王楷,黃思輝,吳騰飛,邱振雄(通信作者)
深圳市寶安區中心醫院·廣東醫科大學附屬寶安中心醫院普外科 (廣東深圳 518000)
結腸癌是全球第三大常見癌癥,也是癌癥疾病中致死率排名第二的癌癥[1]。迄今為止,化療仍是治療結腸癌的主要手段,除此之外,缺乏更有效、更安全的治療方法,因此,亟需探索結腸癌治療的新方式[2-4]。飲食影響著人類健康的各個方面,有證據表明,飲食可能會導致細胞發生表觀遺傳變化,從而改變某些調控細胞增殖和生長的基因的表達水平,多項研究表明,飲食與多種癌癥(如胰腺癌、結腸癌、乳腺癌等)存在著密切聯系[5-6]。通過低碳水化合物、平均蛋白質和高脂肪飲食抑制腫瘤生長的飲食方式被稱為生酮飲食(ketogenic diet,KD)。以往對KD 的研究主要集中于癲癇的治療方面[7-10]。近年來,KD 逐漸被用于腫瘤的治療,如胃癌、前列腺癌、神經膠質瘤等,且治療過程中未發現不良反應[11-13]。本課題前期研究也發現KD 會抑制裸鼠結腸癌移植瘤的生長,但具體的作用機制尚不明確,因此本研究將探討KD 對結腸癌細胞皮下移植瘤生長抑制作用的可能機制,現報道如下。
SPF 級SD 大鼠(許可證號:SCXK(湘)2016-0002,湖南斯萊克景達實驗動物有限公司),10只,雄性,8周齡;飼養于溫度20~26℃,濕度 40%~70%的SPF 級環境中,自由飲食攝水。
生酮飼料,購于江蘇美迪森生物醫藥有限公司;HCT116細胞,購于北納生物技術有限公司;完全DMEM 培養基,購于南京凱基生物技術有限公司;TUNEL 檢測試劑盒,購于碧云天生物技術有限公司;β-catenin,購于abcam 公司;Wnt1,購于affinity 公司;辣根酶標記山羊抗兔IgG(H+L),購于北京中杉金橋生物技術有限公司;DAB 顯色試劑盒、中性樹脂,購于北京康為世紀生物技術有限公司;BCA 蛋白定量試劑盒(BCA Protein Assay Kit),購于武漢伊萊瑞特生物科技股份有限公司。
本研究將裸鼠分為對照組和KD 組,每組5只,對裸鼠經適應性飼養7 d后,將濃度為5×106個/ml的人結腸癌細胞HCT116皮下注射到裸鼠體內成瘤(0.1 ml/只,于成瘤5 mm 時開始生酮喂養)。成瘤前兩組裸鼠均自由進食,之后成瘤對照組裸鼠自由進食標準飼料,KD 組裸鼠于成瘤5 mm 時給予相等能量的生酮飼料,飼喂30 d 后處死裸鼠。
參照胡清泉等[14]的方法,腫瘤組織石蠟切片經烤片、脫蠟、水化后,用蘇木素染液染色3-5 min,流水沖洗后,用1%鹽酸酒精分化,反藍液反藍,伊紅染色3-5 min 后,切片脫水,封片,在顯微鏡(BX43,Olympus)下觀察。
參照劉艷龍和徐國海[15]的方法,將組織切片放入二甲苯進行脫蠟,接著加入梯度乙醇水化,加入抗原抗體修復后,滴加脫氧核糖核苷酸末端轉移酶介導的缺口末端標記法(TdT-mediated dUTP Nick-End Labeling,TUNEL)檢測液,孵育2 h 后,洗滌,封片鏡檢。
參照胡清泉等[14]的方法,將組織切片進行脫蠟、水化和抗原修復后,利用5%牛血清白蛋白(bovine serum albumin,BSA)進行封閉,然后進行一抗β-catenin(1‥200)和Wnt1(1‥300)、二抗辣根酶標記山羊抗兔IgG(H+L)孵育,DAB 顯色試劑盒顯色5~10 min,再用中性樹脂封片和鏡檢。
取兩組瘤體組織經液氮研磨成粉末,加入裂解液后再次研磨,將組織勻漿吸入一EP 管中,冰上裂解30 min 收獲上清液;采用BCA 試劑盒測定蛋白濃度,參照魏利超和吳旻[16]的方法檢測瘤體組織中活化的半胱氨酸蛋白酶3和9(Cleavedcaspase 3/9)、生存素(Survivin)、無翅和整合素1(Wnt1)和β-聯蛋白(β-catenin)表達情況。
采用Graphpad Prism 7軟件對數據進行統計分析,計量資料以±s表示,組間比較經單因素分析,P<0.05為差異有統計學意義。
對照組呈實體狀排列,部分癌細胞成腺管樣分布,大量炎性細胞浸潤;KD 組結腸癌的病理特征改善,炎性細胞浸潤減少,見圖1。

圖1 HE染色觀察裸鼠結腸癌皮下成瘤的病理學變化(×200)
如圖2所示可以看出,對照組凋亡細胞占比5%左右,KD 組凋亡細胞占比25%左右,且與對照組相比,KD 組細胞凋亡率顯著升高,差異有統計學意義(P<0.05)。

圖2 TUNEL 染色檢測KD 對裸鼠結腸癌皮下成瘤細胞凋亡的影響
如圖3 所示可以看出,Wnt1、β-catenin 在瘤體組織中陽性表達。且在對照組中,Wnt1、β-catenin 陽性表達率均為60%左右,而在KD 組中,Wnt1、β-catenin 陽性表達率分別在25%、30%左右,與對照組相比,KD 組Wnt1 和β-catenin 表達水平均顯著降低,差異有統計學意義(P<0.05)。

圖3 免疫組化檢測KD 對裸鼠結腸癌皮下成瘤中Wnt1和β-catenin 表達的影響
由Western Blot 檢測腫瘤組織中Cleaved-caspase 3/9、Wnt1和β-catenin 的表達情況可以看出,與對照組相比,KD 組中Cleaved-caspase 3、Cleavedcaspase 9表達顯著升高,Survivin 表達顯著下降,且差異都有統計學意義(P<0.05);進一步探究Wnt1/β-catenin 信號通路是否參與這一過程,結果顯示,與對照組相比,KD 組Wnt1和β-catenin 表達水平顯著下降,差異有統計學意義(P<0.05),見圖4。

圖4 Western Blot 免疫印跡法檢測KD 對裸鼠結腸癌皮下成瘤中Cleaved-caspase 3/9、Wnt1和β-catenin 表達的影響
“Warburg 效應”是腫瘤細胞在有氧的情況下通過一系列分子機制來削弱有氧呼吸,進行高效糖酵解反應,進而獲得大量三磷酸腺苷(ATP),以及制造適合腫瘤細胞生存的微環境,使腫瘤細胞具有增殖優勢。研究發現,機體血糖與腫瘤生長速度相關,血糖濃度與腫瘤生長呈正相關,血糖濃度下降后可使腫瘤體積減小且生長速率降低[17],因此可通過減少碳水化合物的攝入、切斷腫瘤的能量供應來破壞腫瘤微環境,從而達到抑制腫瘤生長的目的。研究發現,KD 可調節患者代謝,明顯抑制腫瘤生長,提高患者生命質量,增強患者化療敏感性[18],因此,目前KD 已在多種動物腫瘤模型及臨床病例的治療及輔助治療中被廣泛使用[19-21]。基于以上研究,本研究認為KD 飲食對結腸癌增殖的抑制及潛在機制值得進一步探索。
本研究通過皮下注射HCT116細胞建立結腸癌模型,并于成瘤后調整飲食,即分別給予正常飲食和生酮飲食,通過HE 染色檢測對照組及KD 組瘤體的病理變化,結果顯示,對照組呈實體狀排列,部分癌細胞成腺管樣分布,大量炎性細胞浸潤;KD組炎性細胞浸潤減少,病理特征有所改善。進一步行TUNEL 實驗的結果顯示,KD 可促進瘤體凋亡。由此說明,KD 干預可延緩結腸癌細胞皮下移植瘤瘤體的生長并誘導瘤體凋亡,改善瘤體病理變化。
Wnt/β-catenin 是經典的Wnt 信號通路,在多種疾病中起重要作用,研究發現Wnt /β-catenin 在腫瘤中過度激活,抑制 Wnt /β-catenin 可阻礙腫瘤生長和轉移,對干細胞更新、細胞增殖和細胞分化都至關重要[22]。另有研究表明,Wnt/β-catenin 信號參與結直腸癌的進展,激活Wnt/β-catenin 信號可促進結直腸癌的生長和轉移[23]。細胞質后期分裂復合體(anaphase-promoting complex,APC)/軸蛋白破壞復合物(destruction complex,DC)在保持β-catenin 的穩定性方面發揮著重要作用。APC 蛋白包含3 個Axin 結合基序,這些基序散布在一系列與β-catenin 結合的15 和20 氨基酸重復序列之間。在結直腸癌中,APC 對DC 的功能至關重要;APC缺乏可導致β-catenin 在細胞質中聚集并轉移至細胞核,激活原癌基因蛋白(transcriptional regulator Myc-like,c-Myc)、細胞周期素D1(Cyclin D1)和基質金屬蛋白酶7(matrix metallopeptidase 7,MMP7)等靶基因,這些基因與癌細胞的周期、增殖、上皮間質轉化(epithelial-mesenchymal transition,EMT)和轉移有關[18]。研究發現,結腸癌的發現與細胞內β-catenin 的積累水平失控有關[20-21,24]。此外,腸道的形成過程需要Wnt 信號通路的激活,但該通路過度激活后會導致腸道病變,約有90%的結腸癌患者存在Wnt 信號通路異常激活[25-28]。因此,KD 對結腸癌的抑制作用可能是通過Wnt 通路發揮作用。本研究結果顯示,KD 可顯著降低瘤體中Wnt1、β-catenin 陽性表達率,Western Blot 實驗結果進一步證實,KD 可顯著下調Wnt1、β-catenin 表達,且Western Blot 實驗結果還證實,KD 可顯著下調Survivin 表 達,上 調Cleaved-caspase 3/9 表 達。Survivin 不僅是Wnt1/β-catenin 通路靶基因,還是目前已知最強的凋亡抑制因子,可顯著抑制caspase 3的凋亡誘導作用。因此,調控上述蛋白的表達,將明顯影響腫瘤細胞的存活。本研究結果恰好證實了KD可調控Survivin、Cleaved-caspase 3、Cleaved-caspase 9 表達,繼而促進結腸癌瘤體的凋亡。
綜上所述,KD 可有效促進裸鼠人結腸癌皮下瘤細胞的凋亡,與下調Survivin 表達和上調Cleaved-caspase 3/9表達有關,此過程可能是通過阻斷Wnt1/β-catenin 信號通路實現的,但需要結合Wnt1/β-catenin 通路抑制劑或相關成分抑制劑進行進一步驗證。