姚 雷,蔡海建,劉 鄧,陳立建,唐震海,都 建
(安徽醫科大學 1.基礎醫學院、2.科研實驗中心、3.第一附屬醫院麻醉科,安徽 合肥 230032)
肝臟缺血/再灌注損傷(ischemia reperfusion injury,IRI)長期以來被認為是引起缺血性休克、肝切除和肝移植不良結果的主導因素[1]。缺血/再灌注損傷引起炎癥因子積聚,加劇器官急性排斥反應發生,同時引起膽道并發癥,致使移植物失功。在IRI的防治中,之前的研究重點是保護肝臟實質細胞,然而,最近的研究結果發現,肝竇內皮細胞(liver sinusoidal endothelial cells,LSECs)在早期再灌注過程中會出現功能和表型失調,并對鄰近細胞和肝臟疾病病理生理學產生負面影響[2]。LSECs是肝臟內最豐富的非實質細胞,維持肝內微循環穩態發揮重要作用。LSECs形成肝竇壁,與其他毛細血管不同,它們缺乏有組織的基底膜,細胞質被開放的小孔穿透,使肝臟微血管內皮細胞不連續[3],這種連接方式使得肝實質細胞與肝竇間物質交換更加便捷[4];窗孔是一種動態結構,肝臟的病理生理改變都會影響窗孔的大小改變,調控肝臟微循環[5]。血紅素加氧酶是催化血紅素降解的限速步驟,產生膽紅素、一氧化碳(CO)和鐵離子[6],分解產物具有抗炎、抗氧化、調節細胞周期、改善微循環等作用[7-8],尤其在臨床肝移植手術過程中,肝微循環在再灌注后的恢復極為重要。紫檀芪(pterostilbene,PTE)是從紫檀、藍莓等植物提取的天然酚類化合物。近年來發現,PTE具有良好的抗氧化、抗炎、抗腫瘤等活性而被普遍關注[9-10]。由于其3、5位甲基化特殊結構,使其具備比其他酚類化合物,如白藜蘆醇、白皮杉醇更高的生物利用度以及更強的穩定特性。有相關研究表明,PTE對肝臟缺血/再灌注損傷有保護作用[12],然而對于LSECs保護及具體途徑尚不清楚。本實驗通過原代提取LSECs為細胞模型建立體外氧糖剝奪模型(oxygen-glucose-serum deprivation/reoxygenation,OGD/R),研究PTE通過保護LSECs使肝臟免受缺血/再灌注損傷的作用機制。
1.1 材料C57BL/6J小鼠(雄性,6-8周齡)購于河南斯克貝斯生物科技技術公司,動物生產許可證號:SCXK(豫)2020-0005。PTE(批號:41876)購于MCE公司;胎牛血清(批號:2203013)、鏈霉素(批號:2149393)均購于Vivacell公司;無糖培養基(批號:2323273)購于Gibco公司;ECM(批號:34356)完全培養基購于Sciencell公司;HO-1抗體(批號:KK1123)、HRP標記的山羊抗兔(批號:KK1116)、山羊抗鼠二抗(批號:KK0824)購于成都正能生物公司;β-actin(批號:10021787)購于武漢三鷹公司;AST(批號:20211027)及ALT(批號:20211028)檢測試劑盒購于南京建成公司。
1.2 實驗方法實驗小鼠分為:假手術組、模型組(I/R組)、PTE處理組(10、20、40 mg·kg-1)。實驗前1 d對上述分組小鼠12 h禁食處理。(1)假手術組:1%戊巴比妥鈉腹腔麻醉小鼠,固定小鼠,于肋下緣與腹中線交點作縱向切口,裸露出第一肝門,眼科鑷小心游離出門靜脈和肝動脈,不夾閉肝葉供血,不進行任何其他處理,最后縫合腹腔。(2)肝缺血/再灌注損傷模型組(I/R):1%戊巴比妥鈉腹腔麻醉小鼠,固定小鼠,于肋下緣與腹中線交點作縱向切口,裸露出第一肝門,眼科鑷小心游離出門靜脈和肝動脈,止血夾夾閉肝中葉和左葉門靜脈,夾閉0.5 min觀察左葉和中葉同肝右葉對比明顯變白,臨時縫合腹腔創口,覆蓋無菌紗布,立即將小鼠置于37 ℃恒溫墊維持體溫恒定。持續缺血60 min,拆除縫合線,快速取下止血夾,0.5 min肝臟缺血部分逐漸恢復正常顏色,縫合腹腔,再灌注6 h后摘取眼球收集血液樣本,取肝臟樣本。(3)PTE處理組(10、20、40 mg·kg-1):肝缺血/再灌注前1 h,小鼠腹腔注射3種濃度的PTE,再灌注6 h后眼球取血,取肝臟樣本。
1.3 LSECs原代細胞提取分組1%戊巴比妥鈉注射麻醉小鼠,沿腹股溝中線開放腹腔,留置針穿刺門靜脈,切開下腔靜脈,使用37 ℃預熱的0.5 mmol·L-1的EGTA灌流3 min,蠕動泵速率為60 r·min-1,換用37 ℃預熱的消化液對肝臟再灌注5 min,蠕動泵速率為40 r·min-1,至肝臟松塌有裂痕。剪下肝臟放入純培養基的平皿,撕碎讓肝細胞流出,200目濾網過濾未消化的組織,分離肝竇內皮細胞使用Percoll梯度離心法和選擇貼壁法純化。LSECs分組為對照組、模型組、PTE處理組。對照組使用正常培養基培養,無任何處理;模型組做缺氧復氧處理;PTE處理組使用不同濃度PTE(10、20、40 μmol·L-1)預處理6 h,再進行缺氧復氧處理。
1.4 小鼠血清ALT/AST測定各實驗組小鼠在手術完成后,使用眼科鑷摘去眼球取血,37 ℃靜置1.5 h,4 ℃(3 500 r·min-1,10 min) ,收取血清,按照檢測試劑盒說明書操作,在405 nm測定吸光度,分別計算ALT/AST含量。
1.5 肝組織病理學檢查小鼠肝臟缺血/再灌注后,離體分離在4%多聚甲醛固定。乙醇梯度脫水后包埋,蘇木精伊紅染色后封片,隨機選擇區域光學顯微鏡拍攝觀察。
1.6 透射電鏡觀察肝竇內皮組織細胞根據上述方法分組,小鼠肝臟組織再灌注后,將肝臟標本分割成1 mm3,立即放入5%稀釋濃度的戊二醛中固定,乙醇梯度脫水、塊染、滲透和包埋處理,使用超薄切片機獲得超薄切片,在透射電子顯微鏡(Talos L120C G2)觀察。
1.7 掃描電鏡觀察窗肝竇內皮細胞窗孔按照上述分組,肝竇內皮原代細胞提取后接種于24孔板,孔板下覆蓋14 mm細胞爬片,經缺氧復氧步驟處理,5%稀釋濃度的戊二醛固定6 h,經乙醇梯度脫水后,K850型臨界點干燥儀干燥,離子濺射儀涂上薄層金屬,并在場發射掃描電子顯微鏡下(Gemini SEM 300)觀察。
1.8 Western blot按照上述分組,原代細胞經體外缺氧復氧步驟在RIPA裂解緩沖液中制備全細胞裂解物,經恒壓SDS凝膠電泳采用恒流濕轉至硝酸纖維素轉印膜,放于封閉液中常溫封閉3 h。洗膜后常溫一抗孵育2 h,漂洗后室溫二抗于低速搖床上孵育1.5 h,通過化學發光成像系統獲取圖像。使用ImageJ軟件定量。

2.1 PTE處理對肝臟ALT、AST表達影響檢測各組血清ALT和AST水平,由Fig 1可得出,I/R組ALT和AST水平明顯上升髙(P<0.01),同時PTE治療組血清ALT和AST水平較I/R組明顯降低(P<0.01),說明PTE對小鼠肝臟有明顯保護作用。
2.2 PTE處理對肝臟結構保護小鼠肝臟組織HE染色結果如Fig 2,假手術組(Fig 2A)肝細胞形態邊界完整,無任何病理性改變;I/R組(Fig 2B)核固縮,出現嚴重壞死,病理損傷明顯增加。經3種劑量的PTE治療組(Fig 2C~E)顯示出較小的肝細胞死亡區域,同I/R組相比壞死明顯降低。
2.3 PTE處理對肝竇內皮細胞保護作用TEM觀察肝臟各組超微結構(Fig 3),假手術組:肝竇內皮細胞繞肝竇腔排列,呈扁平狀,可明顯觀察到大量的開放的開窗結構,內皮下膜薄,缺乏有組織的基底膜,腔內膠原纖維較少;I/R組:窗孔數量同假手術組相比,明顯減少,內皮下胞膜增生變厚,出現連續基底膜;PTE預處理組:窗孔開放數量明顯增多。

Fig 1 Changes in serum ALT and AST levels in mice A:Serum ALT level;B:Serum AST level;CON:Control group;I/R:Model group;PTE-10:Pterostilbene 10 mg·kg-1 treatment group;PTE-20:Pterostilbene 20 mg·kg-1 treatment group;PTE-40:Pterostilbene 40 mg·kg-1 treatment group;##P<0.01 vs CON group;**P<0.01 vs I/R group.
2.4 PTE處理對肝竇內皮細胞窗孔的影響肝竇內皮原代細胞SEM檢測(Fig 4),結果顯示:在正常肝竇內皮細胞中,具有明顯的窗孔結構,窗孔開放;I/R組細胞窗孔明顯減少;PTE處理組窗孔數量同I/R組相比,有明顯增加。表明PTE可改善缺血/再灌注后肝竇內皮細胞窗孔開放,有利于肝臟微循環恢復,減輕肝臟缺血/再灌注損傷。

Fig 2 Hetopathological HE staining of liver in various groups of miceA:Sham group;B:I/R group;C:Pterostilbene 10 mg·kg-1 treatment group;D:Pterostilbene 20 mg·kg-1 treatment group;E:Pterostilbene 40 mg·kg-1 treatment group.

Fig 3 Effects of pterostilbene on liver tissue in various groups of mice observed by transmission electron microscopy (TEM)A:Liver tissue in the sham group;B:Liver tissue in the I/R model group;C:Pterostilbene treatment group.E:endothelial cells,H:hepatocytes,V:villi,F:fenestrae,S:blood sinuses

Fig 4 Effects of pterostilbene on fenestrae of liver sinusoidal endothelial cells in each group of mice observed by scanning electron microscopyA:Liver sinusoidal cells of normal mice;B:Liver sinusoidal endothelial cells of model group;C:Liver sinusoidal endothelial cells of pterostilbene treatment group.
2.5 PTE處理對肝竇內皮細胞一氧化氮合酶蛋白表達影響同對照組相比(Fig 5),OGD/R后HO-1蛋白表達明顯下降(P<0.01),經過PTE預處理后,HO-1表達水平明顯上調(P<0.01)。
PTE從藍莓漿果中提取,屬于天然結構化合物,具有抗炎、抗氧化作用。PTE能通過上調 PINK1介導的線粒體自噬在肝臟I/R損傷中發揮保護作用;并且還可以降低TNF-α、IL-1β和NF-κB的表達,減輕急性肝損傷誘導的組織損傷、炎癥反應[12]。在前期研究中,通過體內實驗建立70%肝臟缺血/再灌注(缺血60 min)模型,也證實了PTE處理顯著降低血清中ALT、AST表達,減少肝臟缺血/再灌注后的組織水腫壞死。但這都是在肝實質細胞中討論,對于非實質細胞還沒有具體研究。

Fig 5 Effects of pterostilbene on HO-1 protein expression levels of liver sinusoidal endothelial cells in various groups A:Western blot detected the expression level of HO-1;B:HO-1 protein semi-quantitative analysis;1:Control group;2:OGD/R group;3:Perostilbene 10 μmol·L-1 treatment group;4:Pterostilbene 20 μmol·L-1 treatment group;5:Pterostilbene 40 μmol·L-1 treatment group;##P<0.01 vs Control group;**P<0.01 vs OGD/R group
肝臟70%非實質細胞為LSECs,與其他血管內皮細胞的形態和功能不同,LSECs沿竇壁排列呈扁平狀,細胞邊界清晰,存在典型的窗孔結構。缺乏基底膜,沒有隔膜,從而使肝臟微血管內皮不連續[13]。最新研究發現,LSECs在IRI期間迅速去分化,獲得血管收縮、促炎和促血栓特性,這一過程被稱為“毛細血管化”,窗孔和基膜沉積的缺失阻礙了肝細胞的適當氧化,ATP供應減少,物質運輸障礙,最終導致損傷相關分子模式(DAMP)的分泌[14]。本研究在體內實驗通過TEM觀察發現,缺血/再灌注后LSECs窗孔數量明顯減少,內皮下胞膜增生變厚,出現連續基底膜。而當PTE預處理后窗孔開放數量顯著增多。為進一步證實這種現象,體外實驗通過差速離心法分離原代LSECs,并采用氧-葡萄糖剝奪再恢復(OGD/R)構建肝缺血/再灌注模型。SEM顯示,正常組LSECs窗孔數較多,缺氧后窗口數減少;與模型組相比,PTE治療組LSECs窗口數顯著增加。這些證據說明肝臟I/R期間,PTE對于LSECs窗孔結構的完整性具有很好的保護作用,進而維持肝臟的微循環,保證能量供應和物質運輸。
HO-1是催化血紅素降解限速酶,是炎癥細胞和組織損傷的關鍵介質,通過減輕氧化應激損傷,調節細胞周期以及改善微循環發揮有益作用。有相關研究表明通過上調HO-1可以減輕LSECs中的缺血性損傷[15]。本課題組發現,PTE能夠誘導OGD/R后LSECs內HO-1表達,降低LSECs缺氧-復氧損傷。
綜上所述,PTE通過保護LSECs的結構和功能減輕肝臟免受缺血/再灌注損傷。該過程中,PTE通過保護LSECs窗孔結構的完整性,上調HO-1蛋白表達水平發揮重要作用。因此,本研究為PTE保護肝臟免受缺血性損傷提供了新的理論依據。