文 純,游秋云,王 平,丁 莉**
(1.湖北中醫藥大學藥學院 武漢 430065;2.湖北中醫藥大學老年醫學研究所 武漢 430065)
據報道[1],阿爾茲海默病(Alzheimer Disease,AD)在我國65歲以上老年人群中發病率為5%。而隨著中國社會人口結構邁入老齡化,老年人口基數的增大,預估2030年我國AD患者數量接近1500萬,其治療將會給社會帶來沉重負擔。目前研究認為[2],可溶性β淀粉樣蛋白(Amyloid beta-Peptides,Aβ)的腦內水平變化與AD發病密切相關,而可溶性β淀粉樣蛋白主要是由淀粉樣前體蛋白(Amyloid beta-Protein Precursor,APP)的淀粉樣蛋白代謝途徑生成,早老蛋白基因1(Presenilin-1,PS1)是APP代謝過程中γ分泌酶的亞單位,PS1基因發生突變,會特異性地促進Aβ1-42的形成[3]。因此,研究APP代謝產物顯得尤為重要。課題組前期研究發現[4-6],APP/PS1雙轉基因小鼠在5月齡時,白天活動時間增加、休息減少,喪失晝伏特性,白晝與黑夜的活動時間不具有晝夜差異性。這并不符合嚙齒類動物晝伏夜出的生活習性,由此推測其自主活動節律性開始發生明顯紊亂。同時也有研究表明[7],隨著白晝與黑夜之間活動規律差異縮小,會影響認知行為以及突觸的可塑性。已有研究顯示[8],隨著年齡增長,老年人群常發生的晝夜節律紊亂會增加AD的患病風險,這可能是由于中樞晝夜節律的紊亂會引起APP代謝紊亂,導致Aβ的異常沉積[9],同時Aβ在腦內的代謝與晝夜節律以及學習記憶聯系緊密[10,11]。APP代謝受到α、β、γ三種酶共同調控[12-14],代謝產物包括sAPPα、sAPPβ和Aβ。根據調控APP代謝的酶不同[15],將APP水解分為兩類:一是淀粉樣蛋白代謝(β、γ酶調控),由β、γ酶對APP進行酶切水解,生成Aβ;二是非淀粉樣蛋白代謝(α酶調控),由α酶對APP進行酶切,水解后的主要產物是sAPPα。
生慧湯出自《辯證錄·健忘門》,常用于治療失眠、健忘,由熟地黃、山茱萸、遠志、生棗仁、柏子仁、人參、茯神、石菖蒲以及白芥子九味中藥材組成。生慧湯研究主要與睡眠及晝夜節律有關[16,17],一是生慧湯可減輕睡眠剝奪對神經元的損傷,可能是與其調節PSD95和SYN表達及調控凋亡蛋白Bcl-2、Bax的表達有關;二是生慧湯能夠上調節律基因Bmal1的表達,降低IL-6、TNF-α的含量,從而調節晝夜節律紊亂改善AD。而生慧湯對AD癡呆模型APP代謝產物的晝夜變化影響少有報道。
因此,本文采用生慧湯干預APP/PS1雙轉基因小鼠,通過酶聯免疫吸附(ELISA)檢測不同時間段取出的海馬組織sAPPα表達水平,對海馬β淀粉樣蛋白1-40、β淀粉樣蛋白1-42表達進行免疫印跡分析,免疫組化(IHC)檢測海馬CA1區Aβ1-40蛋白的表達,以此研究生慧湯對AD模型小鼠海馬內APP代謝產物的晝夜變化影響。
AD模型動物:5月齡SPF級雄性APP/PS1雙轉基因小鼠56只,購自遼寧長生生物技術股份有限公司,許可證號SCXK(遼)2020-0001,對照組動物:5月齡SPF級雄性C57BL/6J小鼠14只,許可證號SCXK(遼)2020-0002。飼養在湖北中醫藥大學老年醫學研究所動物房屏障環境,允許自由攝食與飲水。
生慧湯:由熟地黃30 g,山茱萸12 g,遠志6 g,生棗仁15 g,柏子仁(去油)15 g,茯神9 g,人參9 g,石菖蒲1.5 g,白芥子6 g組成,購自湖北中醫藥大學藥房,批號:20201201。所有藥材按組方比例稱取,加入稱取藥材總重量的8倍量水浸泡1 h,加熱至沸騰開始計時,1 h后濾取藥液。藥渣加水重復以上操作,濾取藥液。合并藥液,濃縮至1.35 g/mL、2.70 g/mL,4℃保存。
一抗:GAPDH抗體;Aβ1-40抗體、Aβ1-42抗體(武漢賽培生物科技有限公司,貨號:SP11457,SP11731);二抗:羊抗兔二抗,羊抗鼠二抗(Servicebio,貨號:GB21302,GB21303);sAPPαELISA試劑盒(美國IBL公司,貨號:27734),RIPA裂 解 液、SDS-PAGE凝 膠 制 備 試 劑 盒(Servicebio,貨號:G2002,G2003)。
RT-6100酶標儀(Rayto),D3024R臺式高速冷凍離心機(DRAGONLAB),TSY-B脫色搖床(Servicebio),BV-2垂直電泳儀(Servicebio),DMS-2型Morris水迷宮(中國醫學科學研究院藥物研究所),ZH自發活動分析系統(淮北正華生物儀器設備有限公司)。
將56只雄性APP/PS1轉基因小鼠按隨機數字表法分為:模型組、褪黑素組、生慧湯低劑量組、生慧湯高劑量組4組,每組14只。對照組為5月齡C57BL/6J小鼠,14只。按體表面積折算等效劑量,分別計算給藥劑量,褪黑素組(0.78 mg·kg-1·d-1)、生慧湯高、低劑量組(27.0 g·kg-1·d-1、13.5 g·kg-1·d-1,等 效 劑 量 的2倍、1倍),對照組與模型組灌胃相同體積的生理鹽水,給藥容量均為10 mL·kg-1,每日上午9:00灌胃,連續30天。
第27天,進行水迷宮行為學實驗,預先向水池中加水至沒過平臺2 cm,用奶粉將水池顏色染成乳白色掩蓋平臺,避免小鼠因視覺而找到平臺。對小鼠進行訓練,90 s內小鼠未找到平臺,人工引導小鼠至平臺,停留15 s,訓練三天,第四天(第30天)進行定位航行試驗,將小鼠面向池壁放入水中,找到平臺停留3 s后,系統自動停止計時,找到平臺時間為上平臺潛伏期,90 s內未找到平臺記錄為90 s。第31天進行空間探索實驗,撤去平臺后,將小鼠面向池壁放入水中,記錄90 s內小鼠穿越原平臺次數。
連續灌胃30天后,第31天行為學實驗結束后,小鼠脫頸椎處死,斷頭,置于鋪有一張濾紙的冰袋上,用眼科剪刀小心從正中矢狀位剪開0.5 cm,用鑷子剝去小鼠顱骨,分離腦組織,剝離海馬組織置于EP管,放入冰中,取材結束后放入-80℃冰箱保存備用。
從-80℃冰箱中取出海馬組織,稱取少量,置于勻漿機勻漿,離心15 min(相對離心力為3304 g),吸取上清液,按試劑盒說明書進行檢測。
從-80℃冰箱中取出海馬組織,剪碎,加入裂解液,勻漿,之后置于勻漿管中,放置冰上裂解30 min,每5 min震蕩一次,12000 r/min,離心10 min,取上清液,按十二烷基硫酸鈉-聚丙烯酰胺凝膠電泳(Sodium Dodecyl Sulfate PolyAcrylamide Gel Electrophoresis,SDS-PAGE)制備試劑盒說明書制備凝膠,轉膜,按抗體說明書加入一抗、二抗,凝膠圖像分析系統進行分析,檢測小鼠海馬組織Aβ1-40和Aβ1-42蛋白表達水平。
每組4只小鼠小心取出完整全腦,全腦表面若有血殘留,用生理鹽水沖去表面血,放入裝有固定液的標本瓶,石蠟包埋,切片,染色,拍照,觀察小鼠海馬CA1區Aβ1-40蛋白表達情況,并采用image j軟件分析計算平均光密度,進行比較。
結果如圖1、圖2所示,與對照組相比,模型組小鼠上平臺潛伏期延長,穿越平臺次數減少(P<0.01、P<0.01);與模型組相比,生慧湯給藥組小鼠上平臺潛伏期縮短,穿越平臺次數增加(P<0.01、P<0.05)。

圖1 各組小鼠上平臺潛伏期(n=14)

圖2 各組小鼠穿越平臺次數(n=14)
2.2.1 sAPPα總量比較
結果如圖3所示,與對照組相比,模型組小鼠海馬組織sAPPα總量減少(P<0.01);與模型組相比,生慧湯不同劑量組小鼠海馬組織中sAPPα總量增加(P<0.01、P<0.05)。

圖3 小鼠海馬組織sAPPα總量比較(pg/mL,n=10)
2.2.2 sAPPα含量晝夜差異比較
結果如圖4所示,通過比較兩個不同時間段(12:00與24:00)sAPPα含量,發現對照組小鼠海馬內sAPPα含量具有明顯晝夜差異(P<0.01),而模型組sAPPα含量的晝夜差異現象消失(P>0.05);生慧湯高劑量能夠恢復sAPPα含量的晝夜差異表達(P<0.01)。

圖4 小鼠海馬中sAPPα晝夜差異比較(pg/mL,n=5)
2.2.3不同時間段的sAPPα含量比較
結果如圖5所示,12:00時,與對照組相比,模型組小鼠海馬內sAPPα含量明顯下降(P<0.01);與模型組相比,褪黑素組、生慧湯高劑量組sAPPα含量明顯增加(P<0.01),生 慧 湯 低 劑 量 組sAPPα含 量 無 差 異(P>0.05);24:00時,與對照組相比,模型組sAPPα含量明顯下降(P<0.01);與模型組相比,生慧湯高劑量組sAPPα含量無差異(P>0.05),生慧湯低劑量組sAPPα含量明顯增加(P<0.05)。(見圖5)
結果如圖6所示,與對照組相比,模型組小鼠海馬組織Aβ1-40和Aβ1-42蛋白表達水平明顯升高(P<0.01);與模型組相比,生慧湯高劑量組小鼠海馬組織Aβ1-40和Aβ1-42蛋白表達水平明顯下降(P<0.01),生慧湯低劑量組小鼠海馬組織中僅Aβ1-40蛋白表達下降(P<0.05),對Aβ1-42蛋白的表達影響不顯著(P>0.05)。

圖6 各組小鼠海馬Aβ1-40和Aβ1-42蛋白表達
與對照組相比,模型組小鼠海馬CA1區中Aβ1-40表達明顯增加(P<0.01);與模型組相比,生慧湯不同劑量組Aβ1-40表達不同程度減少(P<0.01、P<0.05)。

圖7 小鼠海馬CA1區Aβ1-40表達免疫組化染色圖片(400×)

圖8 各組海馬CA1區中Aβ1-40含量差異比較(n=4)
目前,有關AD的發病機制主要分為:Aβ學說、Tau磷酸化學說、基因突變學說、炎癥學說、膽堿能學說、氧化應激學說。其中,大腦內Aβ大量沉積所形成的老年斑塊是AD患者最為明顯的病理學特征,與此同時,研究較為關注的是Aβ與tau蛋白、炎癥、膽堿能以及氧化應激之間的聯系。本文從晝夜節律切入,旨在研究晝夜節律對Aβ前體蛋白APP的影響,以此探討晝夜節律改善AD的可能機制。
APP主要是通過非淀粉樣蛋白代謝途徑水解[18,19],在sAPPα含量達到某一特定值時,會對APP的淀粉樣代謝途徑進行負調控,可能正是這種負調控機制,能夠減少Aβ的生成,降低Aβ腦內水平,起到了保護神經元細胞作用[20,21],發揮抗AD作用。另有研究證明[22],隨著晝夜的交替,腦內的sAPPα水平也呈現晝夜節律性變化,含量從白天到夜間呈逐漸升高趨勢,覺醒狀態時降低而睡眠狀態時升高。而節律的紊亂可能會引起APP的代謝發生異常:APP非淀粉樣蛋白代謝途徑減弱,降低了sAPPα水平,并且sAPPα水平的晝夜節律性變化消失,而APP的淀粉樣蛋白代謝途徑則會相應增強,該代謝途徑會產生可溶性Aβ肽,也就是說促進了可溶性Aβ肽的生成[23,24],而Aβ的增加和異常沉積會引起AD的發生和加重。
Morris水迷宮結果表明,生慧湯不同劑量組上平臺潛伏期明顯縮短,穿越平臺次數明顯增加。生慧湯高劑量組的sAPPα含量在全天總量、各時間段含量均明顯增加,同時Aβ1-40和Aβ1-42蛋白表達受到抑制。sAPPα的含量升高提示APP非淀粉樣代謝活動增強,結合Aβ1-40和Aβ1-42蛋白表達受到抑制,提示癡呆癥狀減輕的原因,可能是隨著sAPPα含量的升高,減弱了APP淀粉樣代謝活動,減少了Aβ的生成。
與對照組sAPPα含量具有明顯晝夜差異不同的是:在模型組中,sAPPα含量不具有晝夜差異;而褪黑素組和生慧湯組能明顯增加白天(12:00)sAPPα的含量,sAPPα的含量具有明顯晝夜差異,提示生慧湯組改善學習記憶可能是通過調節sAPPα含量的晝夜節律紊亂來實現。
結合以上實驗結果,生慧湯改善5月齡APP/PS1阿爾茨海默病模型小鼠的學習記憶障礙,其機制可能與恢復海馬內APP代謝產物sAPPα的晝夜節律性表達、從而減少Aβ的沉積有關。
參考文獻2
1李晨陽.阿爾茨海默病的“中國處方”.科學新聞,2020,(5):60-61.
2 Panza F,Lozupone M,Logroscino G,et al.A critical appraisal of amyloid-β-targeting therapies for Alzheimer disease.Nature Reviews Neurology,2019,15(2):73-88.
3 Sun L,Zhou R,Yang G,et al.Analysis of 138 pathogenic mutations in presenilin-1 on the in vitro production of Abeta42 and Abeta40 peptides by gamma-secretase[J].Proc Natl Acad Sci U S A,2017,114(4):E476-E485.
4丁莉,咼霞,許湘,等.APP/PS1雙轉基因小鼠自主活動的節律性.中國老年學雜志,2017,37(14):3389-3390.
5丁莉,游秋云,王平.生慧湯對APP/PS1雙轉基因癡呆小鼠自主活動晝夜節律的影響及對下丘腦生物鐘基因的調節.時珍國醫國藥,2017,28(2):301-304.
6丁莉.晝夜節律的中醫理論探討及生慧湯對APP/PS1癡呆小鼠晝夜節律的影響.武漢:湖北中醫藥大學博士畢業論文,2016:54-55.
7 He Y X,Li Y Y,Zhou F,et al.Decreased circadian fluctuation in cognitive behaviors and synaptic plasticity in APP/PS1transgenic mice.Metabolic Brain Disease,2020,35(2):343-352.
8 Sengoku R.Aging and Alzheimer's disease pathology.Neuropathology,2020,40(1):22-29.
9 Kress G J,Liao F,Dimitry J,et al.Regulation of amyloid-β dynamics and pathology by the circadian clock.Journal of Experimental Medicine,2018,215(4):1059-1068.
10 Li X P,Guan J W,Sun T,et al.Circadian learning and memory changes in Aβ1-42 induced Alzheimer's mice.Metabolic Brain Disease,2020,35(3):463-471.
11 Lucey B P,Hicks T J,McLeland J S,et al.Effect of sleep on overnight cerebrospinal fluid amyloid β kinetics.Annals of Neurology,2018,83(1):197-204.
12 Zhou R,Yang G H,Guo X F,et al.Recognition of the amyloid precursor protein by human γ-secretase.Science,2019,363(6428):eaaw0930.
13 Funamoto S,Tagami S,Okochi M,et al.Successive cleavage of β-amyloid precursor protein by γ-secretase.Seminars in Cell & Developmental Biology,2020,105:64-74.
14 Leong Y Q,Ng K Y,Chye S M,et al.Mechanisms of action of amyloidbeta and its precursor protein in neuronal cell death.Metabolic BrainDisease,2020,35(1):11-30.
15 Takahashi R H,Nagao T,Gouras G K.Plaque formation and the intraneuronal accumulation of β-amyloid in Alzheimer's disease.Pathology International,2017,67(4):185-193.
16張美婭,王平,游秋云,等.生慧湯對APP/PS1雙轉基因癡呆模型小鼠下丘腦區生物鐘基因Bmal1及海馬IL-6,TNF-α的影響.中國實驗方劑學雜志,2019,25(20):7-12.
17譚愛華,龍清華,王平,等.生慧湯對慢性睡眠剝奪模型小鼠的神經保護作用及其機制.中國中西醫結合雜志,2022,42(1):56-60.
18 Habib A,Sawmiller D,Tan J.Restoring soluble amyloid precursor protein α functions as a potential treatment for Alzheimer's disease.Journal of Neuroscience Research,2017,95(4):973-991.
19 Bandyopadhyay S,Hartley D M,Cahill C M,et al.Interleukin-1alpha stimulates non-amyloidogenic pathway by alpha-secretase(ADAM-10 and ADAM-17)cleavage of APP in human astrocytic cells involving p38 MAP kinase.Journal of Neuroscience Research,2006,84(1):106-118.
20 Sharma A,Mohammad A,Saini A K,et al.Neuroprotective effects of fluoxetine on molecular markers of circadian rhythm,cognitive deficits,oxidative damage,and biomarkers of Alzheimer's disease-like pathology induced under chronic constant light regime in wistar rats.ACS Chemical Neuroscience,2021,12(12):2233-2246.
21 Corrigan F,Thornton E,Roisman L C,et al.The neuroprotective activity of the amyloid precursor protein against traumatic brain injury is mediated via the heparin binding site in residues 96-110.Journal of Neurochemistry,2014,128(1):196-204.
22 Dobrowolska J A,Kasten T,Huang Y F,et al.Diurnal patterns of soluble amyloid precursor protein metabolites in the human central nervous system.PLoS One,2014,9(3):e89998.
23 Yun S M,Cho S J,Jo C,et al.Elevation of plasma soluble amyloid precursor protein beta in Alzheimer's disease.J.Arch Gerontol Geriatr,2020,87:103995.
24 Kirk R A,Kesner R P,Wang L M,et al.Lipopolysaccharide exposure in a rat sepsis model results in hippocampal amyloid--beta plaque and phosphorylated tau deposition and corresponding behavioral deficits.Geroscience,2019,41(4):467-481.