999精品在线视频,手机成人午夜在线视频,久久不卡国产精品无码,中日无码在线观看,成人av手机在线观看,日韩精品亚洲一区中文字幕,亚洲av无码人妻,四虎国产在线观看 ?

CDKN2A 基因突變與腎細胞癌藥物敏感性和預后的關系

2022-09-26 08:35:28李松李瑞杰2趙小磊
醫學信息 2022年16期
關鍵詞:數據庫信號分析

腎透明細胞癌(kidney renal clear cell carcinoma)是泌尿系統腎細胞癌的一個獨特亞型,根治性切除是腎細胞癌的主要治療方法,其次是化療和靶向治療。然而,即使手術治療成功,仍有30%的患者可能出現腫瘤復發或遠處轉移

。不同基因突變的患者可能對不同的藥物治療產生耐藥性,因此對不同基因突變的患者進行個體化治療更為重要

。因此,確定腎細胞癌進展和預后的潛在生物標志物和潛在相關分子機制是必要的,尋找潛在相關的靶向藥物對于個體化治療至關重要。Xu J等

研究證實,CDKN2A 啟動子甲基化發生在支氣管細胞癌變的早期。Hayashi T等

研究了胃癌患者的腫瘤組織,發現CDKN2A的失活通常是由5'CpG 島的純合缺失和高甲基化引起的,這在胃癌的發生發展中起著重要作用。Wang L等

發現,在77 例平滑肌肉瘤患者中,22%的患者存在CDKN2A 基因啟動子高甲基化,表明CDKN2A 啟動子高甲基化及其蛋白表達缺失與預后不良密切相關。然而,CDKN2A 在腎細胞癌中的作用尚不確定

。CDKN2A 突變狀態可能影響某些腎細胞癌患者的病情進展和治療。因此,探索CDKN2A 突變患者的一些相關信號通路將有助于進一步了解腎細胞癌進展的分子水平機制,并為患者的個體化治療策略提供指導。為了探索腎細胞癌預后和個體化治療反應的機制,本研究對腎細胞癌的RNA 測序數據集以分析基因突變,研究泛癌和腎細胞癌中CDKN2A 突變的藥物敏感性。

1 資料與方法

1.1 數據來源 從在線探索工具TCGA 數據庫下載(http://xena.ucsc.edu/)腎細胞癌基因表達譜(使用AgilentG4502A_07_3的腎細胞癌RNA 表達和突變基因)和臨床信息。采用開源網絡工具cBioPortal 分析Kaplan-Meier 圖和CDKN2A 突變(http://www.cbioportal.org/index.do)。BioPortal 數據庫(http://www.cbioportal.org)整合了各種基因數據類型,包括TCGA、UCSC、GDAC 等,從cBioPortal 數據庫獲得600份腎細胞癌樣本,通過數據庫篩選選項,提取患者相關資料,篩選條件:①“Cancer Type:KIRC”;②“Gene:CDKN2A”;③“Data Type:mRNA”。應用survival 選項分析600 份樣本中CDKN2A 突變情況與生存時間(總體生存和無疾病生存)關系圖,對3 種不同腎細胞癌研究中突變類型的mRNA 表達進行比較。

Is the Italian restaurant nearby open on Mondays?(這附近的意大利餐館星期一營業嗎?)

1.2 GDSC 數據庫分析 癌癥藥物敏感性基因組學數據庫(GDSC)(https://www.cancerrxgene.org/)是癌癥臨床研究中最常用的數據庫之一,收集了大量關于腫瘤細胞藥物敏感性的信息,進入數據庫所有藥物的界面,將“CDKN2A”數據集數據與化合物敏感性相關聯,查看泛癌和腎細胞癌中CDKN2A 突變在藥物的細胞系IC

圖,并繪制和生成與相應藥物敏感性的火山圖和散點圖。

1.3 基因集富集分析 基因集富集分析(GSEA)用于評估按表型相關性排序的基因列表中預定義基因集中的基因分布,以確定它們對表型的作用(http://software.org/gsea/下載.jsp)。應用分子特征數據庫(MSigDB),基于標稱

值和標準化富集分數(NES)分析路徑富集。根據CDKN2A 基因表達量分為兩組,通過GSEA4.1.0 分析CENPF 基因表達水平對各種生物通路基因集的影響,按照默認富集加權統計方法,選擇MSigDB 數據庫的基因集(c2.cp.kegg.v7.2.symbols.gmt)作為參照基因集,置換次數為1000 次,計算基因富集得分(enrichment score,ES)。

1.5 統計學方法 采用Wilcoxon 試驗比較突變型和野生型之間的CDKN2A mRNA 表達水平;采用Kaplan-Meier 法和Log rank 檢驗,通過Graphpad 計算不同CDKN2A 組之間的臨床結果;edgeR 和GSEA中的FDR 分別采用Benjamini-Hochberg 程序進行多次試驗調整,以控制FDR。

<0.05 被認為差異有統計學意義。

1.4 差異基因(DEGs)的鑒定與富集分析 使用R軟件包在微陣列數據中選擇-Log

value)>2 且∣Log

(fold change)∣<1的DEGs。由DAVID(http://david.ncifcrf.gov)對DEGs 進行KEGG 途徑和GO 富集分析,其中FDR<0.05,-LogFDR>1.302的前幾個通路被認為是顯著的。

2 結果

淀南新堤分洪工程位于劉李莊鎮辛莊,口門長400m。堤身素填土由壤土、砂壤土及黏土填筑而成,堤基下土體巖性為第四系全新統沖洪積的壤土及砂壤土,不良地質現象,口門地基工程地質條件較好。

2.2 CDKN2A 基因突變對腎細胞癌患者預后和藥物敏感性的影響 腎細胞癌患者的臨床特征見表1,生存分析顯示,具有CDKN2A 突變的腎細胞癌患者總體生存率和無病生存率較差(圖3),在泛癌和腎細胞癌中,CDKN2A 突變型可能比野生型增加對Tenovin-6 等藥物的耐藥性,并且Tenovin-6 對各種癌癥和腎細胞癌中的野生型具有選擇性(圖4)。

2.1 腎細胞癌中的CDKN2A 表達及突變 600 例腎細胞癌樣本中有5.00%的CDKN2A 突變病例,其余為野生型(圖1A)。CDKN2A 在腎細胞癌中的突變類型包括亞基突變、錯義突變、截斷突變和跨越整個基因的深度缺失(圖1B)。其中,3.00%為深度缺失,2.00%為錯義突變、截斷突變和inframe 突變(圖2A)。CDKN2A 突變類型為深度缺失的mRNA 表達低于野生型(圖2B);與突變型相比,野生型的CDKN2A 表達較高(圖2C);CDKN2A 在腎細胞癌中的表達高于正常腎組織。

無論是種間還是種內,核型之間存在一定的區別和聯系。例如,同一物種不同倍性水平的材料進行核型分析,與二倍體相比,同源四倍體不結球白菜染色體變異范圍稍大些[14]。另外,試驗過程中會出現細胞染色體數目與基數存在差異的現象,造成的原因可能是在染色體制片、配對與數據分析過程中,由于分析技術不同或某些人為因素導致,例如,鏡檢時染色體易發生重疊或者多個細胞染色體組合在一起等問題,都會造成細胞染色體數目不同,標本的取樣數量、時間和地點等也可能是重要的誤差源。

2.3 基于GSEA的CDKN2A 突變信號通路分析GSEA 分析顯示,CDKN2A 突變信號通路主要富集在Wnt-catenin 信號、泛素介導的蛋白水解、緊密連接、TGF-β 信號、磷脂酰肌醇信號、erbb 信號和粘附連接(圖5)。2.4 DEGs的鑒定和富集分析 共有350 個基因被鑒定為DEGs,包括170 個下調基因和180 個上調基因。DEGs的火山圖見圖6A。使用DAVID 對DEGs進行富集分析,GO 分析結果表明,DEGs 主要富集于RNA 聚合酶Ⅱ啟動子、轉錄、細胞核、細胞質、轉錄因子復合物和序列特異性DNA 結合的轉錄負調控,見圖6B。KEGG 通路分析顯示,DEGs 主要富集于細胞周期、癌癥、慢性髓系白血病、癌癥中的microRNA 和p53 信號通路,見圖6C。

3 討論

CDKN2A 在各種腫瘤的惡性轉化中突變類型包括純合缺失(HD)、雜合性缺失(LOH)、p16INK4a/p14ARF 基因啟動子的突變和異常甲基化

。Ibrahim I等

研究了肺癌、卵巢癌和頭頸部鱗狀細胞癌的89 個細胞系中246 個位點的純合缺失,發現CDKN2A 基因的純合缺失最常見(26%),且與疾病預后的關系不同。本研究發現,腎細胞中約5.00%的患者攜帶CDKN2A 突變,包括亞基突變、錯義突變、截斷突變和跨越整個基因的深度缺失,其中3.00%為深度缺失,2.00%為錯義突變、截斷突變和近端突變。Thompson ED等

發現,CDKN2A的總突變率為93.3%,啟動子異常甲基化占46.7%,純合缺失占36.7%,突變占13.3%。

CDKN2A 基因位于染色體9p21 上,受調控的CDKN2A 蛋白包含156 個氨基酸,在細胞周期中調節細胞增殖并抑制腫瘤的產生,該基因的失活可導致細胞分離控制和惡性進展為腫瘤

。目前研究發現,該基因在許多腫瘤中丟失或發生突變。CDKN2A基因失活的機制包括啟動子甲基化、純合缺失和點突變,平均頻率分別為33%、22%和15%;另外,研究還發現9p21 區域雜合性缺失與腫瘤發生有關

故事二 先生游南鎮,一友指巖中花樹問曰:“天下無心外之物,如此花樹,在深山中自開自落,于我心亦何相關?”先生曰:“你未來看此花時,此花與汝心同歸于寂。你來看此花時,則此花顏色一時明白起來。始知此花不在你的心。”

Ibrahim IS等

發現,CDKN2A 啟動子甲基化與直腸癌患者的復發和預后相關,表明CDKN2A 啟動子甲基化可作為預測直腸癌預后的指標。Potjer TP等

發現,胰腺癌患者的腫瘤組織中存在一種特殊的CDKN2A 突變,表明CDKN2A 突變可能被用作胰腺癌的標志物。本研究顯示,CDKN2A 突變的腎細胞癌患者總體生存率和無病生存率較差,這表明CDKN2A 突變可能有助于腎細胞癌的進展。除此之外,降低CDKN2A 表達水平已被證明可增加腫瘤細胞對化療或放療的耐受性

。因此,CDKN2A 可以作為新的抗癌治療策略的靶點。本研究發現,與野生型相比,CDKN2A 突變對Tenovin-6 等藥物的敏感性較低,這表明Tenovin-6 突變在治療上的預后較差,并且在各種癌癥和腎細胞癌中,Tenovin-6 對野生型具有顯著的選擇性。隨著組蛋白去乙酰化酶(HDAC)的發展,HDAC 抑制劑(HDACi)已成為抗腫瘤藥物的研究熱點

。Tenovin-6 是近年來開發的一種HDACi,是脫乙酰酶SIRT1的抑制劑,選擇性地抑制Ⅲ類HDACs 中最常見的SIRT1 和SIRT2,并激活P53,具有更大的臨床應用價值。Tenovin-6 可以抑制腫瘤細胞的增殖,促進細胞凋亡和周期阻滯

。這些研究為腎細胞癌患者個體化應用特異性抗腫瘤藥物提供了額外證據,并為進一步研究提供了基礎。

本研究發現,腎細胞癌患者CDKN2A 突變信號通路主要富集Wnt-catenin 信號、泛素介導的蛋白水解、緊密連接、TGF-β 信號、磷脂酰肌醇信號、erbb信號和粘附連接。已有研究證實

,CDKN2A 基因的負調控途徑是RB1 途徑。CDKN2A 蛋白包含四個連續的錨蛋白重復序列,它們與CDK4 和CDK6 結合,而CDK4 和CDK6 是一種雙周期依賴性蛋白激酶,作用于CDK4-6的非催化側,可抑制CDK 和細胞周期蛋白D1 復合物的催化活性

。CDKN2A 突變可能通過影響多種途徑促進腎細胞癌的進展,CDKN2A突變患者的腫瘤可能更容易進展和遠處轉移

。另外,本研究還發現,GO 分析中差異基因主要富集在RNA 聚合酶Ⅱ啟動子、轉錄的負調控中。

綜上所述,多個基因和通路途徑可能在CDKN2A 突變中起關鍵作用。本研究確定了與腎細胞癌中CDKN2A 突變相關的主要途徑,這可能通過制定腎細胞癌特定CDKN2A 突變亞型的治療策略來改善腎細胞癌的預后。另外,腎細胞癌中CDKN2A突變的機制和驗證仍需在臨床和分子生物學實驗中進一步研究。

[1] Chen W,Zheng R,Baade PD,et al.Cancer statistics in China,2015[J].CA Cancer J Clin,2016,66(2):115-132.

[2] Su D,Singer EA,Srinivasan R.Molecular pathways in renal cell carcinoma: recent advances in genetics and molecular biology[J].Curr Opin Oncol,2015,27(3):217-223.

[3] Ljungberg B,Bensalah K,Canfield S,et al.EAU guidelines on renal cell carcinoma: 2014 update[J].Eur Urol,2015,67(5):913-924.

[4] Kamal Y,Cheng C,Frost HR,et al.Predictors of disease aggressiveness influence outcome from immunotherapy treatment in renal clear cell carcinoma [J].Oncoimmunology,2018,8 (1):e1500106.

[5] Xu J,Li N,Deng W,et al.Discovering the mechanism and involvement of the methylation of cyclin-dependent kinase inhibitor 2A (CDKN2A) gene and its special locus region in gastric cancer[J].Bioengineered,2021,12(1):1286-1298.

[6] Hayashi T,Shibata T,Nakamura M,et al.MAFK Polymorphisms Located in 3'-UTR are Associated with Severity of Atrophy and CDKN2A Methylation Status in the Gastric Mucosa[J].Genet Test Mol Biomarkers,2021,25(4):255-262.

[7] Wang L,Xu L,Wang Y.Huaier Inhibits Proliferation,Migration,and Invasion of Cutaneous Squamous Cell Carcinoma Cells by Inhibiting the Methylation Levels of CDKN2A and TP53[J].Integr Cancer Ther,2021,20:15347354211031646.

[8] Sumida K,Han Z,Dashputre AA,et al.Association between Nrf2 and CDKN2A expression in patients with end-stage renal disease: a pilot study[J].Aging (Albany NY),2020,12(16):16357-16367.

[9] Bartels S,van Luttikhuizen JL,Christgen M,et al.CDKN2A loss and PIK3CA mutation in myoepithelial-like metaplastic breast cancer[J].J Pathol,2018,245(3):373-383.

[10] Fraz?o L,do Carmo Martins M,Nunes VM,et al.BRAF V600E mutation and 9p21: CDKN2A/B and MTAP co-deletions-Markers in the clinical stratification of pediatric gliomas[J].BMC Cancer,2018,18(1):1259.

[11] Gironi LC,Colombo E,Pasini B,et al.Melanoma-prone families: new evidence of distinctive clinical and histological features of melanomas in CDKN2A mutation carriers [J].Arch Dermatol Res,2018,310(10):769-784.

[12] Ibrahim I,Sibinga Mulder BG,Bonsing B,et al.Risk of multiple pancreatic cancers in CDKN2A-p16-Leiden mutation carriers[J].Eur J Hum Genet,2018,26(8):1227-1229.

[13] Thompson ED,Roberts NJ,Wood LD,et al.The genetics of ductal adenocarcinoma of the pancreas in the year 2020: dramatic progress,but far to go[J].Mod Pathol,2020,33(12):2544-2563.

[14] Ibrahim IS,Wasser MN,Wu Y,et al.High Growth Rate of Pancreatic Ductal Adenocarcinoma in CDKN2A-p16-Leiden Mutation Carriers[J].Cancer Prev Res (Phila),2018,11(9):551-556.

[15] Potjer TP,van der Stoep N,Houwing-Duistermaat JJ,et al.Pancreatic cancer-associated gene polymorphisms in a nationwide cohort of p16-Leiden germline mutation carriers;a casecontrol study[J].BMC Res Notes,2015,8:264.

[16] Yang C,Cimera RS,Aryeequaye R,et al.Adverse histology,homozygous loss of CDKN2A/B,and complex genomic alterations in locally advanced/metastatic renal mucinous tubular and spindle cell carcinoma[J].Mod Pathol,2021,34(2):445-456.

[17] McClure JJ,Li X,Chou CJ.Advances and Challenges of HDAC Inhibitors in Cancer Therapeutics [J].Adv Cancer Res,2018,138:183-211.

[18] Ke X,Qin Q,Deng T,et al.Heterogeneous Responses of Gastric Cancer Cell Lines to Tenovin-6 and Synergistic Effect with Chloroquine[J].Cancers (Basel),2020,12(2):365.

[19] Aftab A,Shahzad S,Hussain HMJ,et al.CDKN2A/P16INK4A variants association with breast cancer and their in-silico analysis[J].Breast Cancer,2019,26(1):11-28.

[20] Sun Q,Chen S,Hou Y,et al.Mutant CDKN2A regulates P16/p14 expression by alternative splicing in renal cell carcinoma metastasis[J].Pathol Res Pract,2021,223:153453.

猜你喜歡
數據庫信號分析
信號
鴨綠江(2021年35期)2021-04-19 12:24:18
隱蔽失效適航要求符合性驗證分析
完形填空二則
電力系統不平衡分析
電子制作(2018年18期)2018-11-14 01:48:24
基于FPGA的多功能信號發生器的設計
電子制作(2018年11期)2018-08-04 03:25:42
數據庫
財經(2017年2期)2017-03-10 14:35:35
電力系統及其自動化發展趨勢分析
數據庫
財經(2016年15期)2016-06-03 07:38:02
數據庫
財經(2016年3期)2016-03-07 07:44:46
基于LabVIEW的力加載信號采集與PID控制
主站蜘蛛池模板: 成人蜜桃网| 国产日本欧美在线观看| 激情爆乳一区二区| 国产手机在线观看| 欧美一区二区人人喊爽| 欧美精品啪啪一区二区三区| 亚洲日韩高清在线亚洲专区| av在线5g无码天天| 一区二区三区四区在线| 国产网站免费| 国产精品无码一区二区桃花视频| 久久www视频| 99热这里只有免费国产精品| 欧美成人午夜视频免看| 婷婷六月综合| 亚洲一区二区三区国产精品| a国产精品| 91小视频在线观看免费版高清| 国产精品99r8在线观看| 亚洲人成影院在线观看| 免费xxxxx在线观看网站| 福利国产微拍广场一区视频在线| 精品综合久久久久久97超人| 中文字幕 91| 亚洲bt欧美bt精品| 日本午夜三级| 色综合网址| 亚洲av无码久久无遮挡| 国产00高中生在线播放| 免费 国产 无码久久久| 亚洲日韩精品综合在线一区二区| 国产精品嫩草影院av| 91视频青青草| 五月天福利视频| 天天色天天操综合网| 亚洲一级毛片在线播放| 国产第二十一页| 国产精品无码影视久久久久久久| 婷婷综合亚洲| 国产精品久线在线观看| 亚洲精品手机在线| 毛片最新网址| 精品久久久无码专区中文字幕| a级毛片毛片免费观看久潮| 国产精品观看视频免费完整版| 亚洲成人动漫在线观看| 新SSS无码手机在线观看| 91麻豆精品国产高清在线| 亚洲AⅤ无码日韩AV无码网站| 日韩人妻精品一区| 干中文字幕| 日韩在线视频网| 亚洲精品国产精品乱码不卞| 欧美成人区| 亚洲美女一级毛片| 欧美日韩久久综合| 国产一区免费在线观看| 亚洲精品动漫| 成人免费黄色小视频| 国产精品偷伦视频免费观看国产| 国内精品一区二区在线观看| 成人伊人色一区二区三区| 91久久国产综合精品女同我| 天天综合色网| 欧美成人在线免费| 日日噜噜夜夜狠狠视频| 久久人搡人人玩人妻精品一| 欧美日本二区| 国产产在线精品亚洲aavv| 毛片一区二区在线看| 久久国产精品无码hdav| 亚洲人成在线精品| 久久国产精品无码hdav| 婷婷色婷婷| 精品福利视频导航| 国产一级二级在线观看| 亚洲女同一区二区| 午夜a视频| 久久成人免费| 亚洲成人精品| 亚洲无码精品在线播放| 五月激情综合网|