薛金良,靳超,張曉
鄭州大學附屬洛陽中心醫院胸外科,洛陽市心胸外科疾病臨床研究中心,河南 洛陽 471009
食管癌是消化系統常見的惡性腫瘤,近年來發病率日益增高。據統計,全球每年食管癌病死例數約30 萬例,中國約15 萬例,約占全球的50%[1]。盡管近年來影像技術、外科手術、放化療等技術快速發展,但多數患者就診時仍已處于食管癌晚期,因此,早期診斷、及時治療是提高食管癌患者預后的關鍵。相關研究表明,食管癌的發生與相關蛋白的表達密切相關[2]。端粒保護蛋白三肽基肽酶1(tripeptidyl peptidase 1,TPP1)高表達與多種腫瘤細胞的發生、發展、轉移密切相關[3]。近年來,相關報道顯示,基因轉錄會形成非編碼環狀RNA(circular RNA,circRNA)Tau-微管蛋白激酶2(Tau-tubulin kinase 2,TTBK2),其是一種絲氨酸/蘇氨酸激酶,能抑制腫瘤細胞的增殖、遷移,并誘導細胞凋亡、產生細胞毒性,可作為腫瘤生物學標志[4]。因此,本研究探討TPP1、circ-TTBK2 在食管癌中的表達及與患者預后的關系,現報道如下。
選取2015 年6 月至2017 年6 月鄭州大學附屬洛陽中心醫院收治的食管癌患者。納入標準:①年齡49~75 歲;②術前未接受化療、放療等輔助治療;③臨床資料完整。排除標準:①合并心、肝、腎嚴重疾病;②合并嚴重神經功能、認知功能障礙;③依從性差;④合并其他惡性腫瘤。依據納入和排除標準,本研究共納入100 例食管癌患者,其中男59 例,女41 例;年齡49~75 歲,平均(59.31±6.65)歲;病理類型:鱗狀細胞癌67 例,其他33 例;分化程度:高分化21 例,中分化37 例,低分化42 例。取100 例食管癌患者的食管癌組織及癌旁正常組織。本研究經醫院倫理委員會批準通過,所有患者均知情同意。
選取100 例食管癌患者的食管癌組織及癌旁正常組織,生理鹽水清洗后保存在10%甲醛溶液中,-80 ℃恒溫箱保存待檢。石蠟切片標本厚2 μm,烘烤60 ℃,二甲苯脫蠟,抗原修復,磷酸鹽緩沖液(phosphate buffered solution,PBS)沖洗3次。滴加內源性過氧化物酶,室溫孵育15 min,沖洗。滴加一抗(稀釋濃度1∶100),室溫孵育1 h,沖洗。滴加辣根過氧化物酶標記的羊抗小鼠/兔免疫球蛋白G 聚合物,室溫孵育30 min,采用PBS 代替一抗;滴加山羊抗兔二抗室溫孵育30 min。二氨基聯苯胺顯色,蘇木精復染,梯度乙醇脫水,樹膠封片[5]。結果判定:采用雙盲法評估TPP1 蛋白的表達情況[6]。隨機選取5 個視野,依據染色強度進行評分:無著色計0 分,淺黃色染色計1 分,棕黃色染色計2 分,棕褐色染色計3分;依據陽性細胞所占比例進行評分:陽性細胞所占比例﹤25%計1分,陽性細胞所占比例為25%~50%計2分,陽性細胞所占比例﹥50%計3分。將染色強度評分和陽性細胞所占比例評分相乘,﹤4分判定為陰性,≥4分判定為陽性。
選取100 例腫瘤組織及癌旁正常組織,生理鹽水沖洗后保存于-70 ℃冰箱中待檢。采用Trizol 總RNA 提取試劑盒提取總RNA,按逆轉錄試劑盒說明書將總RNA 逆轉錄,得到互補DNA(complementary DNA,cDNA),以cDNA 為模板用RT-PCR 試劑盒進行PCR 反應。PCR 反應條件:90 ℃60 s,92 ℃30 s,56 ℃30 s,74 ℃30 s,38 個循環。circ-TTBK2 上游引物:5'-AATAGTACTTGGGTCCTCCTCT-3',下游引物:5'-CTGCCAACTGTCGCATGTTC-3';以β-actin為內參,上游引物:5'-GATCATTGCTCCTCCTGAGC-3',下游引物:5'-ACTCCTGCTTGCTGATCCAC-3'。每個標品均設3 個平行反應復孔,參照每孔Ct 值進行分析[7]。計算circ-TTBK2 的相對表達量。
對所有患者進行為期3 年的隨訪,隨訪時間截至2020 年6 月,記錄患者的預后情況。
采用SPSS 22.0軟件對所有數據進行統計分析,計數資料以例數和率(%)表示,組間比較采用χ2檢驗;計量資料以均數±標準差(±s)表示,組間比較采用t檢驗;食管癌患者預后的影響因素采用Cox 風險比例回歸模型分析;以P﹤0.05為差異有統計學意義。
食管癌組織中TPP1 的陽性表達率明顯高于癌旁正常組織,circ-TTBK2 的相對表達量明顯高于癌旁正常組織,差異均有統計學意義(P﹤0.01)。(表1、圖1)

圖1 食管癌組織中TPP1蛋白的表達情況(免疫組化染色,×400)

表1 食管癌組織和癌旁正常組織中TPP1、circ-TTBK2表達情況的比較
不同性別、年齡、病理類型食管癌患者食管癌組織中TPP1 蛋白表達情況和circ-TTBK2 相對表達量比較,差異均無統計學意義(P﹥0.05)。分化程度為低中分化、有淋巴結轉移、TNM 分期為Ⅲ+Ⅳ期、浸潤深度為T3~4食管癌患者食管癌組織中TPP1 蛋白陽性表達率分別高于分化程度為高分化、無淋巴結轉移、TNM 分期為Ⅰ+Ⅱ期、浸潤深度為T1~2的患者,差異均有統計學意義(χ2=28.168、4.345、7.994、6.156,P﹤0.05)。分化程度為低中分化、有淋巴結轉移、TNM 分期為Ⅲ+Ⅳ期、浸潤深度為T3~4食管癌患者食管癌組織中circ-TTBK2 的相對表達量分別高于分化程度為高分化、無淋巴結轉移、TNM 分期為Ⅰ+Ⅱ期、浸潤深度為T1~2的患者,差異均有統計學意義(t=6.060、11.721、15.728、11.240,P﹤0.05)。(表2)

表2 不同臨床特征食管癌患者食管癌組織中TPP1、circ-TTBK2表達情況(n=100)
隨訪3 年,100 例食管癌患者生存68 例,死亡32 例,病死率為32.00%。年齡、性別、病理類型均可能與食管癌患者的預后無關(P﹥0.05);分化程度、TNM 分期、浸潤深度、淋巴結轉移情況、circ-TTBK2 表達情況、TPP1 表達情況均可能與食管癌患者的預后有關(P﹤0.05)。(表3)

表3 食管癌患者預后影響因素的單因素分析
將單因素分析中差異有統計學意義的分化程度、TNM分期、浸潤深度、淋巴結轉移情況、circ-TTBK2表達情況、TPP1 表達情況作為自變量,食管癌患者的預后作為因變量納入多因素Cox 風險比例回歸模型分析,結果顯示,浸潤深度為T3~4、分化程度為低中分化、TNM 分期為Ⅲ+Ⅳ期、有淋巴結轉移、circ-TTBK2高表達、TPP1蛋白陽性表達均為食管癌患者預后的獨立危險因素(P﹤0.05)。(表4)

表4 食管癌患者預后影響因素的Cox 風險比例回歸模型分析
有研究顯示,腫瘤的發生發展與端粒、端粒酶密切相關[8]。TPP1 表面的TEL patch 與端粒酶結合,可調節端粒酶的募集及活性,進而控制端粒的長度和穩定性,且端粒的改變與乳腺癌、肝癌、神經膠質瘤等多種腫瘤的發生密切相關。既往在宮頸癌細胞中加入端粒酶抑制劑——BIBR1532,可抑制TPP1 上的TEL patch 與端粒酶結合,從而抑制宮頸癌Hela 細胞的生長,并促進其凋亡[9]。Zhang 和Dong[10]對慢性B 淋巴細胞白血病的端粒變化情況進行研究發現,僅TPP1 及復制蛋白AⅠ(replication protein AⅠ,RPAⅠ)的表達明顯上調,其他蛋白水平均有降低。Wallace 等[11]采用基因芯片技術檢測結腸癌中基因表達情況發現,與正常結腸組織相比,結腸癌組織中TPP1 的表達明顯上調,提示TPP1 蛋白陽性表達對結腸癌患者的用藥選擇有指導意義。
circ-TTBK2 是一種激酶,是神經細胞骨架的主要成分,其通過催化微管中含量最高的Tau 蛋白使微管處于不穩定狀態,激活微管磷酸化,通過調節miRNA-217 等通路調控膠質瘤的惡性程度[12]。相關研究發現,circ-TTBK2 在多種惡性腫瘤中過表達,能促進腫瘤細胞的增殖、遷移及侵襲[13]。
本研究結果顯示,食管癌組織中TPP1的陽性表達率明顯高于癌旁正常組織,circ-TTBK2 的相對表達量明顯高于癌旁正常組織,且隨著食管癌臨床分期增高、組織分化程度的降低及淋巴結轉移情況,TPP1 和circ-TTBK2 的表達也逐漸上調,這與徐勇軍等[14]研究食管癌組織中circ-TTBK2 表達情況一致,說明其與食管癌的發生發展密切相關。同時,為明確影響食管癌患者預后的危險因素,本研究對食管癌患者進行為期3年的隨訪發現,100例患者病死率高達32%。相關研究發現,TPP1表達升高與食管癌患者3 年總生存率降低密切相關[15]。而Zhang等[16]的研究也表示,circ-TTBK2 可作為判斷食管癌患者惡性程度與預后的生物學標志物。本研究Cox風險比例回歸模型分析結果顯示,浸潤深度為T3~4、分化程度為低中分化、TNM分期為Ⅲ+Ⅳ期、有淋巴結轉移、circ-TTBK2 高表達、TPP1 蛋白陽性表達均為食管癌患者預后的獨立危險因素(P﹤0.05)。表明TPP1 和circ-TTBK2 均與食管癌患者的預后關系密切,進一步提示TPP1 和circ-TTBK2 可通過參與腫瘤細胞的分化、浸潤和轉移影響食管癌患者的臨床結局,但關于其以何種方式來調節食管癌的進展仍未明確,后續仍將繼續深入研究。
綜上所述,TPP1 在食管癌中陽性表達,circ-TTBK2 在食管癌中高表達,且與食管癌患者的臨床特征密切相關,circ-TTBK2 高表達、TPP1 蛋白陽性表達均為食管癌患者預后的獨立危險因素。