牡蠣肽對RAW264.7巨噬細胞的免疫調節作用

李錦弘,鄭慧珍,4,陳慧,4,劉書來,4,顧賽麒,4,王芮,4,相興偉,4*

1(浙江工業大學 食品科學與工程學院,浙江 杭州,310014) 2(浙江省深藍漁業資源高效開發利用重點實驗室,浙江 杭州,310014) 3(國家遠洋水產品加工技術研發分中心,浙江 杭州,310014) 4(海洋食品精深加工關鍵技術省部共建協同創新中心,大連工業大學,遼寧 大連,116034)

巨噬細胞主要出現在淋巴組織中,在血管中多為單核細胞,在周圍淋巴組織中因吞噬多種異物成為巨噬細胞,其通過積極參與機體的先天性免疫和特異性免疫反應發揮保護作用,并形成免疫防御的第一道防線[1-2]。在先天性免疫反應中,激活后的巨噬細胞對外來病菌、凋亡細胞和腫瘤細胞具有極強的吞噬消化作用,并能通過分泌相關酶和介質消滅機體內多種致病菌和有害微生物[3]。在特異性免疫過程中,巨噬細胞對內源或外源性抗原進行識別,遞呈給抗原特異性細胞激活特異性免疫應答[4]。食源性生物活性肽以其較高的消化性、營養性和生理效果,逐漸受到國內外研究者的廣泛關注[5]。

食源性生物活性肽具有抗氧化、降血壓、降血脂、護肝和增強免疫調節等優良的生物學功能[6-9]。食源性生物活性肽由于來源廣泛、成本低,在功能保健食品的開發與研究方面具有廣闊的市場前景和應用空間,是當前國內外研究的熱門課題之一。牡蠣營養極為豐富,富含微量元素、蛋白質、脂肪酸、維生素和牛磺酸等營養成分,自古以來就為功能保健食品,被冠以“海底牛奶”的稱號[10]。牡蠣也是我國衛生部門首次批準的藥食同源海洋源產品,具有很高的藥用價值[11]。據《本草綱目》所述,牡蠣肉具有治虛損、解丹毒、化痰清熱、除濕痢下和恢復氣血的療效。眾所周知的中藥方劑“牡蠣散”對諸虛不足、津液不固、心忪驚惕等癥狀有顯著療效。據研究表明,牡蠣擁有許多生物活性與保健功能,尤其是其經過蛋白酶水解制備的牡蠣肽具有提高免疫力[12]、抗病毒[13]、抗腫瘤[14]、抗氧化[15]、抗疲勞[16]、降血壓[17]和生殖保健[18]等,然而關于牡蠣肽體外免疫保護活性的研究報告較少。

因此,本試驗通過采用脂多糖(lipopolysaccharides, LPS)處理并活化RAW264.7巨噬細胞,探討牡蠣肽對RAW264.7巨噬細胞免疫活性的影響,評估牡蠣肽的體外免疫保護活性,并為牡蠣肽在免疫功能調節方面的研究利用提供參考依據。

1 材料與方法

1.1 材料與試劑

1.1.1 實驗材料

新鮮長牡蠣(Crassostreagigas)購自浙江杭州海鮮市場。牡蠣肽(oyster peptide, OP)根據之前的相關報道進行提取制備[9],純度大于95%,分子質量小于1 000 Da。

1.1.2 實驗細胞

小鼠RAW264.7巨噬細胞由浙江省立同德醫院提供。

1.1.3 實驗試劑

LPS、中性紅染色劑,美國Sigma公司;CCK8(cell counting kit-8,CCK8)試劑盒,Biomiky公司;NO檢測試劑盒,南京建成生物工程研究所;胎牛血清、DMEM(dulbecco’s modified eagle medium,DMEM)高糖培養基、胰酶、雙抗,美國Gibco公司;總RNA提取試劑TRIzol Reagent,美國Invitrogen公司;腫瘤壞死因子-α(tumor necrosis factor-α,TNF-α)試劑盒、白細胞介素-6(interleukin-6,IL-6)試劑盒、白細胞介素-10(interleukin-10,IL-10)試劑盒,武漢博士徳生物工程有限公司;反轉錄試劑盒、SYBR Premix Ex Taq(Tli RNaseH Plus),Takara公司;RIPA裂解液、BCA蛋白濃度測定試劑盒(增強型)、特超敏ECL化學發光試劑盒、苯甲磺酰氟(phenylmethanesulfonyl fluoride,PMSF)膜,上海碧云天生物技術有限公司;SDS-PAGE 4×蛋白上樣緩沖液,北京Solarbio科技有限公司;鼠單克隆抗體p-IκBα,美國Novus Biologicals公司;兔單克隆抗體IκBa,美國Abcam公司;兔單克隆抗體p-p65、鼠單克隆抗體p65、兔單克隆抗體 β-actin,美國Cell Signaling公司;山羊抗兔IgG(HRP)、山羊抗鼠IgG(HRP),南京諾唯贊生物科技有限公司;PVDF轉印膜,Millipore公司;其余實驗所用試劑均為分析純級別。

1.2 儀器與設備

902型80 ℃超低溫冰箱、3111 CO2細胞培養箱,賽默飛世爾科技有限公司;5415D低溫高速冷凍離心機,德國Eppendorf;SJ-CJ-2D超凈工作臺,上海尚凈公司;倒置顯微鏡,德國Leica Microsystems;BP211D電子天平,美國Sartorius;HH-4型恒溫水浴鍋,國華電器有限公司;Tecan Infinite F200多功能酶標儀,瑞士TECAN 集團公司;ABI ViiATM7實時熒光定量PCR儀,美國Applied Biosystems;Alpha FluorChem FC3凝膠成像系統,美國ProteinSimple;9556A水平脫色搖床,國產華利達。

1.3 實驗方法

1.3.1 RAW264.7細胞的培養

使用含有10%胎牛血清(fetal bovine serum,FBS)和質量濃度100 μg/mL鏈霉素雙抗的DMEM高糖培養液培養RAW264.7巨噬細胞。細胞培養箱條件設置為:溫度37 ℃,5%(體積分數)CO2。當細胞增殖達到80%～90%的密度后進行下一步傳代和種板。首先,將細胞培養瓶里過期的細胞培養液倒掉,用適量預熱的磷酸鹽緩沖液(phosphate buffer saline,PBS)溶液洗滌細胞3次。然后用移液槍吹落瓶底和瓶壁上附著的細胞,混勻,收集細胞懸液。對細胞懸液適當稀釋,在顯微鏡下用細胞計數板進行細胞計數,根據不同實驗要求取相應細胞數進行種板。

1.3.2 CCK8法檢測巨噬細胞增殖率

采用CCK8法檢測細胞增殖率。將處于對數生長期的RAW264.7 細胞按1×104/孔的密度接種至96孔板中,過夜孵育24 h后,倒掉上清液。空白組每孔加入200 μL完全培養液。實驗組則根據實驗方案設置,每孔分別加入200 μL牡蠣肽稀釋培養液(質量濃度梯度設置為:100、200、300、400、600、700、800、900、1 000 μg/mL),每組實驗復孔數設置為6個。在細胞培養箱孵育24 h,用預熱的PBS洗3次,加入質量濃度為0.5 mg/mL CCK8的培養液100 μL于每孔中,在37 ℃條件下孵育4 h至出現藍紫色沉淀。避光取出96孔板并在酶標儀中振蕩3 min。最終,在450 nm波長下檢測吸光度值。細胞增殖率計算如公式(1)所示:

(1)

1.3.3 中性紅法檢測巨噬細胞吞噬能力

將處于對數生長期RAW264.7細胞按1×104/孔密度接種至96孔板,過夜培養后棄上清液,按如下實驗分組分別進行不同實驗處理,并根據中性紅法測定巨噬細胞吞噬能力。實驗分組:空白組、模型組(LPS終質量濃度為2 μg/mL)和不同濃度的牡蠣肽處理組。細胞孵育24 h后,棄上清液,每孔加入200 μL含有濃度為0.075%的中性紅生理鹽水,繼續培養4 h。用預熱PBS溶液洗滌細胞3遍,每孔加入200 μL酸乙醇(包括50%乙醇,1%乙酸和49%超純水,體積分數)。置于4 ℃條件下靜置過夜,通過酶標儀在540 nm處測量溶液吸光度值,并根據公式(2)計算中性紅吞噬率:

(2)

1.3.4 一氧化氮分泌水平測定

將RAW264.7細胞按3×105/孔數量接種至6孔板,過夜培養后棄上清液。根據如下分組進行實驗處理:(1)空白組:只加入DMEM完全培養基;(2)模型組:加入含有LPS質量濃度為2 μg/mL的完全培養液;(3)牡蠣肽低劑量組:加入含有OP質量濃度為100 μg/mL的完全培養液;(4)牡蠣肽中劑量組:加入含有OP質量濃度為200 μg/mL的完全培養液;(5)牡蠣肽高劑量組:加入含有OP質量濃度為400 μg/mL的完全培養液。根據試驗分組孵育細胞24 h,收集細胞培養上清液。然后在1 500 r/min轉速下離心5 min并取上清液,采用一氧化氮試劑盒檢測巨噬細胞NO分泌水平[19]。

1.3.5 細胞因子分泌水平測定

實驗分組及細胞處理方法同1.3.4節。實驗處理24 h后收集細胞培養液,在1 500 r/min條件下離心5 min收集上清液。使用ELISA試劑盒測定細胞培養上清液中炎癥因子IL-6、IL-10以及TNF-α的含量。

1.3.6 巨噬細胞炎癥相關基因mRNA表達水平測定

將RAW264.7細胞按3×105/孔數量接種至6孔板并過夜培養,棄去上清液。根據1.3.4節進行相同細胞實驗分組和處理,孵育24 h后使用胰酶消化并收集細胞。使用PBS溶液漂洗細胞3次,隨后轉移至無RNA酶的滅菌EP管中。每管分別加入1 mL預冷TRIzol試劑,反復吹打充分裂解細胞,凍存在-80 ℃冰箱用于后續實驗。

根據GeneBank查找本實驗目的基因的已知完整序列,通過Primer Premier 6.22設計并獲得相應特異性上游和下游引物,最后委托上海生物工程公司進行合成。具體目的基因序列如表1所示。將凍存于-80 ℃ 環境的細胞裂解液取出,置于冰上溶解,細胞總RNA的提取采用TRIzol抽提法。分別通過蛋白核酸定量儀測定并記錄ODA260/A280、ODA260/A230以及提取RNA濃度,并采用瓊脂糖凝膠電泳檢測提取RNA質量。隨后,已檢驗純度并合格的RNA通過采用反轉錄試劑盒進行反轉錄,并合成cDNA。根據熒光定量試劑盒說明書進行qPCR反應。反應體系的總體積是20 μL:含有10 μL SYBR Green混合液,0.4 μL ROX II,2.0 μL cDNA樣品,6.8 μL Rnase-Free ddH2O,上游引物和下游引物各0.4 μL。按以下程序擴增上述反應體系:在95 ℃溫度下預變性30 s;接著進行PCR反應(變性溫度為95 ℃,5 s;退火溫度為60 ℃,34 s),循環40次。反應結束后,進行定量分析。目的基因相對mRNA表達水平根據2-ΔΔCt公式計算,以 β-actin作為內參基因,每組試驗重復3次。

表1 實時熒光定量PCR反應引物序列Table 1 Real-time quantitative PCR primer sequences

1.3.7 牡蠣肽對巨噬細胞NF-κB通路的影響

將細胞按2×106/孔數量接種到6孔板并過夜培養。然后將細胞與不同濃度牡蠣肽以及質量濃度為2 μg/mL的LPS溶液孵育24 h。孵育結束后,用預熱PBS溶液漂洗3次,并收集各組巨噬細胞置于離心管中,以1 500 r/min轉速離心2 min。棄上清液后,將細胞沉淀置于冰上,使用Western-blot檢測NF-κB通路蛋白表達量。

a)總蛋白樣品制備和定量:使用前,根據試劑盒說明書配制裂解液,并進行總蛋白的提取。每管取4 μL蛋白提取液,采用BCA法進行總蛋白濃度的定量。其余總蛋白提取液分別按比例加入蛋白上樣緩沖液,混勻并煮沸,置于-80 ℃冰箱保存備用。

b)SDS-PAGE電泳分析及轉膜:配制濃縮膠和分離膠。每個上樣孔加入60 μg蛋白樣品,并加入上樣緩沖液補體積。先后在60 V和80 V恒壓下跑膠。電泳結束后,根據靶蛋白分子質量以及對應的蛋白條帶,切取分離膠。將PVDF膜置于甲醇中浸泡,然后轉移到Tris-Glycine轉移緩沖液中平衡;SDS-PAGE凝膠在Tris-Glycine轉移緩沖液平衡;安裝轉膜夾,排氣泡后壓緊置于轉膜液中,以100 V恒壓全濕轉膜。轉膜結束后將PVDF膜正面朝上放于封閉盒中,用含5% BSA的 TBST(tris buffered saline with Tween-20,TBST)溶液封閉。封閉結束,用TBST溶液洗滌。

c)抗體孵育:將一抗以適當比例溶于TBST溶液(含3% BSA),并和PVDF膜在4 ℃孵育過夜,使用TBST溶液洗滌。將二抗以適當比例溶于TBST溶液(含3% BSA),和PVDF膜在室溫下振蕩孵育1 h;使用TBST溶液洗滌。

d)化學發光,顯影和灰度值測定:臨用前,根據ECL化學發光試劑盒說明書,按比例將A液和B液混勻,制備顯影液。將PVDF轉印膜浸于顯影液中室溫孵育1 min后吸盡余液體,使用化學發光成像儀顯影并觀察拍照。最后采用Image J軟件計算分析各蛋白條帶的灰度值,重復3次。

1.4 數據處理

實驗數據用均值±標準差(Mean±SD)表示,使用SPSS 25.0軟件進行單因素方差分析(one-way ANOVA)。不同組間釆用LSD法進行多重比較檢驗,P<0.05代表數據具有顯著性差異。

2 結果與分析

2.1 牡蠣肽對RAW264.7細胞增殖率的影響

采用CCK8法測定牡蠣肽對RAW264.7巨噬細胞增殖能力的影響。除去空白組,在96孔板中分別加入質量濃度100、200、300、400、600、700、800、900、1 000 μg/mL牡蠣肽培養液并孵育24 h,并根據增殖率計算公式得到RAW264.7巨噬細胞的相對增殖率。結果如圖1所示,與空白組相比,質量濃度范圍在100～900 μg/mL的牡蠣肽對RAW264.7細胞的增殖率沒有顯著性影響(P>0.05)。本實驗結果表明,在一定范圍內,牡蠣肽對巨噬細胞增殖沒有毒性影響,可以進行后續實驗。

圖1 不同質量濃度牡蠣肽對RAW264.7細胞增殖率的影響Fig.1 Effect of different concentrations of OP on the index of RAW264.7 cells proliferation注:圖中不同字母代表顯著性差異(P<0.05)(下同)。

2.2 牡蠣肽對RAW264.7細胞吞噬作用的影響

不同質量濃度牡蠣肽對小鼠巨噬細胞吞噬功能影響如圖2所示。吞噬作用是吞噬細胞如RAW264.7細胞消滅外源性致病菌和內源性凋亡細胞的有效方法。LPS通過激活巨噬細胞并誘導其分化成熟,增強單核細胞-巨噬細胞的吞噬作用,但也可能使吞噬功能性細胞產生過度活化,導致炎癥發生。中性紅吞噬實驗結果顯示,使用2 μg/mL的LPS刺激RAW264.7細胞24 h后,可顯著增強巨噬細胞的吞噬作用(P<0.05)。與空白組比較,加入質量濃度為100、200、300、400、600、700、800、900 μg/mL的牡蠣肽,可顯著提高巨噬細胞的吞噬能力(P<0.05),并在一定范圍內(100～600 μg/mL)呈現劑量依賴性關系。但其對細胞吞噬的刺激效果低于單獨給予LPS造模組。

圖2 不同質量濃度牡蠣肽對RAW264.7細胞吞噬能力的影響Fig.2 Effect of different concentrations of OP on the phagocytosis of RAW264.7 cells

2.3 牡蠣肽對RAW264.7細胞NO分泌水平的影響

NO的釋放量是反應巨噬細胞抗炎活性的常見指標,抑制NO的過量產生可以治療并緩解某些炎癥性疾病。不同濃度牡蠣肽對RAW264.7巨噬細胞NO分泌水平結果如圖3所示。結果顯示,與空白組比較,單獨給予LPS造模組NO的分泌水平顯著提高(P<0.05),說明LPS導致RAW264.7巨噬細胞產生了炎癥反應。與LPS模型組比較,不同濃度牡蠣肽的處理使巨噬細胞的NO分泌水平顯著降低(P<0.05),并且具有一定劑量依賴性。

圖3 不同質量濃度牡蠣肽對RAW264.7巨噬細胞NO 分泌水平的影響Fig.3 Effect of different concentrations of OP on the NO secretion of RAW264.7 cells

2.4 牡蠣肽對RAW264.7細胞炎癥因子分泌水平的影響

巨噬細胞常見炎癥指標主要有TNF-α、IL-6和IL-10,不同濃度牡蠣肽對RAW264.7細胞炎癥因子分泌水平的影響見圖4。如圖4-A和圖4-C所示,牡蠣肽處理RAW264.7細胞24 h后,與空白組比較,僅用LPS處理的RAW264.7細胞產生的IL-6和TNF-α含量顯著升高,提示RAW264.7細胞產生炎性反應。與單獨給予LPS處理組相比,加入質量濃度為100、200、400 μg/mL的牡蠣肽使RAW264.7細胞IL-6和TNF-α分泌水平全部顯著降低(P<0.05),具有濃度依賴效應。圖4-B結果表明,與空白組相比,LPS模型組RAW264.7細胞的IL-10分泌水平顯著上升(P<0.05)。使用牡蠣肽處理炎癥RAW264.7巨噬細胞24 h后,質量濃度為100 μg/mL的牡蠣肽使RAW264.7細胞IL-10分泌水平下降,但沒有顯著性影響(P>0.05)。然而牡蠣肽質量濃度分別為200、400 μg/mL時,RAW264.7細胞的IL-10分泌水平顯著降低(P<0.05),且具有劑量依賴性。

A-IL-6;B-IL-10;C-TNF-α圖4 不同質量濃度牡蠣肽對RAW264.7細胞IL-6,IL-10和TNF-α分泌水平的影響Fig.4 Effects of different concentrations of OP on secretion levels of IL-6, IL-10 and TNF-α in RAW264.7 cells

2.5 牡蠣肽對RAW264.7細胞炎癥相關基因表達水平的影響

為了進一步探討牡蠣肽對LPS誘導的細胞炎癥的保護作用,使用RT-PCR法測定了一氧化氮合酶和炎癥相關基因mRNA的相對表達水平,結果如圖5所示。與空白組相比,LPS處理組的RAW264.7細胞IL-1β、TNF-α、IL-6、IL-10、iNOS以及TLR4的mRNA表達量都顯著增加(P<0.05)。分別用質量濃度為100、200、400 μg/mL的牡蠣肽處理LPS造模后的RAW264.7細胞。給藥24 h后,與LPS組相比,RAW264.7細胞IL-1β、TNF-α、IL-6、IL-10、iNOS以及TLR4 mRNA表達水平都顯著下降(P<0.05),且呈劑量依賴性關系。其中,高濃度的牡蠣肽使巨噬細胞中TLR4、IL-6、IL-1β和IL-10 mRNA相對表達顯著下降(P<0.05),其分泌水平與空白組相比無顯著性差異(P>0.05)。

A-IL-1β;B-TNF-α;C-IL-6;D-IL-10;E-TLR4;F-iNOS圖5 不同質量濃度牡蠣肽對RAW264.7 細胞IL-1β、TNF-α、IL-6、IL-10、TLR4和iNOS mRNA表達水平的影響Fig.5 Effects of different concentrations of OP on the mRNA expression levels of IL-1β, TNF-α, IL-6, IL-10, TLR4 and iNOS in RAW264.7 cells

2.6 牡蠣肽對RAW264.7細胞NF-κB信號通路的影響

為了探究牡蠣肽對巨噬細胞NF-κB信號通路的作用,通過Western-blot法測定巨噬細胞IκBα和p65的蛋白磷酸化水平。結果如圖6所示,與空白組比較,LPS和牡蠣肽均能促進p65和IκBα發生磷酸化。LPS處理巨噬細胞24 h后,RAW264.7細胞中p-p65/p65和p-IκBα/IκBα比值顯著升高(P<0.05)。牡蠣肽處理巨噬細胞24 h后,與LPS模型組比較,p65和IκBα蛋白磷酸化水平隨著牡蠣肽濃度的增加而降低,具有劑量依賴性。其中,濃度為400 μg/mL的牡蠣肽處理組顯著降低了p-p65/p65和p-IκBα/IκBα比值(P<0.05),但都略高于空白組。結果提示,牡蠣肽對巨噬細胞起的免疫保護作用可能通過激活NF-κB信號通路實現。

A-p-p65/p65的相對表達水平;B-p-IκBα/IκBα的相對表達水平圖6 不同質量濃度牡蠣肽對RAW264.7細胞NF-κB信號通路蛋白表達水平的影響Fig.6 Effects of different concentrations of OP on protein expression levels of NF-κB signaling pathway in RAW264.7 cells

3 討論

巨噬細胞在許多疾病中發揮重要作用,也是機體先天免疫應答的主要參與者。巨噬細胞可以有效抵御細菌及病毒的感染,在自身免疫性疾病、細菌感染和炎癥反應中起著決定性的關鍵作用[19]。病原微生物侵入機體時,通過識別抗原表面的受體來激活自身,并分泌促炎因子和抗炎因子來清除病原體,控制疾病進程[20]。在本試驗中,CCK8試驗和中性紅試驗結果顯示,牡蠣肽質量濃度為100～900 μg/mL時,對RAW264.7巨噬細胞的增殖率沒有顯著影響,并且可以提高巨噬細胞的吞噬能力。猴頭菇多糖在質量濃度為100～1 000 μg/mL時,也可以顯著增強RAW264.7細胞吞噬作用[21]。在體外試驗中,通常使用特定濃度LPS建立炎癥巨噬細胞模型。LPS可以通過TLR4途徑促使巨噬細胞活化,并刺激巨噬細胞分泌各種炎癥因子和炎癥介質[22]。NO是巨噬細胞分泌的主要炎癥介質之一,也是細胞毒性效應物。NO可以參與調控哺乳動物細胞的各項功能,主要通過1-精氨酸催化后由iNOS合成。NO不僅參與巨噬細胞殺傷外來病毒以及寄生蟲等過程,而且還參與細胞因子分泌的調節,特別是與炎癥相關的細胞因子,是巨噬細胞發揮其免疫功效的前提條件[23]。因此,NO的分泌水平是觀察巨噬細胞免疫活性的常見指標。

巨噬細胞根據其功能特點和誘導的Th1或Th2免疫反應類型可分為M1和M2型。其中,TNF-α和IL-1β是M1型巨噬細胞的標志性細胞因子,可直接殺傷腫瘤細胞。IL-6和IL-10是M2型巨噬細胞的標志性細胞因子。炎癥因子如TNF-α、IL-6、IL-10是調節免疫應答的主要細胞因子,這些細胞因子的表達和調控是相互作用、相互協調的[24]。TNF-α是非常典型的促炎細胞因子,通過刺激中性粒細胞和巨噬細胞從而直接介導機體炎癥反應,并可促進其他炎癥因子的分泌,有助于刺激機體的正常免疫功能,抵抗感染[25]。然而,TNF-α的過量產生會對機體產生負面影響,造成不同程度的損傷。IL-6不僅起促炎作用,還具有一定的抗炎作用[25]。IL-10在體內主要起抗炎作用,控制炎癥反應程度[26]。本研究中,LPS處理RAW264.7細胞后,OP干預顯著降低了NO、IL-6、TNF-α和IL-10的分泌水平。同時,隨著OP劑量的增加(100、200、400 μg/mL),RAW264.7細胞分泌產生的NO以及炎癥因子IL-6、TNF-α和IL-10含量逐漸下降,提示OP有助于緩解LPS刺激RAW264.7細胞所引起的炎癥反應,其效果呈劑量依賴性。此外,在分子水平上檢測到的細胞因子mRNA表達水平與ELISA結果一致,進一步證明OP通過調節炎性基因表達來調控相應細胞因子的分泌水平,從而對LPS刺激的RAW264.7細胞發揮一定的保護作用。

HWANG等[27]發現牡蠣水解到的牡蠣肽可能通過NF-κB通路對由LPS誘導的RAW264.7細胞炎癥有抗炎作用。LI等[28]發現青蛤蛋白肽通過激活NF-κB通來增強RAW 264.7細胞巨噬細胞吞噬功能。為進一步探討牡蠣肽對RAW264.7細胞的免疫調節機制,研究采用蛋白免疫印跡法檢測NF-κB信號通路主要蛋白的表達情況。研究表明,TLR4能夠識別外來入侵物質,并通過下游信號分子MyD88轉導胞內信號,MyD88通過激活NF-κB信號通路,在宿主先天免疫應答中釋放TNF-α、IL-1β等細胞因子[29]。NF-κB信號通路是調節腸道上皮細胞生物學、黏膜炎癥和感染的重要轉錄系統,是調節促炎酶和細胞因子基因表達的重要轉錄調控因子[30]。它可以介導參與細胞代謝和免疫應答的特定基因的表達,調控NF-κB的表達活化也是治療多種炎癥相關疾病的有效方法。NF-κB的活化途徑最終是通過降解磷酸化IκBα蛋白,并解除NF-κB的抑制狀態來完成的。在細胞受到外界各種因素(如LPS和細胞因子)刺激后,IκBα激酶在激活后參與p65的磷酸化反應,并激活NF-κB信號通路[31]。隨后,IL-6、TNF-α和IL-10等與免疫應答相關的基因得到表達。本研究結果表明,采用高劑量OP處理不僅顯著降低了RAW264.7細胞中p-p65/p65比值,而且降低了p-IκBα/IκBα比值。OP通過調控NF-κB信號通路,降低RAW264.7細胞的炎癥反應,具體表現在抑制TNF-α、IL-6和IL-10的分泌,以及TNF-α、IL-6和IL-10的下游mRNA表達。本實驗結論與HWANG等[27]之前報道的牡蠣肽可以緩解RAW264.7細胞炎癥的結果一致。

綜上所述,牡蠣活性肽可以提高RAW264.7巨噬細胞的吞噬能力,并提高了巨噬細胞NO、TNF-α、IL-6、IL-1β以及IL-10分泌水平以及相應的mRNA表達量。提示OP可恢復巨噬細胞Th1/Th2免疫平衡,起到一定的免疫保護作用,并且其影響機制可能與NF-κB信號通路的激活有關。