李玉梅,高玉民,朱彥威,毛偉芳,趙文利,吳云強,王志芬*
(1.濟南市農業科學研究院,山東濟南 250316;2.山東省農業科學院經濟作物所,山東濟南 250100)
丹參為唇形科植物丹參(Salvia miltiorrhiza Bge.)的干燥根及根莖,屬于大宗常用中藥材之一,其根含有多種生物活性物質,主要化學成分為丹參酮、丹酚酸等化合物,具有活血祛瘀、通經止痛、清心除煩和涼血消癰的功效[1]。隨著丹參藥用價值的不斷開發利用,市場需求量增加,丹參野生資源不能滿足市場需求,而人工栽培由于藥田生物群落多樣性差,病蟲害的大量發生以及只種不選的生產模式,大大降低了丹參的品質和產量,嚴重制約了丹參產業的健康快速發展,促使丹參組培快繁成為人們研究的熱點[2]。利用現代生物技術組培快繁對丹參進行提純復壯,提供優質無病蟲害的種苗,為大批量生產丹參優質種苗奠定基礎,對提高丹參產量及品質有著非常重要的意義。
以丹參植株葉片為外植體,以6-BA、NAA和2,4-D三種激素不同濃度配比,優化配方和培養條件,研究不同種類和濃度的植物生長調節劑對丹參葉片愈傷誘導、芽增殖以及生根的影響。丹參優選植株,由濟南岳圣中藥材種植合作社提供。MS培養基,購自石家莊紐春特組培科技有限公司的成品培養基。高壓滅菌鍋為江陰濱江醫療設備有限公司生產,型號LS-150LD。試驗用藥品2.4-D、6-BA、NAA由濟南普朗特生物科技有限公司提供,純度≥99%。
1.2.1 外植體處理和愈傷誘導培養
1)愈傷培養基制備。根據丹參培養基配方配置培養基備用。培養基pH值滅菌前調制為6.2,滅菌后5.8~6.0。接種后,統計不同激素配比的培養基對丹參愈傷誘導的影響。
2)丹參葉片選取與處理。選取芽尖幼嫩葉片,放入三角瓶,用密紗布扎口。①用自來水流水沖洗15 min,除去外植體上的泥沙灰塵。②將初次處理過的外植體置于超凈工作臺,先放入無菌瓶,用無菌水搖晃沖洗2~3次;再用濃度75%的乙醇溶液晃動滅菌15~20 s,無菌水沖洗4次;然后用0.1%的氯化汞溶液滅菌處理(因丹參葉片密被絨毛,滅菌時,可加入幾滴吐溫-80,有助于徹底殺菌)。處理時間分別設置為5 min、7 min、10 min、12 min、15 min,共5個梯度,無菌水分別沖洗4~5次,其間一直晃動。③在無菌培養皿內,用無菌剪子把葉片剪成3 mm×5 mm大小,修掉葉緣,用無菌鑷子放入目標愈傷培養基,進行愈傷培養。④1個培養瓶接種1個外植體,共50瓶。于培養室報紙遮光暗,培養7天后,定期觀察外植體愈傷產生情況及污染情況,15天后開始統計愈傷誘導率和污染率。愈傷誘導率=愈傷產生數/接種數×100%,污染率=污染數/接種數×100%。培養條件:培養溫度(23±2)℃。
1.2.2 芽增值繼代培養
不同濃度的6-BA和NAA激素組合對丹參芽增殖的影響,采用雙因素完全隨機區組試驗設計,分別設置激素6-BA濃度為2.0、1.5、1.0、0.7、0.5、0 mg/L,對應NAA濃度分別為1.0、0.8、0.5、0.3、0.3、0 mg/L,組成6個試驗處理,MS為基本培養基,配置滅菌處理待用。在芽增殖培養基的組培瓶內,1瓶接種愈傷塊4個,1塊大小0.3 mm×0.5 mm,1個處理20瓶,共160瓶。pH值為5.8~6.2。培養條件:培養溫度(24±2)℃,光照強度為培養瓶外4 500 lx、培養瓶內1 500~2 000 lx,光照時間為12 h/天。培養20 天后,觀察生長情況并統計芽增殖系數。芽增殖系數=芽增殖數/接種數×100%。
1.2.3 丹參組培苗的生根培養
將高約3 cm的組培苗,無菌操作條件下,剪成1 cm長節段,至少帶一葉一芽,分別接種在含有不同NAA濃度的培養瓶中進行生根培養。1/2MS為基本培養基,NAA濃度分別為0、0.3、0.5、0.7 mg/L,共4個處理,1個處理接種20瓶,接種5 株/瓶,共100株,pH值為6.2。培養條件:培養溫度(24±2)℃,光照強度4 500 lx,光照時間12 h/天。培養7天后,開始觀察無菌苗的生根情況,40天后,統計生根率。生根率=生根數/接種數×100%。
1.2.4 溫度對丹參組培苗生長的影響
將高0.5 cm左右的帶腋芽莖段接種在芽增殖培養基中,置于不同溫度的光照培養室中進行培養。培養溫度分別為19℃、21℃、23℃、25℃、27℃、29℃,光照強度4 500 lx,光照時間為12 h/天。培養10天后觀察生長情況,統計丹參組培苗生長情況。
1.2.5 光照強度對組培苗生長情況的影響
將高度1 cm左右的帶腋芽莖段或幼苗分別接種在芽生長培養基中。設定光照強度分別為1 500 lx、3 000 lx、4 500 lx、8 000 lx,設定光照時間分別為12 h/天,培養溫度為(23±2)℃。培養10天后,觀察丹參組培苗生長情況。
可以看出,0.1%的氯化汞溶液給丹參葉片滅菌,最佳滅菌時間10~12 min。在一定時間段內,隨著滅菌時間的增加,污染率降低,愈傷誘導率增加。當滅菌時間超過12 min,出現褐化,隨著滅菌時間增加,褐化增加,誘導率降低(表1)。

表1 不同消毒時間對污染率和愈傷誘導率的影響
可以看出,配方①愈傷產生率高,愈傷組織生長狀況良好,芽分化時間早,適合丹參葉片愈傷組織培養(表2)。

表2 不同激素配比的培養基配方對丹參愈傷誘導的影響
可以看出,6-BA 1.0 mg/L和NAA 0.5 mg/L激素組合配方,為最佳組合,增值倍數高達12.6倍,芽葉生長正常,無玻璃化現象(表3)。

表3 6-BA和NAA激素的不同濃度組合對丹參芽增殖的影響
可以看出,NAA濃度為0.5 mg/L時,生根率98%,根長4~6 cm,基部根粗0.1~0.2 mm,單株根條數4根以上,適宜丹參組培苗生根培養(表4)。

表4 NAA的不同濃度對丹參組培苗生根的影響
可以看出,培養溫度在(23±2)℃范圍內,葉色、株高、莖粗及節間長度都符合丹參試管苗的生長需要(表5)。

表5 培養溫度對組培苗生長的影響
可以看出,光照強度為4 500 lx時,丹參組培苗生長指標正常(表6)。

表6 光照強度對組培苗生長的影響
丹參組織培養技術可以使選育的丹參良種在短時間內大量快速繁殖,也可解決因長期營養繁殖導致的品種退化和攜帶病毒等問題,而確定適合的組織培養條件是關鍵。實驗在前人研究[2-4]基礎上,研究了激素濃度和培養條件對丹參組培技術的影響。
1)用0.1%的氯化汞溶液給丹參葉片滅菌,最佳滅菌時間10~12 min。
2)丹參組培最佳培養基:葉片誘導愈傷培養基為MS(40 g/L)+6-BA(3.0 mg/L)+NAA(0.5 mg/L)+2.4-D(0.01 mg/L);叢生芽最佳誘導培養基為MS+6-BA(1.0 mg/L)+NAA(0.5 mg/L);最佳生根培養基為1/2MS+NAA(0.5 mg/L)。
3)丹參組培苗的最佳生長溫度為(23±2)℃,光照強度4 500 lx左右,組培苗株高、葉色、莖粗及節間長度符合丹參組培苗生產要求,移栽煉苗成活率高。丹參組織培養只有在適宜的溫度和光照強度下,組培苗才能生長正常。
4)對溫度與光照影響丹參組培苗生長進行了觀察,溫度與光照對生根的影響則有待進一步研究。建議要考慮丹參品種間差異的影響,以使丹參組織培養技術進一步優化,建立指導性強的丹參組織培養技術體系,提高丹參組培育苗技術要領,節約成本且創造更高的經濟效益。