段麗穎,任欠欠,杜義龍,李艷榮,趙勝男,潘海峰
(承德醫學院,河北省中藥研究與開發重點實驗室,河北 承德 067000)
山楂葉為薔薇科山楂屬植物山里紅Crataegus pinnatifidaBge.var.majorN.E.Br 或山楂Crataegus pinnatifidaBge.的干燥葉,具有活血化瘀、理氣通脈、化濁降脂的功效,收錄于2020 年版《中國藥典》[1]中,常用于治療冠心病、心絞痛等心腦血管疾病[2]。現代研究表明,山楂葉富含黃酮類、萜類、有機酸等化合物[3],其中總黃酮是其發揮抗動脈粥樣硬化、降壓降脂、增加冠脈血流量等作用的主要活性成分[4-5],并且在改善糖脂代謝紊亂、降低血糖血脂方面也發揮著重要作用[6-7],但對其降低血糖方面的研究尚不完善。
中藥所含化學成分較為復雜,指紋圖譜可反映其整體性[8],同時借助聚類熱圖能以更直觀的方式展現數據疏密、樣品地區差異的變化,并且通過化學計量學方法可進行全面質量評價[9]。因此,本實驗以體外抑制α-淀粉酶、α-葡萄糖苷酶活性試驗考察山楂葉降糖作用,同時建立不同產地樣品UPLC 指紋圖譜,并采用雙變量相關分析、熱圖、聚類分析、主成分分析對該藥材進行質量評價,以期為其產地區分及質量研究提供參考依據。
1.1 儀器 Waters Acquity 超高效液相色譜儀(美國Waters 公司);Multiskan FC 酶標儀(美國Thermo Fisher Scientific 公司);JA5003 上皿天平(千分之一,天津天馬衡基儀器有限公司);AG245電子分析天平(瑞士梅特勒-托利多公司);DHG-9070A 電熱鼓風干燥箱(上海一恒科學儀器有限公司);HH-2 數顯恒溫水浴鍋(常州榮華儀器制造有限公司);WIGGENS TM-1 渦旋振蕩器(北京桑翌實驗儀器研究所);HC-2062 高速離心機(科大創新股份有限公司中佳分公司);KQ-700 超聲波清洗器(昆山市超聲儀器有限公司);TCP-010-096潔特細胞培養板(廣州潔特生物過濾股份有限公司);實驗室PH 計[瑞士梅特勒-托利多儀器(上海)有限公司];FW100 高速萬能粉碎機(天津市泰斯特儀器有限公司);MH-2 微型振蕩器(海門市其林貝爾儀器制造有限公司)。
1.2 試劑與藥物 α-淀粉酶(豬胰腺)(批號RM19Y304)、α-葡萄糖苷酶(批號RM20Y1225)、對硝基苯-β-D-吡喃半乳糖苷(PNPG,批號RM20Y807)(上海阿拉丁生化科技股份有限公司);阿卡波糖(批號113HO31,北京索萊寶科技有限公司);淀粉(批號RM1248-50KU,天津市光復精細化工研究所)。
綠原酸(批號18071907)、牡荊素葡萄糖苷(批號 20042305)、牡荊素鼠李糖苷(批號18060103)、牡荊素(批號16070601)、蘆丁(批號18122901)、金絲桃苷(批號19103001)、異槲皮素(批號18062702)對照品均購自成都普菲得生物技術有限公司。甲醇、乙腈、四氫呋喃為色譜純,均購自美國Thermo Fisher Scientific 公司;甲酸為分析純;水為純凈水(批號JYSPYL2027,杭州娃哈哈集團有限公司)。
山楂葉共15 批,于2020 年11 月采自全國各地,經全國老中醫藥專家(傳統鑒定)學術經驗繼承人孫寶惠主任藥師鑒定為薔薇科山楂屬植物山里紅Crataegus pinnatifidaBge.var.majorN.E.Br的干燥葉,均符合2020 年版《中國藥典》 一部項下要求,具體見表1。

表1 樣品信息Tab.1 Information of samples
2.1 UPLC 指紋圖譜建立
2.1.1 溶液制備
2.1.1.1 供試品溶液 山楂葉經粉碎機粉碎后過80 目篩,取約1.0 g,精密稱定,置于具塞三角瓶中,加入50 mL 60%甲醇,稱定質量,密封,超聲處理30 min 后靜置15 min,60%甲醇補足減失的質量,12 000 r/min 離心10 min,取上層清液,0.22 μm 微孔濾膜過濾,取續濾液,即得(質量濃度約為20 mg/mL)。
2.1.1.2 對照品溶液 精密稱取綠原酸、牡荊素葡萄糖苷、牡荊素鼠李糖苷、牡荊素、蘆丁、金絲桃苷、異槲皮素對照品適量,50%甲醇溶解,制成質量濃度分別為38.13、10.28、14.02、5.73、8.52、5.95、8.52 μg/mL 的溶液,即得。
2.1.2 色譜條件 ACQUITY UPLC HSS T3 C18色譜柱(2.1 mm×100 mm,1.8 μm);流動相水(含0.1%甲酸)(A)-(乙腈-四氫呋喃-甲酸)(120∶10∶0.1)(B),梯度洗脫(0~6 min,92%~89%A;6~10 min,89%~83% A;10~15 min,83%~83.5%A;15~18 min,83.5%~80%A;18~20 min,80%~66%A;20~22 min,66%~0A;22~24 min,0A);體積流量0.2 mL/min;柱溫30 ℃;檢測波長340 nm;進樣量2 μL;樣品室溫度25 ℃。
2.1.3 方法學考察
2.1.3.1 精密度試驗 取同一份供試品溶液(S2),在“2.1.2” 項色譜條件下進樣測定6 次,測得各共有峰相對峰面積RSD 均小于3%,相對保留時間RSD 均小于1%,表明儀器精密度良好。
2.1.3.2 穩定性試驗 取同一份供試品溶液(S2),于0、2、4、8、12、24 h 在“2.1.2” 項色譜條件下進樣測定,測得各共有峰相對峰面積RSD 均小于3%,相對保留時間RSD 均小于1%,表明溶液在24 h 內穩定性良好。
2.1.3.3 重復性試驗 取同一批藥材(S2),按“2.1.1.1” 項下方法平行制備6 份供試品溶液,在“2.1.2” 項色譜條件下進樣測定,測得各共有峰相對峰面積RSD 均小于3%,相對保留時間RSD均小于1%,表明該方法重復性良好。
2.1.4 圖譜生成 取對照品、供試品溶液適量,在“2.1.2” 項色譜條件下進樣測定,以S1 圖譜為參照,設置時間窗寬度為0.2 min,多點校正后采用中位數法生成指紋圖譜(圖1),以穩定性較好的23 個色譜峰為共有峰。再采用“中藥色譜指紋圖譜相似度評價系統”(2004A 版)對15 批樣品進行相似度評價,結果見表2。然后,通過對照品色譜圖(圖2)對共有峰進行指認,確定5、16、18、19、21、22、23 號色譜峰分別為綠原酸、牡荊素葡萄糖苷、牡荊素鼠李糖苷、牡荊素、蘆丁、金絲桃苷、異槲皮素。

圖1 15 批樣品UPLC 指紋圖譜Fig.1 UPLC fingerprints for fifteen batches of samples

表2 15 批樣品相似度Tab.2 Similarities of fifteen batches of samples

圖2 對照品UPLC 色譜圖Fig.2 UPLC chromatogram of reference substances
2.2 降糖活性研究 參考文獻[10]報道,并對實驗條件稍加調整。
2.2.1 溶液制備
2.2.1.1 樣品溶液 取“2.1.1.1” 項下供試品溶液續濾液1 mL 至蒸發皿中,水浴蒸干后以等體積PBS 緩沖液(pH 6.8)復溶,即得(質量濃度約為20 mg/mL)。
2.2.1.2 阿卡波糖溶液 稱取阿卡波糖(陽性藥)適量,PBS 緩沖液溶解,得1 mg/mL 母液,PBS 緩沖液稀釋成系列質量濃度,即得。
2.2.2 α-淀粉酶活性抑制實驗 取20 μL 不同質量濃度樣品溶液至1 mL 離心管中,再加入20 μL 0.35 U/mL α-淀粉酶溶液,渦旋5 s 并瞬時離心后在37 ℃下孵育15 min,加入20 μL 0.15%淀粉溶液,渦旋離心,在37 ℃下孵育15 min,加入80 μL DNS 溶液終止反應,煮沸5 min 后冰水浴冷卻至室溫,將離心管內的溶液轉移至96 孔板中,酶標儀上于540 nm 波長處檢測吸光度值,每個質量濃度平行3 份,作為樣品組;以等體積PBS 緩沖液代替α-淀粉酶溶液,其他操作同上,作為樣品對照組;以等體積PBS 緩沖液代替樣品溶液,其他操作同上,作為對照組;以等體積PBS 緩沖液代替樣品、α-淀粉酶溶液,其他操作同上,作為空白組;以等體積不同質量濃度阿卡波糖溶液代替樣品溶液,其他操作同上,作為陽性對照組,計算抑制率,公式為抑制率(%)={[(對照組吸光度-空白組吸光度)-(樣品組吸光度- 樣品對照組吸光度)]/(對照組吸光度- 空白組吸光度)} × 100%,再將數據導入SPSS 21.0 軟件計算IC50值,結果見表3。

表3 α-淀粉酶雙變量相關分析、色譜峰篩選、IC50值、主成分評分Tab.3 Bivariate correlation analysis,chromatographic peak screening,IC50 values and principal component scores for αpancreatic amylase
2.2.3 α-葡萄糖苷酶活性抑制試驗 在96 孔板中加入60 μL PBS 溶液,再加入20 μL 不同質量濃度樣品溶液、20 μL 0.5 U/mL α-葡萄糖苷酶,振蕩混勻,37 ℃孵育15 min;加入20 μL 2.5 mmol/L PNPG 繼續孵育15 min,加入80 μL 0.2 mol/L 碳酸鈉終止反應,酶標儀上于405 nm 波長處測定吸光度值,每個質量濃度平行3 份,作為樣品組;以等體積PBS 緩沖液代替α-葡萄糖苷酶溶液,作為樣品對照組;以等體積PBS 緩沖液代替樣品、α-葡萄糖苷酶溶液,作為空白組;其余同“2.2.2”項分組,按“2.2.2” 項下公式計算抑制率及IC50值,結果見表4。

表4 α-葡萄糖苷酶雙變量相關分析、色譜峰篩選、IC50值、主成分評分Tab.4 Bivariate correlation analysis,chromatographic peak screening,IC50 values and principal component scores for α-glucosidase
2.2.4 結果分析 由表3~4 可知,樣品對α-淀粉酶有一定抑制作用,但弱于阿卡波糖,而在抑制α-葡萄糖苷酶活性方面與阿卡波糖相當,甚至更優;對2 種酶活性的抑制效果與產地呈現一定相關性,其中河北、遼寧產樣品優于山東、山西產樣品。
2.3 統計分析
2.3.1 雙變量相關分析 以23 個共有峰峰面積及α-淀粉酶、α-葡萄糖苷酶的IC50值為原始數據,導入SPSS 21.0 軟件中進行雙變量相關分析,分別篩選出與抑制α-淀粉酶活性顯著相關(P<0.05),并符合KMO 檢驗(KMO>0.5)、Bartlett 球形檢驗(P<0.05)的13 個色譜峰,作為α-淀粉酶組;與抑制α-葡萄糖苷酶活性顯著相關,并符合相關檢驗標準的14 個色譜峰,作為α-葡萄糖苷酶組,結果見表3~4。
2.3.2 熱圖繪制 將色譜峰峰面積導入MetaboAnalyst 5.0 平臺(https:/ /www.metaboanalyst.ca/),選擇“Statistical Analysis” 模塊,對數據進行篩選、歸一化等操作,輸出熱圖,結果見圖3。由此可知,2 個熱圖結果具有相似性,并呈現一定聚類特征,整體上可分為3 類,河北、遼寧產樣品在成分含量上相似性較高,可聚為一類;山西、山東產樣品與河北、遼寧產樣品在成分含量上具有較大差異,分別聚為一類。

圖3 樣品熱圖Fig.3 Heat maps of samples
2.3.3 主成分分析 采用SPSS 21.0 軟件對色譜峰進行KMO 檢驗、Bartlett 球形檢驗,其中α-淀粉酶、α-葡萄糖苷酶KMO 度量值分別為0.789、0.642,Bartlett 球形檢驗P值均小于0.001,提示各變量間存在顯著相關性,可進行主成分分析。按照對應特征值>1 的原則提取主成分,α-淀粉酶提取1 個主成分,累積方差貢獻率達85.886%;α-葡萄糖苷酶提取2 個主成分,第一主成分特征值為10.549,貢獻率為75.353%,而第二主成分特征值為1.657,貢獻率為11.834%,累積方差貢獻率達87.187%。結合初始因子載荷矩陣(表5)及公式Fi=A×ZX(A為特征向量矩陣,ZX 為標準化數據矩陣)計算主成分得分,再結合各成分貢獻率建立評分模型,分別為Fα-淀粉酶組=0.859 ×F1、Fα-葡萄糖苷酶組=0.753×F1+0.118×F2,并進行排序,結果見表3~4。由此可知,2 種酶主成分評分排序一致,均以河北、遼寧產樣品較高,排名靠前;山東、山西產樣品較低,排名靠后。

表5 初始因子載荷矩陣Tab.5 Loading matrices for initial factors
本實驗對流動相組成進行考察,主要關注有機相乙腈,因其分離度不好,故加入不同比例的四氫呋喃以使分離度得到改善,同時峰形不理想,故又加入一定比例的甲酸得以改善。最終確定,最優流動相為水(含0.1%甲酸)-[乙腈-四氫呋喃-甲酸(120∶10∶0.1)],此時各成分分離效果最好,并且可改善前期由于流動相混合不充分導致的色譜峰前延問題。
由表3~4 可知,山楂葉對α-葡萄糖苷酶活性的抑制作用顯著優于α-淀粉酶,峰1、2、4、5(綠原酸)、7、9、11、18(牡荊素鼠李糖苷)、21(蘆丁)與抑制α-淀粉酶、α-葡萄糖苷酶活性均具有顯著相關性,并且α-葡萄糖苷酶相關性系數普遍高于α-淀粉酶。另外,5 號峰(綠原酸)、16 號峰(牡荊素葡萄糖苷)、18 號峰(牡荊素鼠李糖苷)、19 號峰(牡荊素)、21 號峰(蘆丁)、22 號峰(金絲桃苷)、23 號峰(異槲皮素)與抑制α-葡萄糖苷酶活性均顯著相關,并且大多存在單糖、寡糖結構,具有α-葡萄糖苷酶抑制劑化學結構特征[11-12],可能是山楂葉抑制α-葡萄糖苷酶活性優于α-淀粉酶的原因。
河北、遼寧產山楂葉對α-淀粉酶、α-葡萄糖苷酶活性的抑制效果略高于山東、山西產,其原因可能與經緯度有關。本實驗中15 批樣品采收于河北承德、遼寧葫蘆島、山東臨沂、山西運城,其中河北承德樣品采自北緯40°29′57″、東經117°26′38″;遼寧葫蘆島樣品與其接近,為北緯40°37′10″、東經119°40′22″;山東臨沂、山西運城樣品經緯度相近,分別為北緯35°27′2″、東經117°59′10″及北緯35°20′58″、東經111°10′38″。體外降糖實驗結果顯示,山楂葉分組趨勢與緯度信息有較高的相關性,并且其產地的海拔、日照時間、氣溫、降水量等因素可能會影響黃酮含量,進而影響體外降糖試驗結果。
本實驗根據山楂葉對α-淀粉酶、α-葡萄糖苷酶活性的抑制作用及其UPLC 指紋圖譜的共有峰數據進行雙變量相關分析,采用主成分分析進行綜合評分,發現所得結果與體外降糖實驗結果相互印證,表明該方法科學可靠,可用于山楂葉產地區分、體外降糖效果評價,也能為今后全面評價該藥材質量提供數據支持及方法參考。