白刺NtBES1轉錄因子家族的鑒定及分析

王麗蓉，杜 萌，易 丹，王 博，楊鑫光，李 毅*

(1 青海民族大學 青海省特色經濟植物高值化利用重點實驗室，西寧 810007；2 甘肅農業大學 林學院，蘭州 730070；3 青海民族大學 青藏高原生態環境研究所，西寧 810007；4 青海民族大學 青藏高原資源化學與生態環境保護國家民委重點實驗室，西寧 810007；5 青海民族大學 土地資源勘測與規劃實驗室，西寧 810007；6 青海民族大學 青藏高原種質資源研究與利用實驗室，西寧 810007)

油菜素內脂(brassolidin，BR)是植物特有的類固醇激素[1]，它在調節植物的細胞伸長與分裂、發育、感光、衰老以及抗逆性等方面起著重要作用[2-6]。BR信號的轉導始于BR與細胞質膜上受體蛋白的結合，通過磷酸化反應將信號傳至細胞內，繼而細胞內BR通路上的負調控蛋白被抑制，同時正調控轉錄因子BRI1-EMS-suppressor 1(BES1)被激活并進入細胞核中與其他轉錄因子以及輔酶因子結合，作用于靶基因的啟動子區域進行轉錄調控[6]。研究表明能被BES1調控的基因有5 000～8 000種[6-9]，其中大部分被誘導，少部分被抑制，被誘導基因的啟動子區包含一個E-Box (CANNTG)結構域，而被抑制基因的包含一個BR響應元件BRRE [CGTG(T/C)G][6-7]。BES1除參與BR通路的調控活動外，還參與多種應激活動，并在不同植物中呈現出多樣化的功能[6-7,10-15]。隨著研究的不斷拓展，BES1及其家族已從越來越多的物種中被鑒定出來。目前從擬南芥、玉米、小麥、番茄、大白菜、甘藍型油菜、馬鈴薯和棉花中分別鑒定出8、11、15、9、15、29、9和22個BES1家族成員[16-23]。這些BES1與BZR1、BEH1～BEH4同源，均具有一個高度保守的非典型堿性螺旋-環-螺旋結構(bHLH)，是典型的bHLH轉錄因子。然而無論是直系還是旁系同源成員在結構、亞細胞定位、作用機制以及脅迫下的表達模式上均存在差異[6,12,16-23]。

干旱和鹽脅迫是植物在生長發育中最常遇到的非生物脅迫。一些學者對BES1與耐旱或耐鹽性的關系展開了研究：在棉花幼苗中發現干旱脅迫下BES1能響應外源噴施的油菜素內酯，并能提高棉花的抗旱能力[24]；在馬鈴薯的研究中發現過表達馬鈴薯的SlBZR1D基因能夠增強擬南芥轉基因株對BR的響應并能提高轉基因株的耐鹽性，還發現SlBZR1D對馬鈴薯植株的耐鹽性具有正向調控作用[19]。另外，研究者們還對BES1在干旱或鹽脅迫下的作用機制展開了研究，其中包括BES1可調控獨腳金內酯主導的擬南芥對干旱的轉錄記憶[25]；一些學者還對BES1協調BR誘導的生長發育與抗逆的平衡機制展開了研究，發現BES1與WRKY協作可抑制干旱脅迫響應基因的表達；TINY聯合TINY2/3可通過與BES1發生拮抗作用來協調生長與脅迫響應[6]；BES1在干旱中可通過DSK2調控的選擇性自噬作用被降解，從而抑制BR調控的生長[6]；RD26可通過抑制BES1的活性來提高對干旱的響應[6]。此外，目前對BES1在干旱或鹽脅迫下表達模式的報道較多，并且不同植物、不同成員對脅迫的響應存在差異：在干旱處理下，茶樹的CsBES1-2～CsBES1-9的表達量顯著提高[16]；小麥的3個成員BES1d1、2、3在PEG或者干旱脅迫下表達上調，而剩余成員無響應[18]；在棉花中，BR誘導的GhBES1在干旱脅迫下能夠快速表達[22]；在楊樹中，PeBZR1在干旱脅迫下被抑制，但在鹽脅迫下表達相對穩定[22]；馬鈴薯的9個BES1成員中，StBES1-2、6、8均能受到干旱誘導而上調，8個StBES1成員能受到鹽脅迫的誘導，而StBES1-4、StBES1-7和StBES1-9分別在干旱和鹽脅迫下表達下調[22]；辣椒的BES1基因則對鹽脅迫誘導不敏感[26]。BES1在不同植物中對干旱和鹽脅迫不同的響應模式證明BES1成員在耐旱和耐鹽過程中發揮多種不同的作用。

白刺，又名唐古特白刺(Nitrariatangutorum)，為蒺藜科(Zygophyllaceae)白刺屬(Nitraria)第三紀孑遺灌木，在中國主要分布于西北干旱半干旱地區以及東部沿海鹽漬化地區[27]。白刺被譽為沙漠櫻桃，具有很高的營養價值、藥用價值和飼用價值，還可為中藥鎖陽提供寄居環境，因此它具有很高的經濟開發潛力[28-30]。除此之外白刺還具有很強的耐干旱、鹽堿以及防風固沙的能力，是中國荒漠半荒漠地區群落的建群種[31]。目前，對白刺的抗逆機理從表型和分子層面展開了一系列研究[31-41]，其中，抗逆分子機理研究主要是對一些抗逆基因如14-3-3、NtCBL1等在干旱或鹽脅迫下表達特征的分析[36-37]，或者對一些抗逆基因如NHX、CIPK11等的生理功能驗證的研究[38-39]；另外還有一些研究是基于大數據組學對白刺群體基因或代謝物在干旱或鹽脅迫下的變化規律展開的研究[40-41]，本實驗室已測的白刺在干旱脅迫和鹽脅迫下混合樣品的三代轉錄組數據(原始數據已上傳至NCBI GenBank數據庫，登錄號：SAMN16709478)中就發現了一批BES1的轉錄本，說明白刺的BES1在干旱或鹽脅迫下會表達，它們可能在白刺耐干旱或耐鹽過程中發揮作用。如上文所述，BES1轉錄子家族在植物耐干旱和耐鹽中發揮重要作用并且功能多樣[1,3,7,16,22]，白刺作為耐干旱和鹽堿的代表性植物對其BES1基因的研究十分必要。以單分子實時測序技術(SMRT)為代表的三代全長轉錄組測序技術，在測序深度和精度上均優于二代技術，它能提供更為準確和豐富的物種基因組背景信息[42]。本研究以白刺全長轉錄組數據為基礎，首先鑒定出BES1轉錄因子家族成員，利用生物信息學方法預測它們的理化性質及功能，分析它們的系統進化關系；利用熒光定量PCR分析家族基因在不同脅迫下的表達模式，以期為后續深入研究白刺BES1家族成員的功能以及白刺耐干旱或耐鹽等抗逆分子機理奠定基礎。

1 材料和方法

1.1 材料培養與處理

白刺果實于2019年8月采自青海省格爾木市諾木洪農場，經揉搓清洗后獲得實驗所需種子，之后將種子冷藏于4 ℃備用。當年10月，種子用75%酒精浸泡30 s后用無菌水清洗3遍，種于裝有河沙(清洗并高溫消毒)的小花盆中。播種后，將花盆置于培養間培養，培養條件為：光照18 h，黑暗6 h，白天溫度(26±1)℃，夜晚溫度(22±1)℃，相對濕度60%～70%。每3 d向花盆底部托盤中灌入蒸餾水至沙子完全浸濕。

2個月后選取生長良好且長勢一致的白刺幼苗并移至1/2霍格蘭(Hoagland)營養液中，培養條件同上，水中全天充氧。適應培養3 d后，將材料移至用營養液配制的處理液中進行脅迫處理。干旱脅迫用不同濃度(10%和30%)PEG營養液模擬，處理2、12、24 h后取樣；鹽脅迫用2個濃度(200和450 mmol/L)NaCl營養液，處理2、12、24和48 h后取樣，每3株苗為1個生物學重復，收集全部葉片后迅速放入液氮中，之后放入-80 ℃冰箱保存待用。以營養液培養的植株為對照(即處理 0 h)。

1.2 數據分析方法

1.2.1 家族成員鑒定利用本實驗室已獲取的白刺三代轉錄組的注釋信息初篩得到了24條BES1家族轉錄本序列，除去重復序列后，用DNAMAN V6.0 將轉錄本序列翻譯成氨基酸序列并放入Pfam(http://pfam.xfam.org/)在線軟件和NCBI的CDD(https://www.ncbi.nlm.nih.gov/cdd)數據庫中進行保守結構域分析[16]，通過與2個數據庫的比對，去除不含有BES1_N保守結構域的序列，之后利用本地的CDS(Coding Sequence)數據庫和ORF Finder(https://www.ncbi.nlm.nih.gov/orffinder/)在線軟件共同預測白刺BES1蛋白序列CDS的完整性，去除不完整的序列，最終序列鑒定為白刺NtBES1蛋白序列[43]。

1.2.2 蛋白理化性質預測分析利用ExPASy在線程序ProtParam(https://web.expasy.org/protparam/)分析白刺NtBES1序列的氨基酸數目、分子量、等電點、不穩定指數和親疏水性[16]；利用在線軟件PSORT(http://www.psort.org/)預測蛋白的亞細胞定位；利用在線軟件SOPMA(https://npsa-prabi.ibcp.fr/cgi-bin/npsa_automat.pl?page=npsa_sopma.html)預測蛋白的二級結構；通過在線工具NetPhos3.1Servert(/www.cbs.dud/servicesNetPhos/)對蛋白的磷酸化位點蘇氨酸(T)、絲氨酸(S)和酪氨酸(Y)進行預測，并進行統計分析[43]。

1.2.3 保守基序及保守結構域的分析利用DNAMAN V6.0對白刺的NtBES1氨基酸序列進行多序列比對，獲得BES1_1保守序列。利用在線軟件MEME(https://meme-suite.org/meme/)分析蛋白序列的保守基序motif[44]，經驗證基序最多值設置為10，其余為默認值，利用TBtools工具對導出的MEME文本結果進行分析并繪制保守基序圖[3]。

1.2.4 進化樹的構建基于上述多序列比對后的氨基酸序列，利用MEGA 7.0軟件[44]，采用鄰接法(bootstrap 1 000)建立系統進化樹；用相同方法建立白刺與擬南芥(8條)、水稻(6)、玉米(11條)等物種BES1氨基酸序列系統進化樹。

1.2.5 熒光定量PCR總RNA按RNAprep Pure Plant Kit RNAprep Pure植物總RNA提取試劑盒(北京天根生化科技有限公司，北京)的說明在低溫無菌條件下提取。cDNA利用PrimeScriptTMRT reagent Kit with gDNA Eraser(Perfect Real Time)反轉錄試劑盒(TaKaRa北京寶生物公司，北京)合成，反轉錄過程按照說明進行操作，反轉錄程序：反轉錄反應(37 ℃，15 min)；反轉錄酶失活反應(85 ℃，5 s)；4 ℃保存。利用TB Green Premix Ex TaqTMⅡ(Tli RNaseH Plus)試劑盒(TaKaRa北京寶生物公司，北京)進行qRT-PCR實驗。使用ABI Stepone Plus熒光定量PCR儀(Thermo Fisher Scientific 公司，新加坡)檢測樣品的CT值。首先將cDNA稀釋至1/10原濃度備用，qRT-PCR反應體系(20 μL)：TB Green Premix Ex TaqⅡ(Tli RNaseH Plus)(2×conc.) 10 μL，cDNA模板2.5 μL，正反向引物各0.8 μL(10 μmol/L)，ddH2O 5.5 μL，ROX 0.4 μL。反應程序：95 ℃預變性2 min，95 ℃變性10 s，60 ℃復性30 s，72 ℃延伸20 s，40個循環，設置3個技術重復。特異性引物由Primer在線軟件(http://www.primer3plus.com/cgi-bin/dev/primer3plus.cgi)設計，特異性引物序列如表1所示。內參基因為EF1α基因。預實驗以CK、30% PEG-2 h和450 mmol/L NaCl-24 h的RNA為模板，分析各個基因引物的溶解曲線及CT值，選取表達量相對較高的成員進行后續分析。利用2-ΔΔCT方法計算基因在不同處理中的相對表達量[16]。

表1 熒光定量PCR引物序列Table 1 The primers used in qRT-PCR

1.3 數據分析

利用Excel 2010和SPSS 21.0軟件對數據進行統計和分析。One-way ANOVA單因素方差分析方法用于分析不同處理間的差異顯著性[36]。

2 結果與分析

2.1 家族成員及其理化性質

通過篩選、鑒定，從白刺轉錄組數據中共獲得7條均具有完整CDS的BES1序列，命名為NtBES1-1～NtBES1-7。理化性質分析結果顯示(表2)：白刺的7條NtBES1蛋白序列的氨基酸數目在86 aa(NtBES1-4)～422 aa(NtBES1-6)之間，分子量在9.75 kD(NtBES1-4)～47.53 kD(NtBES1-6)之間，理論等電點在5.29(NtBES1-5)～10.22(NtBES1-4)之間，不穩定指數范圍在34.88(NtBES1-1)～75.02(NtBES1-7)之間。平均親水系數均為負值，表明這些蛋白均為親水性蛋白。亞細胞定位預測結果顯示NtBES1-6定位在細胞質中，其余的成員均被定位在細胞核中。

表2 白刺NtBES1基因家族成員理化性質Table 2 The physic-chemical characters of NtBES1 family members in N. tangutorum

對7個NtBES1蛋白的磷酸化修飾位點進行預測，發現所有蛋白中絲氨酸的數目最多，酪氨酸數目最少。NtBES1-4中的每類氨基酸磷酸化位點數目均是最少的，總共有9個磷酸化位點，NtBES1-2中的最多，有45個，且最多的是絲氨酸，NtBES1-6中具有最多的酪氨酸(表3)。

表3 白刺NtBES1蛋白磷酸化位點預測Table 3 Prediction of NtBES1 protein phosphorylation sites in N. tangutorum

2.2 保守結構

對氨基酸序列進行多序列比對，發現所有的序列均具有完整bHLH結構的BES1_N保守結構域(圖1)[3]。保守基序分析結果顯示，NtBES1家族成員共包含10種基序，每個成員所含基序的數量和種類存在一定的差異但是至少包含一個Motif1(BES1_N結構域)。結合系統發育樹分析，發現GroupI、GroupⅡ和GroupⅢ中的蛋白在保守基序組成上存在明顯差異，而同一組成員的基序組成十分相似(圖2，B)：GroupI的3個蛋白(NtBES1-2、NtBES1-3、NtBES1-7)均含有Motif6、Motif8、Motif9、Motif7和Motif10；GroupⅢ的3個蛋白(NtBES1-1、NtBES1-5、NtBES1-6)均含有Motif5且至少包含一個糖基水解酶保守結構域(Glyco_hydro_14，Motif2或Motif3)。

圖1 白刺NtBES1家族蛋白的BES1_N 結構域Fig.1 The BES1_N domain of NtBES1 family proteins in N. tangutorum

2.3 系統發育關系

基于白刺和擬南芥等8種植物的BES1蛋白序列構建的系統進化樹(圖 3)分為三組，分組結果與它們單獨分組(圖2，A)的基本一致：Group A對應GroupⅠ；GroupⅠ和NtBES1-4被聚在另外一大組Group B中，在組內NtBES1-4又單獨成一支。物種間相似度高的成員組合包括：NtBES1-2與AtBES1-4，NtBES1-3與AtBES1-1、AtBES1-7，NtBES1-7與MtBES1-8，NtBES1-5與AtBES1-8，NtBES1-1、NtBES1-6與CaBES1-2和SIBES1-1。被聚類的三組中僅有Group C中沒有分布NtBES1的任何成員，分布的物種均為單子葉植物的成員：ZmBES1-6、OsBES1-6、CaBES1-8以及SIBES1-8，這些家族成員可能是單子葉植物和雙子葉植物分化后在單子葉植物中進化出的。

圖2 白刺NtBES1蛋白系統進化關系(A)及保守基序分析(B)Fig.2 Phylogenetic relationship of NtBES1 proteins in N. tangutorum (A) and conserved motif analysis(B)

Nt.白刺；At.擬南芥；SI.番茄；Cs.黃瓜；Ca.辣椒；Mt.蒺藜苜蓿；Os.水稻；Zm.玉米；Si.谷子圖3 白刺與其他物種BES1蛋白的系統進化關系Nt.Nitraria tangutorum；At.Arabidopsis thaliana；SI.Solanum lycopersicum；Cs.Cucumis sativus；Ca.Capsicum annuum；Mt.Medicago truncatula；Os.Oryza sativa；Zm.Zea mays；Si.Setaria italicaFig.3 Phylogenetic relationship in BES1 proteins between N. tangutorum and other species

2.4 功能注釋及解析

對7個 NtBES1成員在公共數據庫(COG、KEGG、GO)中的注釋結果進行分析，發現NtBES1在COG中被注釋到2個功能類中；KEGG注釋顯示NtBES1參與2條通路活動；NtBES1在GO中被注釋到3個功能類中，其中“生物學過程”(Biological Process)共有13個亞類，“細胞成分”(Cellular Component)有3個亞類，“分子功能”(Molecular Function)有3個亞類。對各數據庫中的所有注釋進行歸納分析，NtBES1的功能可被分為16種(表4)。除了NtBES1-1、NtBES1-5外，其余成員均參與轉錄調控；NtBES1-3和NtBES1-4的功能與其他基因的功能差異最大且NtBES1-3注釋到最多的功能；NtBES1-1、NtBES1-3、NtBES1-6均參與植物生長發育過程；NtBES1-3參與生物脅迫防御活動；NtBES1-1、NtBES1-5、NtBES1-6參與糖類代謝，其中NtBES1-5是“淀粉和蔗糖代謝”KEGG通路中的基因；另外還有3個成員參與“植物激素信號”KEGG通路中油菜素內酯素介導的信號通路。

表4 白刺NtBES1家族基因功能注釋匯總Table 4 Summary of functional annotation of NtBES1 family genes of N. tangutorum

2.5 脅迫下的表達分析

白刺的自然生境特征以干旱和鹽堿為主，為探索NtBES1家族基因在白刺應對干旱和鹽堿脅迫中的作用，利用熒光定量PCR對NtBES1基因家族成員在干旱和鹽堿脅迫下的表達特征進行分析。根據預實驗結果，選取表達水平相對較高的基因NtBES1-2、NtBES1-4和NtBES1-6用于表達模式分析。

如圖4所示，在不同濃度PEG處理下，NtBES1-2、NtBES1-4、NtBES1-6在各時間段均有表達。其中，NtBES1-2和NtBES1-6有相似的表達模式：在低濃度處理下表達均下調；高濃度處理早期(2 h)表達顯著上調至最高，之后隨時間延長表達量降低且低于對照(0 h)。NtBES1-4有不同的表達模式：不論是高濃度還是低濃度處理，在干旱刺激之初均顯著上調；之后在低濃度處理下，12 h時出現顯著下調且低于對照，隨著脅迫時間的延長，在24 h時又顯著增加至最高；而在整個高濃度脅迫過程中隨時間推移表達量呈現先增加后減少的模式，2 h時表達量最高。

如圖5所示，在不同濃度NaCl處理下，3個基因的表達量總體均上調，其中，低濃度處理的表達量在脅迫初期(2 h)開始顯著增加；高濃度處理的在脅迫中、后期(12 h、24 h)才開始顯著增加，且在脅迫后期(24 h)增加至最高，但是每個基因的表達特征又存在一定差別。NtBES1-2在低濃度處理下，表達量整體呈現先增加后減少的模式，2 h的表達量最高，是對照組(0 h)的8.4倍；在高濃度處理下呈現逐漸增加的趨勢，48 h的表達量上調至最高，是對照組(CK)的4.5倍。NtBES1-4在低濃度處理下表達模式與NtBES1-2類似，高濃度處理下在24 h時的表達量顯著增加為對照組的13.9倍，其余處理下較對照無顯著變化。NtBES1-6在低濃度處理下2 h后表達量顯著上調且之后相對平穩；在高濃度處理下總體呈現先增加后減少的模式，24 h表達量最高，是對照組的8.6倍。

不同小寫字母表示不同處理時間差異顯著(P<0.05)，下同。圖4 不同濃度PEG處理下白刺NtBES1轉錄因子家族基因的相對表達水平Bars marked with different normal letters showed significant difference at the 0.05 level;the same as belowFig.4 Relative expression levels of three representative genes of N. tangutorum NtBES1 transcription factor family under different concentrations of PEG

圖5 不同濃度NaCl處理下白刺NtBES1轉錄因子家族代表基因的相對表達水平Fig.5 Relative expression levels of three representative genes of N. tangutorum NtBES1 transcription factor family under different concentrations of NaCl

3 討 論

生物在進化中不斷淘汰不適應環境的基因，進而得以適應環境，這種適應最終依賴于蛋白質結構與功能的統一[45]，本研究對NtBES1家族蛋白的分析結果亦發現NtBES1蛋白結構與功能的統一。BES1轉錄因子的bHLH結構域包含兩段高度保守且功能不同的序列：N端序列的主要功能是與目標DNA的E-box或BRRE序列相結合，C端序列的主要功能是與其他蛋白結合，并啟動調控過程，進而調控多種生理活動[6]。保守結構分析顯示所有的NtBES1均包含bHLH完整的兩端結構，這是NtBES1調控功能發揮的基礎。另外，GroupⅢ 中的3個蛋白中均發現了糖基水解酶保守基序，結合功能注釋結果發現，所有的成員中，僅這3個成員被注釋到多糖分解或β-淀粉酶活動的功能。無規則卷曲往往是蛋白質分子特殊構象和功能實施的重要區域[46]，因此這些結構的高占比必定會使基因功能更多樣化，數據庫注釋信息也證實了這點，無規則卷曲占比較高的NtBES1-3被注釋到最多的功能且功能與其他基因差別很大，除涉及其他蛋白有的功能外，還涉及靜止中心組織等特殊的功能。這些結果均能反映NtBES1蛋白結構與功能的統一。

BR信號的細胞轉導過程涉及多個空間和反應，首先BR信號從細胞外進入細胞質中，再傳導至細胞核中才可與目標基因結合并起到調控作用，其中BES1是將信號從細胞質傳遞至細胞核內的關鍵基因[6]。在亞細胞定位預測中，大部分基因僅被定位于細胞核中，推測它們在細胞核內的轉錄調控中起著重要的作用，而僅有NtBES1-6被定位于細胞質中，推測它在BR信號從細胞質轉至細胞核的過程中起著重要作用，磷酸化位點預測結果也可證明該推測。蛋白磷酸化是生物體內細胞信號傳導最重要的機制[36]，磷酸化底物蛋白的氨基酸殘基主要有兩種，一種是絲氨酸(含蘇氨酸)，另一種是酪氨酸，絲氨酸磷酸化的主要作用是變構蛋白質以激活蛋白質或酶的活力，而酪氨酸磷酸化除了激活功能外，更重要的功能是進行信號的多次傳遞。在磷酸位點預測中，我們發現NtBES1-6的酪氨酸磷酸化位點最多，這成為NtBES1-6將信號從胞質傳至胞內的結構基礎。

基因表達模式分析可在一定程度上預測基因參與的生理活動和基因功能。在PEG模擬干旱的實驗中，低濃度的PEG脅迫下，只有NtBES1-4表達上調，對于高濃度的PEG的誘導，3個基因均出現了上調，且均在早期(2 h)表達量最高，然而只有NtBES1-4在12 h時仍然較CK處于上調狀態，另外2個基因的表達均受到抑制，由此可以說明NtBES1-4在白刺響應PEG脅迫的過程中起著重要作用，可能是白刺耐干旱過程中的重要基因。NtBES1-2、NtBES1-6在PEG脅迫下受到了一定程度的抑制，這與杉木(Cunninghamialanceolata)和馬鈴薯中的研究結果相似[3]，ClBES1在干旱脅迫下也出現了表達抑制的情況，這可能與它們除Motif1(BES1_N)外的其他的結構有關。鹽脅迫實驗中，低濃度鹽處理下NtBES1-2和NtBES1-4在脅迫早期(2 h)和中期(12 h)顯著上調，且NtBES1-2表達量更高；高濃度鹽脅迫下，3個基因從中期(12 h)開始陸續上調，且在24 h后表達量最高，雖在此過程中NtBES1-4貢獻了最高的表達量，但它僅在24 h上調，而NtBES1-6從中期(12 h)到晚期(48 h)表達均上調，所以就整個過程來看，NtBES1-6的貢獻更突出。綜上，NtBES1-2和NtBES1-6分別在低濃度和高濃度NaCl脅迫的耐鹽過程中起到更重要的作用。另外，3個基因在高濃度鹽脅迫24 h時均受到強烈誘導，說明該高濃度處理下24 h是白刺的一個生理轉折點，此時白刺可能通過調整更多的生理活動去適應更長時間的高鹽脅迫。

綜上所述，白刺NtBES1成員不同的結構特征以及在干旱和鹽脅迫下的不同表達模式表明這些成員具有不同的功能，本研究不僅豐富了植物BES1轉錄因子的信息，還補充了白刺抗逆分子機理的內容，可為白刺及其他作物、林木和牧草的人工栽培、遺傳改良以及綜合開發利用提供理論參考。