不同LED處理對油桃果實采后類胡蘿卜素及可溶性糖代謝的影響

孫亞靜 王 燕 郝雅婧 周丹丹 屠 康 ，*

（1南京農業大學食品科技學院，江蘇 南京 210095；2南京林業大學輕工與食品學院，江蘇 南京 210037）

油桃（Prunuspersicavar.nectarine）表面光滑、無毛，果實色澤亮麗，果肉厚而脆嫩、香味濃郁，富含維生素C及多酚、類胡蘿卜素等多種生物活性物質，深受廣大消費者的喜愛［1-2］。油桃屬于呼吸躍變型果實，成熟期在高溫季節，采后易衰老、質地變軟、風味變差，嚴重影響果實的感官、質構品質和商品價值，因此采后選擇合適的貯藏保鮮技術以延長其貨架期顯得尤為重要［3-4］。

類胡蘿卜素是油桃果實主要的呈色物質，包含胡蘿卜素類和葉黃素類，不僅是重要的維生素A原，還具有預防疾病及保健的作用［5-6］。類胡蘿卜素分子中含有共軛雙鍵，該結構對400～500 nm 波長的光有較強的吸收，從而使果實呈現從黃色、橙色到紅色不同的色澤［7］。類胡蘿卜素的生物合成主要通過異戊二烯途徑，可溶性糖經過糖酵解途徑可以產生丙酮酸和3-磷酸甘油醛（3-phosphoglyceraldehyde，3-GAP），然后通過2-C-甲基-D-赤蘚糖醇-4-磷酸（2-C-methyl-Derythritol-4-phosphate，MEP）途徑為類胡蘿卜素的合成提供前體物質——異戊烯焦磷酸（isopentenyl pyrophosphate，IPP）［6，8］。因此，果實中的可溶性糖含量對類胡蘿卜素的積累至關重要，同時，果實中類胡蘿卜素的組成和含量也會對果實的色澤產生影響。

目前已開發多種技術用于豐富采后貯藏期間果實中的生物活性物質，其中，發光二極管（light-emitting diode，LED）照射作為一種無殘留的物理方法，已被廣泛應用于番茄［9-10］、柑橘［11］、甜橙［12-13］、藍莓［14］、草莓［15］和櫻桃［16］等果實的采后保鮮，并證明對果實中一些生物活性物質產生了積極影響［17］。例如，采用紫外線（ultraviolet，UV）和LED 聯合處理番茄果實，果實中的類胡蘿卜素含量幾乎增加了一倍［18-19］。果實中酚類化合物柚皮素、蘆丁、咖啡酸等含量在LED 光照下也會增加［20］。Ma 等［12］發現，LED 藍光可以誘導橙皮中葉綠素和總類胡蘿卜素的積累，并改變類胡蘿卜素的組成。此外，采后藍光照射還可促進甜櫻桃中花青素的積累［16］。然而，目前采用不同LED 光照處理油桃的研究較少，對LED 如何影響采后油桃果實中類胡蘿卜素的代謝及其與果實色澤和可溶性糖含量之間的關聯性研究還鮮見報道。因此，本研究以紫金紅3 號油桃為試材，通過對其進行不同光質的LED 處理，探究不同LED 光照處理對油桃果實采后色澤、類胡蘿卜素組成和含量及可溶性糖的影響，并分析類胡蘿卜素與果實色澤及可溶性糖含量之間的相關性，以期建立果實色澤、營養及風味品質之間的聯系，為LED 更好地應用于油桃果實采后品質的調控提供理論依據。

1 材料與方法

1.1 材料與試劑

紫金紅3號油桃，2021年6月3日采摘于江蘇省南京市棲霞區八卦洲紅杜鵑農業生態園。樣品選用盛花期后95 d 左右的果實，采摘后用20 ℃空調車于1 h 內運回實驗室，選擇色澤、大小一致，無機械損傷，無病害的360個油桃果實用于試驗。

紫黃質標準品，美國Sigma 公司；葉黃素、玉米黃素、β-胡蘿卜素標準品，上海源葉生物科技有限公司；β-隱黃質標準品，北京索萊寶科技有限公司；甲醇、乙腈（色譜純），美國天地有限公司；甲基叔丁基醚（色譜純），美國阿拉丁工業公司；葡萄糖、果糖、蔗糖標準品，上海源葉生物科技有限公司；提取試劑正己烷、丙酮、無水乙醇、甲基叔丁基醚、甲醇、氫氧化鉀、丙酮、氯化鈉均為國產分析純。

1.2 儀器與設備

LB-300-Ⅱ型光照培養箱（帶有紅、藍、白色光源燈板），上海龍躍儀器設備有限公司；LC-20A型高效液相色譜儀（配有SPD-M20A PDA 檢測器及ELSD 檢測器），日本島津公司；YMC-C30色譜柱（4.6 mm×250 mm，5 μm），日本YMC公司；碳水化合物分析柱，美國Agilent公司；Multiskan FC 型酶標儀，美國賽默飛世爾科技公司；ZGDCY-24SY 水浴氮吹儀，上海梓桂儀器有限公司；3K15 冷凍離心機，德國Sigma 公司；BS-1F 型恒溫振蕩培養箱，常州國華電器有限公司；CR-10型便攜式色差儀，日本Minolta公司。

1.3 試驗方法

1.3.1 樣品處理 油桃散除田間熱后，隨機分為4組，置于光照培養箱中，采用藍光（400～500 nm，445 nm）、紅光（600～690 nm，655 nm）和白光（400～690 nm）3 種LED光源處理，設定光照強度為40 μmol·m-2·s-1，將果實中縫線平行于燈板放置，果實上表面距離燈板20 cm，以黑暗（不進行光照處理）條件作為對照。果實在溫度（20±1.5）℃、相對濕度85%條件下處理8 d。處理期間，每12 h將油桃垂直翻轉180°，以確保果實的所有部分都暴露在相同水平的光照強度下。每隔2 d取樣，每次隨機選取15個果實，試驗重復3次。取樣選取光照射面靠近果皮1 cm 厚的果肉，液氮速凍后保存于-80 ℃冰箱。以采摘散除田間熱后不做任何處理的果實作為第0 天的樣本，并于取樣當天測定果肉顏色參數，每個分析設置3個重復。

1.3.2 油桃果肉顏色的測定 采用CR-10 型便攜式色差儀測定油桃果肉的L*、a*和b*值。油桃果實去掉果皮后，選擇果實中縫線對稱的4 個點進行測定，每組測定10 個果實。L*、a*、b*分別表示果實的亮暗、紅綠程度（+a*表示偏紅，-a*表示偏綠）及黃藍色差（+b*表示顏色偏黃，-b*表示顏色偏藍）。色彩飽和度C*、色調角h°及色澤指數（color index of red grape，CIRG）根據式（1）～（3）計算：

1.3.3 油桃果實中類胡蘿卜素的提取和測定

1.3.3.1 類胡蘿卜素的提取 參考Han 等［21］的方法并稍加修改。稱取6 g 油桃果肉在液氮中充分研磨成粉末。精確稱取0.6 g 油桃果肉粉末于10 mL 離心管中，加入3.0 mL正己烷/丙酮/無水乙醇［2∶1∶1，V/V/V，含0.1% 2，6-二叔丁基-4-甲基苯酚（butylated hydroxytoluence，BHT）］提取液，立即渦旋30 s 以充分混勻，然后于4 ℃、12 000 r·min-1條件下離心10 min，收集上層黃色有機相液體于新的10 mL 離心管中。剩余液體再次加入3.0 mL 提取液，重復提取2 次，合并3次提取液，氮吹至干。以上操作均在避光或弱光條件下進行。

1.3.3.2 類胡蘿卜素含量的測定 總類胡蘿卜素含量的測定采用分光光度法，將氮氣吹干后的樣品溶于600 μL甲醇/丙酮（1∶1，V/V，含0.1% BHT）中，于450 nm下測定溶液的吸光值。根據β-胡蘿卜素標準曲線計算樣品中類胡蘿卜素含量。油桃果實中各組分類胡蘿卜素含量的測定需進行皂化，具體參考朱運欽［5］和盧娟芳［6］的方法并稍加修改。氮吹至干的樣品用2.0 mL甲基叔丁基醚（含0.1% BHT）溶解，然后加入2.0 mL 10%KOH-甲醇溶液（W/V），輕搖后于25 ℃、130 r·min-1條件在振蕩培養箱中皂化30 min。皂化后加入2.0 mL 10% NaCl 水溶液（W/V）洗3 次至pH 中性，每次水洗后棄去水層，最后將溶液氮吹至干用于高效液相色譜（high performance liquid chromatography，HPLC）分析。樣品分析前復溶于200 μL 甲醇/丙酮（1∶1，V/V）溶液中，過0.22 μm有機濾膜至液相小瓶進行HPLC檢測。

1.3.3.3 HPLC 分析條件 采用島津LC-20A 高效液相色譜儀，儀器配置SPD-M20A PDA 檢測器，選用YMC-C30 （4.6 mm×250 mm，5 μm）色譜柱；流動相為A相：乙腈/甲醇（3∶1），B相：100% MTBE。洗脫程序參考Han 等［21］和朱運欽［5］的方法并稍加修改：0～10 min：A∶B（95∶5）；10～19 min：A∶B（86：14）；19～29 min：A∶B（75∶25）；29～35 min：A∶B（50∶50）；35～45 min：A∶B（95∶5）。柱溫25 ℃，流速1.0 mL·min-1，進樣量20 μL，檢測波長450 nm。

1.3.3.4 各組分類胡蘿卜素的定性定量分析 依據類胡蘿卜素標準品以及相關文獻對油桃果實中各組分類胡蘿卜素進行鑒定，對于有標準品的組分采用外標法進行定量，無標品的組分定量參考文獻［5，22］中報道的替換計算方法。

1.3.4 可溶性糖的提取和測定 可溶性糖含量的測定參考Zhou等［23］的方法并稍加修改。稱取9 g油桃果肉在液氮中充分研磨，精確稱取2.0 g研磨樣品于50 mL離心管中，加入30 mL蒸餾水渦旋混勻，80 ℃水浴提取1 h，冷卻至室溫后于8 000 r·min-1離心20 min，取上清液1.0 mL準確稀釋至2.0 mL，吸取1.0 mL過0.45 μm水系濾膜后進行測定。可溶性糖的分析采用配有蒸發光散射檢測器（evaporative light scattering detector，ELSD）的島津LC-20A 1260型高效液相色譜系統，色譜柱為碳水化合物分析柱（250 mm×4.6 mm，5 μm），流動相為乙腈/水（75∶25，V/V），柱溫35 ℃，進樣量20 μL，流速1.0 mL·min-1。

1.4 數據處理與分析

結果均以3 次重復試驗的平均值±標準差表示。運用Excel 2019 進行數據整理，SPSS 18.0 軟件進行相關性分析，SAS軟件進行單因素方差分析，采用Duncan多重比較法（Duncan’s multiple range tests）進行顯著性分析，P<0.05表示差異顯著。

2 結果與分析

2.1 不同LED 處理對油桃果實總類胡蘿卜素含量的影響

由圖1 可知，在處理期間，隨著貯藏時間的延長，對照組和處理組油桃果實中總類胡蘿卜素含量均呈不斷上升趨勢。其中，除第8 天外，白光處理組總類胡蘿卜素含量均顯著高于其他處理組。而藍光處理組總類胡蘿卜素含量在第8 天達到最高，為28.29 μg·g-1，是對照組的1.5倍，是采收初期含量的2.3倍。所有LED處理組中果實類胡蘿卜素總量均高于對照組，表明油桃采后予以適當的LED 光照，可以有效促進果實中類胡蘿卜素的積累。

圖1 不同LED處理下油桃果實總類胡蘿卜素含量的變化Fig.1 Changes of total carotenoids content in nectarine fruit under different LED treatments

2.2 不同LED 處理對油桃果實中各組分類胡蘿卜素含量的影響

在油桃果實中共檢測到9種類胡蘿卜素，如圖2所示，包括紫黃質、9-順式-紫黃質、黃體黃質、花藥黃質、葉黃素、玉米黃素、β-胡蘿卜素、順式-β-胡蘿卜素和β-隱黃質，以β-胡蘿卜素、紫黃質、黃體黃質為主，在處理初期分別占到27.05%、24.75%和19.97%。

圖2 不同LED處理對油桃果實中紫黃質（A）、9-順式-紫黃質（B）、黃體黃質（C）、花藥黃質（D）、葉黃素（E）、玉米黃素（F）、β-胡蘿卜素（G）、順式-β-胡蘿卜素（H）、β-隱黃質（I）含量的影響Fig.2 Effects of different LED treatments on the content of violaxanthin （A），9-cis-violaxanthin （B），luteoxanthin （C），antheraxanthin （D），lutein （E），zeaxanthin （F），β-carotene （G），cis-β-carotene （H） and β-cryptoxanthin （I） in nectarine fruit

不同處理組中各類胡蘿卜素含量存在差異。在處理期間，隨著貯藏時間的延長，紫黃質含量呈現先下降后上升的趨勢，處理第4 天達到最低值，處理末期藍光處理組含量達到最高值8.53 μg·g-1，是對照組的1.9倍，表明藍光處理在后期促進了油桃果實中紫黃質的積累。9-順式-紫黃質是紫黃質的順式異構體，其含量在LED 處理組中呈現波動變化，在對照組中呈現先下降后上升的趨勢，處理末期，對照組和LED 處理組之間無顯著差異。黃體黃質含量的變化趨勢和紫黃質類似，整體亦呈現先下降后上升的趨勢，除第4 天外，藍光處理組中的黃體黃質含量均高于其他處理組，且在末期達到最高值9.27 μg·g-1。

隨著貯藏時間的延長，花藥黃質含量在各LED 處理組中均呈現下降趨勢，均高于對照組，且白光處理組含量始終高于其他處理組，表明白光處理有利于維持果實中花藥黃質的含量。葉黃素含量在油桃果實處理前期和后期變化較小，白光處理組呈現先上升后下降的趨勢，在處理第4天達到最高值，且處理期間始終高于其他處理組；對照組中葉黃素含量始終較低，且呈下降趨勢。處理組和對照組中玉米黃素含量變化趨勢相同，均在0～2 d 上升、2～4 d 下降，在第4 天達到最低值，后期逐漸上升；藍光處理組中玉米黃素含量始終高于其他處理組，且在第6～第8 天急劇積累，末期達到2.73 μg·g-1，是對照組的3.3倍。

β-胡蘿卜素是油桃果實中主要的類胡蘿卜素，在處理前期，果實中β-胡蘿卜素積累緩慢，白光處理組第2 天含量較高，然后緩慢下降，第8 天達到最低值。第6～第8 天，藍光處理組中β-胡蘿卜素迅速積累，處理末期含量達到18.47 μg·g-1，占總類胡蘿卜素含量的40.72%，達到貯藏初期的2.6倍。因此，白光處理在前期有利于β-胡蘿卜素的積累，而藍光處理在后期促進作用更顯著。處理期間，白光和對照組中順式-β-胡蘿卜素含量整體變化較小，但白光處理組中含量始終高于對照組，藍光組在處理2天后至第8天均顯著高于對照組。β-隱黃質含量變化和β-胡蘿卜素含量變化相似，藍光處理組中，β-隱黃質在處理初期和中期緩慢上升，后期（6～8 d）急劇上升，顯著促進了油桃果實中β-隱黃質的積累。整個處理期間，紅光對油桃果實中類胡蘿卜素各組分變化影響較小。

2.3 不同LED處理對油桃果肉顏色的影響

光照影響色素的合成，不同LED 處理對采后油桃果肉的色澤也有一定影響。由圖3可知，處理期間，隨著貯藏時間的延長，果肉L*值呈下降趨勢。第4 天，白光組L*值顯著高于對照組，表明油桃果肉亮度較高。處理前期，對照組L*值較低，而在第6～第8天高于LED處理組，表明黑暗處理在貯藏后期有助于維持油桃果肉亮度。果肉a*值整體呈上升趨勢，表明果肉紅度在處理期間有所增強，但各處理組間差異不顯著。果肉b*值在整個貯藏過程中呈現先下降后上升的趨勢，處理前期，藍光處理組顯著低于對照組，而紅光和白光處理組與對照組無顯著差異；處理末期，對照組b*值顯著高于藍光和紅光處理組，表明在黑暗條件下果肉黃度較好。色澤指數CIRG 可以評價果實的色澤深淺和成熟度，CIRG值越大，果實顏色越深［24］。由圖3-D可知，果肉CIRG 值逐漸增大，說明隨著貯藏時間的延長，油桃果肉顏色逐漸加深。其中，藍光處理組CIRG值顯著高于對照和其他處理組，表明藍光處理下果肉著色較好，且第4～第8天LED處理組CIRG值均顯著高于對照組，因此果實采后給予適當LED光照，有利于其著色。

圖3 不同LED處理下油桃果肉L*（A）、a*（B）、b*（C）和CIRG（D）的變化Fig.3 Changes of L*（A），a*（B），b*（C）and CIRG（D） in nectarine flesh under different LED treatments

2.4 油桃果實顏色特征值與類胡蘿卜素含量的相關性分析

利用皮爾遜相關系數對油桃果肉色澤特征值與類胡蘿卜素含量進行相關性分析，結果如表1 所示。L*值與花藥黃質含量呈極顯著正相關，與玉米黃素含量呈顯著負相關，與β-隱黃質和總類胡蘿卜素含量呈極顯著負相關，即玉米黃素、β-隱黃質和總類胡蘿卜素含量越高，果肉亮度越低。a*值與花藥黃質含量呈極顯著負相關，與9-順式-紫黃質含量呈顯著負相關，而與玉米黃素、β-隱黃質及總類胡蘿卜素含量呈極顯著正相關，這和L*值與三者的關系正好相反，表明玉米黃素、β-隱黃質和總類胡蘿卜素含量越高，果肉紅度越高。b*值與紫黃質含量呈極顯著正相關，與黃體黃質含量呈顯著正相關，即果實中紫黃質和黃體黃質含量越高，果肉黃度越高。油桃果實CIRG 值與花藥黃質含量呈顯著負相關，與β-隱黃質含量呈顯著正相關，而與總類胡蘿卜素含量呈現極顯著正相關，即果實中總類胡蘿卜素含量越高，果實顏色越深。

表1 油桃果實果肉色澤特征值與類胡蘿卜素含量相關性分析Table 1 Correlation analysis between flesh color characteristic values and carotenoids content of nectarine fruit

2.5 不同LED 處理對油桃果實中可溶性糖含量的影響

蔗糖、果糖和葡萄糖是油桃果實中主要的3種可溶性糖，其中，蔗糖含量最高。新鮮采摘的油桃蔗糖含量占總可溶性糖的80.59%。果實在采摘后，呼吸作用仍在進行，通過呼吸及其他一系列生理生化活動，蔗糖分解成葡萄糖和果糖。由圖4可知，對照組中果糖和葡萄糖含量均在采后初期上升，中期下降，后期再次上升，在處理第8天分別達到10.42和13.74 mg·g-1。LED處理組中果糖和葡萄糖含量均隨貯藏時間的延長而上升，在第8天達到最高值。藍光處理組的果糖和葡萄糖含量始終高于對照組，處理第8天達到最高值12.19 和13.98 mg·g-1，表明藍光處理促進了果實中果糖和葡萄糖的積累。這一現象在楊梅［25］果實中也有發現。白光處理組中果糖含量在貯藏后期顯著高于對照組，表明白光處理在后期促進了油桃果實中果糖的積累。然而，紅光處理對果實中果糖和葡萄糖的積累影響較小。不同處理組中蔗糖含量呈現先下降后上升的趨勢。在處理后期，LED 處理組中蔗糖含量顯著低于對照，表明LED處理促進了油桃果實中蔗糖的分解代謝，一定程度上促進了果實采后生理代謝活動的進行。

圖4 不同LED處理對油桃果實果糖（A）、葡萄糖（B）、蔗糖（C）和可溶性總糖（D）含量的影響Fig.4 Effects of different LED treatments on the content of fructose （A），glucose （B），sucrose （C） and soluble total sugar （D） in nectarine fruit

依據果實中3 種可溶性糖的含量對可溶性總糖進行了分析，結果如圖4-D 所示。采后處理期間可溶性總糖含量的變化與蔗糖一致，呈現先下降后上升的趨勢。對照組和白光處理組在第2 天降到最低值，而紅光和藍光處理組分別在第4和第6天降至最低，藍光和紅光處理可溶性總糖含量在前期高于對照，而白光處理組卻始終低于對照，表明藍光和紅光處理在前期促進了油桃果實中可溶性總糖的積累，而白光在整個處理期間促進了可溶性總糖的代謝。

2.6 油桃果實中類胡蘿卜素與可溶性糖含量的相關性分析

由表2 可知，果實中類胡蘿卜素與可溶性糖含量存在一定相關性，不同的LED 處理對兩者相關性產生不同影響。對照組和處理組中均顯示出，花藥黃質與果糖和葡萄糖含量呈顯著負相關，推測果糖和葡萄糖通過糖酵解途徑和MEP 途徑生成類胡蘿卜素代謝前體，進而促進果實中花藥黃質的積累。β-隱黃質與果糖和葡萄糖含量均呈現顯著正相關，即β-隱黃質的含量會隨著果糖和葡萄糖含量的升高而增加。同時，果實中總類胡蘿卜素含量與果糖和葡萄糖含量存在較強的正相關性。

表2 類胡蘿卜素與可溶性糖含量相關性分析Table 2 Correlation analysis between carotenoids and soluble sugars content

3 討論

研究表明，果實的貨架期與其生物活性物質的含量有關，而這些生物活性物質多具有抗氧化活性，因此提高水果中的天然抗氧化劑水平可能是保持水果品質的一項有價值的策略［16］。類胡蘿卜素作為一種天然抗氧化劑，在黃肉油桃中分布廣泛。本研究采用藍光、紅光和白光3種LED 光源對采后貯藏期間的油桃進行處理，發現LED 處理在一定程度上促進了果實中類胡蘿卜素的積累，白光和藍光促進作用最顯著。研究發現，類胡蘿卜素對藍紫光有較強的吸收，而白光波長范圍較寬（包含可見光波長），這可能是果實中類胡蘿卜素在藍光和白光處理下積累的重要原因。這與Hu等［13］的研究結果不同，即：僅紅光和暗光處理顯著誘導了哈姆林甜橙中類胡蘿卜素的積累，而其他光照處理不利于果實中類胡蘿卜素的積累。Cano-Molina 等［18］發現，與UV-LED 聯合處理相比，LED 單獨使用就足以引起成熟綠番茄中類胡蘿卜素含量的顯著增加，這被認為是一種優勢，因為LED 相比于UV 更加節能、安全和環保。因此，適當的LED 光照是保持和改善果實采后品質的有效途徑，油桃果實貯藏期間施以適當的白光和藍光照射，可以提高果實中類胡蘿卜素的含量。

果實成熟過程中色素的變化是葉綠素降解和類胡蘿卜素積累的結果，類胡蘿卜素含量和組成是決定大多數成熟水果特征顏色的主要因素［8，20，26］。本研究發現，油桃果肉的色澤與其類胡蘿卜素組成和含量具有一定相關性。其中，L*值與玉米黃素含量呈顯著負相關，與β-隱黃質和總類胡蘿卜素含量呈極顯著負相關。與L*值相反，a*值與玉米黃素、β-隱黃質和總類胡蘿卜素含量均呈極顯著正相關。這與米佳等［27］在枸杞中的研究結果一致。類胡蘿卜素的吸收光譜主要取決于其分子中共軛雙鍵的數量，發色團越長，最大吸收波長越大，對于黃色類胡蘿卜素，其a*值會隨著類胡蘿卜素分子中共軛雙鍵數量的減少而降低，因此不同種類的類胡蘿卜素會在不同的LED 光下呈現不同的顏色［28］。甜橙顏色的差異不僅與果皮中類胡蘿卜素的含量直接相關，而且與每種類胡蘿卜素的比例也有很大關系，而與甜橙相比，柑桔果實色澤較深主要是因為紅色β-檸烏素和橙色β-隱黃素含量豐富，這也是引起果實不同品種間色澤差異的重要原因［26］。

油桃果實的甜味源于蔗糖、葡萄糖和果糖的積累，蔗糖在果實成熟時占主導地位，其次是葡萄糖和果糖［29］。藍光處理在后期顯著促進了果糖和葡萄糖的積累，而對于蔗糖，藍光和紅光在處理前期促進了其積累，后期則顯著促進了其代謝。整個處理期間，白光組中蔗糖和可溶性總糖含量較低，可能是由于白光的波長可涵蓋其他多種單色光，其對果實中多種生理生化活動如呼吸、蒸騰作用等，有廣泛影響，進而導致可溶性糖的代謝大于積累，致使果實中可溶性糖含量下降。糖組分的積累是果實品質形成的關鍵，可溶性糖可為類胡蘿卜素提供合成前體物質IPP［13，30］。通過分析兩種物質的相關性發現，不同LED 處理下，多數類胡蘿卜素與可溶性糖含量之間呈現較強的相關性，其中，總類胡蘿卜素與果糖、葡萄糖含量呈極顯著正相關，因此后續可進一步探究通過調控果實中的可溶性糖來提高類胡蘿卜素含量。

4 結論

本研究結果表明，藍光處理對果實中類胡蘿卜素和可溶性糖的積累具有顯著促進作用，處理末期藍光處理組中總類胡蘿卜素含量達到采收初期含量的2.3倍，果糖和葡萄糖含量達到最高值；果肉b*值與紫黃質和黃體黃質含量分別呈極顯著和顯著正相關；多數類胡蘿卜素組分與可溶性糖含量之間均呈現出較強的相關性，所有光照處理組中果糖和葡萄糖與總類胡蘿卜素含量呈極顯著正相關。因此，油桃采后予以適當的藍光處理，可維持較高的類胡蘿卜素和果糖、葡萄糖含量；可溶性糖與類胡蘿卜素含量呈現一定關聯性，后期可進一步探究其對果實中類胡蘿卜素的調控作用。