氮微生物群落結構和豐度的研究鮮見報道。本試驗采用盆栽方式,應用熒光定量PCR和高通量測序(Illumina MiSeq)技術對汞脅迫下普通白菜生長及土壤固氮微生物群落結構、多樣性和基因豐度進行研究,以期揭示固氮微生物對汞脅迫的響應特征,從固氮微生物角度為汞污染土壤監測和生態風險評估提供科學依據。
試驗于2021 年1—5 月在銅仁學院塑料大棚內進行。供試土壤采集于貴州省銅仁市碧江區(109°13′12″E,27°47′30″N)的典型菜地黃壤土。從表層0~20 cm 收集新鮮土壤,去除植物殘體、礫石等,風干后過2 mm 篩。土壤基本理化性質:有機碳(SOC)含量17.05 g·kg,全氮(TN)含量1.63 g·kg,速效鉀(AK)含量46.59 mg ·kg,速效磷(AP)含量16.92 mg·kg,全 汞(THg)含量0.331 mg·kg,pH 值6.56。
供試普通白菜品種為四季小白菜,購自天津市宏豐蔬菜研究有限公司。
以HgCl為汞源,購自銅仁科儀化玻有限公司。
設置4 個汞濃度處理:對照(CK),0 mg ·kg;T1,低濃度,1 mg·kg;T2,中濃度,10 mg ·kg;T3,高濃度,50 mg·kg。每處理3 次重復,每重復1 盆。
分別按比例將汞和過篩土壤混合均勻,裝入高21 cm、上口直徑21 cm 的塑料盆中,每盆裝土5 kg。為保持添加的汞趨于均勻穩定且被土壤充分吸附,土壤老化時間為90 d,期間保持土壤含水量在60%。然后播種普通白菜種子,每盆10 粒,幼苗2片真葉時定苗,每盆留4 株。之后采取常規管理措施,不施用肥料和農藥;為避免水中汞進入,均采用蒸餾水澆灌,土壤含水量保持60%。
普通白菜生長60 d 后采收,所有植株均用去離子水沖洗干凈,用濾紙吸干表面水分,用于測定生長指標。然后,在普通白菜根系附近選擇3 點進行土壤取樣,混合成1 個土樣,取樣量為0.5 kg,去除植物根系并過2 mm 篩后分成2 份,1 份用于銨態氮(NH-N)和硝態氮(NO-N)含量測定,余下部分室內風干后用于土壤全汞含量和基礎理化指標測定;1 份保存于-20 ℃冰箱,用于土壤微生物DNA 提取。
1.3.1 普通白菜生長指標測定 使用去離子水將植株根系附著的土壤清洗干凈,然后用濾紙吸干水分,利用卷尺和電子天平測定植株的株高、根長、單株鮮質量,取平均值。
1.3.2 土壤全汞含量和基礎理化指標測定 全汞含量測定采用王水水浴消解-冷原子吸收光譜法(李仲根 等,2005);pH 測定采用電位法,有機碳含量測定采用重鉻酸鉀氧化法,全氮含量測定采用凱氏定氮法,速效磷含量測定采用碳酸氫鈉浸提-鉬銻抗比色法,速效鉀含量測定采用乙酸銨提取-火焰光度法,銨態氮含量測定采用靛酚藍比色法,硝態氮含量測定采用酚二磺酸比色法(鮑士旦,2000)。
1.3.3 土壤微生物DNA 提取及基因豐度測定采用DNA提取試劑盒(Omega,GA,USA)提取土壤微生物DNA。利用核酸定量儀(NanoDrop ND-2000)對DNA 濃度和純度進行檢測。熒光定量PCR 在ABI7500 熒光定量PCR 儀(ABI,CA,USA)上進行,擴增引物為-F:5′-AAAGGYGGWATCGGYAARTCCACCAC-3′和-R:5′-TTGTTSGCSGCRTACATSGCCAT CAT-3′(R?sch et al.,2002)。反應體系為:2× SYBR real-time PCR premixture(Bioteke,Beijing)10 μL,上、下游引物(10 μmol·L)各0.8 μL,DNA模板2 μL(1~10 ng),ddHO 補至20 μL。反應條件為:94 ℃ 5 min;95 ℃ 30 s,58 ℃ 30 s,72 ℃30 s,40 個循環。利用Poly 等(2001)的方法,獲得含有基因的重組質粒,分別以10 倍梯度稀釋基因重組質粒得到標準曲線,并根據標準曲線計算基因豐度。
1.3.4 固氮微生物高通量測序 采用引物-F與-R 對固氮微生物基因進行PCR 擴增。反應體系為:5× ExTaq 緩沖液5.0 μL,dNPT(2.5 μmol·L)2.0 μL,上、下游引物(10 μmol·L)各1.0 μL,DNA 模板2.0 μL(1~10 ng),ExTaq(5 U·μL)0.25 μL,ddHO 補至25 μL。反 應條件為:95 ℃ 5 min;94 ℃ 30 s,58 ℃ 30 s,72 ℃ 30 s,30 個循環;72 ℃ 7 min。采用1%瓊脂糖凝膠電泳檢測。PCR 產物送至上海派森諾生物科技股份有限公司,運用Illumina MiSeq 測序平臺進行測序。
利用FLASH 軟件對通過質量初篩的雙端序列根據重疊堿基進行配對連接,從而獲得每個樣本的有效序列。通過QIIME 軟件調用USEARCH 檢查并剔除嵌合體序列。將優質序列聚類成操作分類單元(operational taxonomic unit,OTU),閾值設置為97%,并選取每個OTU 中豐度最高的序列作為該OTU 的代表序列。應用RDP-classifier 在GenBank中對OTU 進行分類注釋,統計各樣本在門和屬水平上的群落組成;使用QIIME 軟件,對固氮微生物α 多樣性指數進行計算。
采用SPSS 25.0 統計軟件對試驗數據進行方差分析和顯著性檢驗(<0.05)。利用R 軟件進行土壤固氮微生物群落主坐標分析(principal coordinates analysis,PCoA)和冗余分析(redundancy analysis,RDA)。
從表1 可以看出,隨著汞濃度的增加,普通白菜株高、根長、單株鮮質量均呈先增加后降低的變化趨勢。其中,T1 處理的株高、根長、單株鮮質量均最高,但與T2 處理及對照間差異不顯著;而T3 處理的各指標均顯著低于T1、T2 處理及對照。表明,低濃度汞對普通白菜生長有促進作用,中、高濃度汞表現抑制作用,且汞濃度越高抑制作用越強。

表1 不同汞濃度對普通白菜生長指標的影響
從表2 可以看出,隨著汞濃度的增加,土壤中全汞含量呈上升趨勢,T2、T3 處理與T1 處理及對照間差異顯著;全氮和銨態氮含量也呈遞增趨勢,而硝態氮含量呈遞減趨勢,T2、T3 處理與對照間差異顯著;pH 值先降低后升高,且趨于中性,T3處理顯著高于T1、T2 處理及對照。汞脅迫下,速效磷、速效鉀含量及C/N 值均降低,各濃度汞處理均低于對照。T3 處理的有機碳含量顯著高于T1、T2 處理及對照。

表2 不同汞濃度對土壤理化指標和全汞含量的影響
由圖1 可知,不同汞濃度處理的固氮微生物基因豐度變化范圍為4.40 × 10~7.91 × 10個·g(干土),表現為T1 > CK > T2 > T3,T3 處理顯著低于T1、T2 處理及對照,分別降低了44.33%、40.09%、43.76%。可見,高濃度汞脅迫對固氮微生物基因豐度有顯著抑制作用。

圖1 不同汞濃度對固氮微生物nifH 基因豐度的影響
為明確汞脅迫下固氮微生物基因豐度的影響因素,將其與土壤理化指標、全汞含量及普通白菜生長指標進行相關性分析。結果表明(圖2),基因豐度與pH、銨態氮含量、全汞含量呈極顯著負相關關系,與有機碳含量呈顯著負相關關系,與硝態氮含量、單株鮮質量、株高、根長呈極顯著正相關關系。可知,普通白菜生長對固氮微生物數量有極顯著的促進作用。

圖2 固氮微生物群落α 多樣性指數、nifH 基因豐度與土壤理化指標、全汞含量及普通白菜生長指標的相關性
利用Illumina MiSeq 平臺對土壤固氮微生物測序分析可知(表3),土壤固氮微生物覆蓋率均在99%以上,說明該測序結果能夠真實地反映土壤樣品中固氮微生物群落特征。T1、T2 處理的有效序列數目顯著高于T3 處理,但均與對照差異不顯著。隨著汞濃度的增加,土壤固氮微生物OTU 數量表現先增加后減少的變化趨勢,T3 處理顯著低于T1 處理及對照。說明,高濃度的汞脅迫顯著改變了固氮微生物OTU 水平上的物種組成。

表3 不同汞濃度對固氮微生物高通量測序結果及α 多樣性指數的影響
Chao1 指數和ACE 指數變化趨勢一致,均為T1 處理最大,分別為2 020.66 和1 589.80,且均顯著高于T2、T3 處理。隨著汞濃度的增加,Shannon指數和Simpson 指數均呈現遞減趨勢,T3 處理顯著低于T1、T2 處理及對照,分別下降了7.8%和2.9%、6.9%和2.6%、8.1%和3.1%。說明,低濃度汞脅迫對土壤固氮微生物群落豐富度有促進作用,而高濃度汞脅迫對固氮微生物群落豐富度和多樣性有明顯的抑制作用。
由圖2 可知,土壤固氮微生物ACE 指數、Shannon 指數、Simpson 指數分別與pH、銨態氮含量呈極顯著負相關關系,與硝態氮含量呈極顯著正相關關系;Shannon 指數、Simpson 指數分別與有機碳含量、全汞含量呈極顯著負相關關系,與速效鉀含量、株高、根長呈極顯著正相關關系;Shannon指數與單株鮮質量呈顯著正相關關系;Simpson 指數與單株鮮質量呈極顯著正相關關系;ACE 指數與全汞含量呈顯著負相關關系,與根長呈顯著正相關關系;Chao1 指數與pH、銨態氮含量呈顯著負相關關系,與硝態氮含量呈顯著正相關關系。
通過對汞脅迫下土壤樣品OTUs 進行歸類,得到8 個門、16 個綱、26 個目、48 個科和59 個屬。在門水平上,將平均相對豐度< 0.1%的類群歸類為其他,得到4 個類群(圖3-a),分別為變形菌門(Proteobacteria)、厚壁菌門(Firmicutes)、藍藻門(Cyanobacteria)和放線菌門(Actinobacteria),其中變形菌門和厚壁菌門不同汞濃度處理間差異極顯著,藍藻門和放線菌門相對豐度可忽略不計。變形菌門(90.71%~93.21%)和厚壁菌門(3.26%~4.64%)為優勢菌門,占固氮微生物總類群相對豐度的95.35%~96.50%。變形菌門的相對豐度隨汞濃度的增加呈先增加后降低的變化趨勢,T3 處理最低,與T1、T2 處理及對照間差異顯著;而厚壁菌門的相對豐度表現為隨汞濃度的增加而增加,T3 處理最高,分別比T1、T2 處理增加了1.38和1.22 百分點。
在屬水平上,得到相對豐度在1% 以上的12 個類群(圖3-b),分別為慢生根瘤菌屬()、固氮螺菌屬()、地桿菌屬()、根瘤菌屬()、外紅硫螺菌屬()、甲基單胞菌屬()、甲基孢囊菌屬()、、甲基彎曲菌屬()、、和脫硫弧菌屬()。其中慢生根瘤菌屬、固氮螺菌屬、地桿菌屬和根瘤菌屬為優勢類群,相對豐度分別為29.12%~43.16%、6.76%~10.24%、6.20%~7.40%和4.44%~7.49%。慢生根瘤菌屬的相對豐度隨汞濃度的增加而逐漸遞增,T3 處理最高(43.16%),極顯著高于T1、T2 處理及對照,分別是T1、T2處理及對照的1.45、1.21、1.48 倍;汞脅迫對固氮螺菌屬的相對豐度表現為抑制作用,隨汞濃度的增加其相對豐度逐漸降低,T3 處理最低(6.76%),顯著低于T1、T2 處理及對照;地桿菌屬和根瘤菌屬的相對豐度均以T1 處理最高(7.41%和7.49%),而后隨汞濃度的增加而降低,且T2、T3處理間差異顯著。說明,汞脅迫對慢生根瘤菌屬有促進作用,而對固氮螺菌屬表現抑制作用;低濃度汞對地桿菌屬和根瘤菌屬有促進作用,而高濃度汞則表現為顯著抑制作用。

圖3 不同汞濃度下固氮微生物門(a)和屬(b)水平群落組成
通過層次聚類分析可知(圖4-a),不同濃度汞處理的固氮微生物群落結構差異明顯,T1 和T3處理3 次重復聚類較好;其中,T3 處理與對照、T1 處理與T3 處理間距離較遠。PCoA 分析進一步證實了汞脅迫下土壤固氮微生物群落結構的明顯差異(圖4-b)。PCoA1 和PCoA2 對土壤固氮微生物群落結構變異的解釋量分別為33.2%和12.6%。對照、T1 和T2 處理的距離較近,說明這3 個處理之間固氮微生物群落結構相似度較高;T3 處理與其他處理間距離較遠,說明高濃度汞處理對固氮微生物群落結構影響較大。

圖4 不同汞濃度下固氮微生物群落結構的層次聚類樹(a)和PCoA 分析結果(b)
屬水平上固氮微生物群落結構與土壤理化指標的冗余分析(RDA)結果表明(圖5),RDA1和RDA2 分別解釋了固氮微生物群落結構變異的63.40%和14.68%,共解釋了總變異的78.08%。土壤pH、銨態氮含量、硝態氮含量和全汞含量對土壤固氮微生物群落結構有極顯著影響,有機碳含量和速效鉀含量對固氮微生物群落結構有顯著影響。

圖5 屬水平上固氮微生物群落結構與土壤理化指標的冗余分析結果
前人研究表明,土壤養分、重金屬和植物類型等都會影響固氮微生物豐度和群落多樣性(王磊 等,2020;Yu et al.,2020)。本試驗中,土壤pH、有機碳含量、銨態氮含量、硝態氮含量和全汞含量對固氮微生物基因豐度和群落多樣性有顯著影響;其中,pH 與基因豐度和群落多樣性指數呈顯著或極顯著負相關關系,與Wang 等(2017a)的研究結果一致。Lin 等(2018)研究認為,酸性土壤pH 增加會抑制固氮微生物生長,導致基因豐度和群落多樣性指數降低。低濃度汞處理的普通白菜生長較好,可能是根系分泌的化感物質在土壤中積累,使土壤pH 值降低導致的。鐵是固氮過程中許多蛋白質合成所需的重要輔助因子,在酸性土壤中鐵的利用率隨土壤pH 值的增加而降低(Shuman,1998)。因此,在重金屬汞脅迫下土壤pH 值增加可能間接對固氮微生物生長有抑制作用,導致固氮微生物群落α 多樣性指數(T1 處理除外)隨汞濃度增加而減少。高濃度汞處理的土壤有機碳含量和銨態氮含量顯著增加,進而導致固氮微生物豐度和多樣性顯著降低,這可能是由于汞脅迫造成土壤固氮微生物死亡或群落減少,植株生長緩慢,對土壤養分的吸收利用較少。
本試驗結果表明,全汞含量與固氮微生物基因豐度呈極顯著負相關,重金屬可能嚴重影響稀有和敏感物種以降低其競爭能力,同時重金屬脅迫也誘導活性氧產生,抑制固氮微生物生長(Volkov et al.,2006)。Gans 等(2005)研究表明,在重金屬作用下固氮微生物中某些敏感物種競爭能力下降,導致固氮微生物豐度下降。Yin 等(2018)也認為,重金屬與固氮微生物基因豐度呈顯著負相關,重金屬濃度過高會抑制固氮微生物生長。而本試驗中,低濃度汞處理的固氮微生物基因豐度高于中、高濃度汞處理及對照,這可能與一些固氮微生物存在汞抗性有關。微生物可以耐受低濃度的重金屬,這主要是因為重金屬離子從細胞中流出(Nies,1999),能夠適應重金屬脅迫的微生物占據重要的生態位。因此,在低濃度汞處理時某些耐汞固氮微生物的豐度可能增加。高濃度汞處理的固氮微生物基因豐度顯著下降,表明營養限制和汞毒性對固氮微生物產生了影響。Chodak等(2013)研究認為,重金屬含量對土壤固氮微生物群落α 多樣性指數有顯著影響。本試驗中,低濃度汞對固氮微生物群落豐富度有促進作用,高濃度汞對固氮微生物群落豐富度和多樣性均表現抑制作用。其中,汞對固氮微生物群落豐富度的影響較明顯,汞濃度越高影響越大,與Zhu 等(2021)的研究結果一致。在低濃度汞脅迫下,通過競爭性釋放次級微生物類群增加了微生物群落豐富度(Liu et al.,2018)。Sun 等(2020)研究認為,在重金屬高度污染的地區,缺乏氮等養分會導致固氮微生物富集。Das 等(2013)研究認為,重金屬濃度較高會顯著抑制植物生長,與本試驗結果一致。植物生長旺盛,根系分泌物多,有利于固氮微生物生長和群落多樣性增加(楊亞東 等,2017)。本試驗中,低濃度汞處理的普通白菜生長較快,根系長,原因可能是其根系分泌物較多,對固氮微生物生長有促進作用,改善了固氮微生物群落多樣性。
土壤生態系統中高濃度重金屬污染對微生物群落有顯著影響(Zhang et al.,2016)。不同濃度重金屬脅迫可能對固氮微生物類群施加不同的壓力,導致固氮微生物群落組成的相對豐度顯著下降(金屬敏感物種)或上升(金屬抗性物種)(Liu et al.,2014)。
本試驗中,門水平上固氮微生物優勢類群以變形菌門和厚壁菌門為主,其次是藍藻門和放線菌門,與Yin 等(2018)的研究結果相似。變形菌門能夠將大氣中的氮固定為易于獲得的形式,以供植物生長,其廣泛存在于各種環境中,且高度多樣化(Chen et al.,2019)。前人研究表明,在加拿大安大略省北部的鎳、銅礦區,斯洛伐克西南部的鎳、鈷和鋅礦區,變形菌門均為主要微生物類 群(Karelová et al.,2011;Narendrula-Kotha &Nkongolo,2017)。本試驗中,變形菌門的相對豐度在對照、低和中濃度汞處理間差異不顯著,但均顯著高于高濃度汞處理。說明變形菌門對重金屬汞脅迫具有一定的耐受性,但超出適應的閾值則導致其數量減少或者死亡。關于變形菌門對汞的耐受能力,相關研究認為變形菌門含有抗性基因,可將汞離子還原為元素汞(M?ller et al.,2014);微生物的活細胞或死細胞可以吸附汞,降低汞毒害(Fran?ois et al.,2012);通過外排系統擠出重金屬離子,通過含硫醇分子進行分離以及將其還原為低毒性的氧化狀態(Harichová et al.,2012)。厚壁菌門可生活在極端環境中,可修復廣譜重金屬污染,通過分泌有害物質干擾植物氮代謝,抑制植物正常生長(Karelová et al.,2011)。高濃度汞處理的厚壁菌門相對豐度顯著高于低、中濃度汞處理及對照,這可能也是致使普通白菜生長緩慢的一個因素。
慢生根瘤菌屬是分布廣泛的固氮微生物類群,為寡營養細菌,在營養缺乏的條件下也能存活,具有較高的耐汞性(Salmi &Boulila,2021)。隨著汞濃度的增加,慢生根瘤菌屬相對豐度逐漸增加,這可能是由于慢生根瘤菌屬可以產生高水平的胞外多糖,能夠捕獲重金屬離子和阻止它們進入細胞(Dhakephalkar &Chopade,1994)。固氮螺菌屬對植物的生長有積極影響,可促進新根形成,增加植株干質量,但對汞污染敏感(Widawati &Suliasih,2019)。隨著汞濃度的增加,固氮螺菌屬相對豐度逐漸降低,說明汞脅迫對固氮螺菌屬生長具有抑制作用。其中,T3 處理固氮螺菌屬相對豐度最低,可能是由于普通白菜生長緩慢,通過根系釋放的分泌物較少,不利于固氮螺菌屬生長。根瘤菌屬是高濃度汞污染土壤中的生物標志物,可以耐受一定濃度的汞脅迫(6 mg·kg),對鎳和鋅等潛在的有毒重金屬也具有一定的抗性和解毒能力(Zhu et al.,2021)。低濃度汞處理的根瘤菌屬相對豐度高于中、高濃度汞處理,這可能是因為中、高汞濃度超出了該類群的生態閾值。
Zhan 和Sun(2012)研究表明,重金屬污染土壤氮含量對固氮微生物群落有重要影響,其中銨態氮和硝態氮含量是影響土壤固氮微生物群落結構的最主要因素(Wang et al.,2017b),與本試驗結果一致。本試驗中,土壤pH 是固氮微生物群落發生變化的主要因素之一。因為土壤pH 與固氮微生物對土壤養分的吸收和利用密切相關,故可通過調節土壤酸堿度來影響固氮微生物群落(Wang et al.,2010)。
本試驗結果表明,汞污染不僅影響植物生長,還影響參與固氮的微生物類群。低濃度汞對普通白菜株高、根長、單株鮮質量均表現促進作用,而中、高濃度汞則表現抑制作用。隨著汞濃度增加,固氮微生物基因豐度、物種豐富度和多樣性指數均呈先增加后下降的變化趨勢。在門水平上,變形菌門和厚壁菌門為優勢類群;在屬水平上,慢生根瘤菌屬、固氮螺菌屬、地桿菌屬和根瘤菌屬為優勢類群。高濃度汞對變形菌門及固氮螺菌屬、地桿菌屬、根瘤菌屬的相對豐度有抑制作用,對厚壁菌門及慢生根瘤菌屬相對豐度有促進作用。土壤pH、銨態氮含量、硝態氮含量及全汞含量對土壤固氮微生物群落結構均有極顯著影響,有機碳含量和速效鉀含量對固氮微生物群落結構有顯著影響。汞脅迫通過影響普通白菜生長、土壤pH 及銨態氮、硝態氮、有機碳、速效鉀含量變化,導致固氮微生物群落結構發生變化。