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類視黃醇X受體對缺氧/復(fù)氧誘導(dǎo)的大鼠II型肺泡上皮細(xì)胞氧化應(yīng)激反應(yīng)的調(diào)控作用*

2024-03-05 02:45:10王肖婷徐俊鵬陳思安張淇昊曹文傑田云娜王萬鐵
中國病理生理雜志 2024年1期
關(guān)鍵詞:氧化應(yīng)激檢測

王肖婷, 徐俊鵬▲, 黃 曼, 陳思安, 張淇昊, 曹文傑,田云娜, 高 慧, 王萬鐵△

(1溫州醫(yī)科大學(xué)缺血/再灌注損傷研究所,浙江 溫州 325035;2河南大學(xué)附屬淮河醫(yī)院病理科,河南 開封 475000)

肺原發(fā)性移植物功能障礙是一種嚴(yán)重的急性肺損傷,導(dǎo)致肺移植后早期發(fā)病率和死亡率增加,其發(fā)病機(jī)制主要是肺缺血再灌注損傷(lung ischemia-reperfusion injury, LIRI)[1]。臨床上大量肺移植、心肺復(fù)蘇等手術(shù)應(yīng)用的同時,也大大提高了LIRI 的發(fā)生率,由于目前臨床上尚無有效的防治措施,嚴(yán)重影響患者的預(yù)后康復(fù)甚至威脅生命。

LIRI的病理生理機(jī)制復(fù)雜,一個特定器官由于缺血引起的組織損傷往往會在再灌注時進(jìn)一步加劇,這一過程比缺血本身更加有害。這一過程需要有氧的存在、血管、體液以及細(xì)胞因子的激活和維持[1],機(jī)體在各種有害刺激下,發(fā)生氧化應(yīng)激反應(yīng),產(chǎn)生并聚集大量活性氧(reactive oxygen species, ROS),引發(fā)一系列細(xì)胞和組織病理性反應(yīng)。當(dāng)機(jī)體遭受不良刺激時,ROS 可在II 型肺泡上皮細(xì)胞(type II alveolar epithelial cells, AECII)、內(nèi)皮細(xì)胞、肺泡巨噬細(xì)胞等肺組織細(xì)胞中的積聚,通過核因子κB(nuclear factorκB, NF-κB)等轉(zhuǎn)錄因子激活炎癥過程,引起染色質(zhì)重塑和促炎癥介質(zhì)基因的表達(dá),從而加劇氧化應(yīng)激反應(yīng),引起肺組織損傷[2-3]。

類視黃醇X 受體(retinoid X receptor, RXR)是繼視黃酸受體之后發(fā)現(xiàn)的又一類核受體,主要包括3個亞型,其中以RXRα 研究最為充分。近年來,對RXR 的研究越來越多,人們對于RXR 的作用不斷有了新的認(rèn)識。研究表明,RXR 廣泛參與腫瘤、糖尿病、心血管疾病等疾病過程[4-5]。研究報(bào)道,RXR 激動劑可以通過抑制蛋白激酶C 途徑來增強(qiáng)細(xì)胞抗氧化能力,削弱高糖誘導(dǎo)下血管內(nèi)皮細(xì)胞產(chǎn)生的氧化應(yīng)激反應(yīng),其機(jī)制可能與RXRα 的抗氧化應(yīng)激效應(yīng)有關(guān)[6]。AECII是LIRI中主要的效應(yīng)細(xì)胞,故本研究以大鼠AECII 為主要研究目標(biāo),通過建立細(xì)胞缺氧/復(fù)氧(hypoxia/reoxygenation, HR)損傷模型,模擬在體LIRI[7-8],旨在進(jìn)一步明確氧化應(yīng)激在HR 損傷中的發(fā)生機(jī)制;同時以RXR 為研究靶點(diǎn),通過RXR 激動劑和抑制劑對AECII 進(jìn)行預(yù)處理,研究RXR 在肺HR 損傷誘導(dǎo)的氧化應(yīng)激反應(yīng)過程中的可能作用及其調(diào)控機(jī)制,從而為在體LIRI的防治提供參考。

材 料 和 方 法

1 實(shí)驗(yàn)細(xì)胞

大鼠AECII 系購自武漢普諾賽生命科技有限公司。

2 主要試劑及儀器

高糖DMEM 培養(yǎng)液、胎牛血清、青-鏈霉素混合液、PBS、0.25%胰酶(含EDTA)和無血清細(xì)胞凍存液為進(jìn)口分裝或國產(chǎn)分析純;RXR 激動劑9-順式視黃酸(9-cis-retinoic acid, 9-RA)和RXR拮抗劑HX531購自Sigma;CCK-8 試劑盒購自Dojindo;抗表面活性物質(zhì)蛋白A(surfactant protein A, SP-A)、RXRα 和核因子E2 相關(guān)因子2(nuclear factor E2-related factor 2,Nrf2)抗體購自Abcam;Nrf2 引物設(shè)計(jì)合成購自上海生工生物工程股份有限公司;即用型BCA 蛋白定量試劑盒購自上海雅酶生物醫(yī)藥科技有限公司;總超氧化物歧化酶(superoxide dismutase, SOD)測定試劑盒(WST-1 法)和丙二醛(malondialdehyde, MDA)測定試劑盒(微板法)購自南京建成生物工程研究所。

凝膠成像系統(tǒng)(Bio-Rad);高通量熒光定量PCR儀(ABI);透射電鏡(Hitachi)。

3 主要方法

3.1 實(shí)驗(yàn)分組及ACEⅡ缺氧/復(fù)氧模型的制備 按照隨機(jī)原則將細(xì)胞分為:(1)對照(control, C)組:含10%胎牛血清的高糖DMEM 培養(yǎng)液常氧箱內(nèi)培養(yǎng)30 h;(2)HR 組:低氧箱內(nèi)(參數(shù)37 ℃,1% O2)無糖無血清DMEM 培養(yǎng)液處理細(xì)胞6 h 后,使用無血清的DMEM 培養(yǎng)液常氧箱內(nèi)正常培養(yǎng)24 h;(3)HR+溶劑二甲基亞砜(dimethyl sulfoxide, DMSO)組(HD 組):在缺氧造模前用含終濃度低于0.1% DMSO 的無血清培養(yǎng)液處理1.5 h;(4)HR+9-RA 組(RA 組):用含9-RA(100 nmol/L)的無血清培養(yǎng)液預(yù)處理細(xì)胞1 h,之后進(jìn)行缺氧/復(fù)氧處理;(5)HR+HX531組(HX組):在缺氧造模前先用100 nmol/L 的9-RA 預(yù)處理細(xì)胞0.5 h,再用2.5 μmol/L 的HX531 預(yù)處理1 h,其余處理同HR組。HR模型參考其他學(xué)者研究方法及在本實(shí)驗(yàn)室前期研究基礎(chǔ)上[7-10],通過預(yù)實(shí)驗(yàn)多次實(shí)踐再進(jìn)行整合改進(jìn)構(gòu)建大鼠缺氧/復(fù)氧模型。細(xì)胞缺氧處理用無糖無血清培養(yǎng)液培養(yǎng)并放置于低氧箱6 h后再用不含血清的高糖DMEM 培養(yǎng)液,放置常氧箱恢復(fù)氧氣培養(yǎng)24 h。

3.2 免疫熒光標(biāo)記法 用4%多聚甲醛固定細(xì)胞,經(jīng)打孔處理后,進(jìn)行封閉處理,滴加相應(yīng)Ⅰ抗(Nrf2,1∶1 000)后放于濕盒內(nèi)避光,4 ℃冰箱孵育過夜,PBS洗滌3 次后用對應(yīng)的熒光Ⅱ抗(1∶5 000)室溫避光孵育1 h 后,再次PBS 充分洗滌3 次,使用DAPI 對核進(jìn)行染色,封片,并在正置熒光顯微鏡下觀察并拍片。

3.3 CCK-8 實(shí)驗(yàn) 根據(jù)CCK-8 試劑盒說明書進(jìn)行實(shí)驗(yàn),按照VCCK-8∶V培養(yǎng)液=1∶10 進(jìn)行混合。96 孔板每孔加入110 μL CCK8 和培養(yǎng)液的混合液,37 ℃孵育1 h,450 nm測每孔的吸光度(A)值。

3.4 檢測細(xì)胞SOD 活性 首先,用蛋白酶抑制劑PMSF+RAPI 法提取細(xì)胞蛋白樣品,用BCA 法測蛋白濃度,再按照SOD 試劑盒使用說明步驟對試劑反應(yīng)液進(jìn)行配制和添加,水浴鍋37 ℃孵育30 min 后立即在酶標(biāo)儀450 nm 處測定A值,計(jì)算SOD 活性。SOD活性(U/mg)=SOD 抑制率/50%×反應(yīng)體系稀釋倍數(shù)(0.24 mL/0.02 mL)/待測樣品蛋白濃度(mg/mL),SOD 抑制率(%)=[(A對照-A對照空白)-(A測定-A測定空白)]/(A對照-A對照空白)×100%。

3.5 檢測細(xì)胞MDA 含量 提取細(xì)胞蛋白并測定蛋白濃度。按照試劑盒說明書滴加反應(yīng)液,EP 管用針頭刺一小孔,放于水浴鍋95 ℃高溫孵育40 min,流水下沖洗使之逐漸冷卻,離心機(jī)2 680×g進(jìn)行離心15 min,吸取200 μL 上清液在96 孔板中,酶標(biāo)儀立即測定各管在532 nm處的A值,計(jì)算MDA 含量。MDA 含量(nmol/mg)=(A測定-A對照)/(A標(biāo)準(zhǔn)-A空白)×標(biāo)準(zhǔn)品濃度(10 nmol/mL)/待測樣品蛋白濃度(mg/mL)。

3.6 透射電鏡觀察細(xì)胞超微結(jié)構(gòu)的變化 用1 mL戊二醛固定液固定細(xì)胞,放到4 ℃冰箱過夜。隔日用PBS 放置搖床上洗3 次后,按照1%鋨酸后固定,1%醋酸鈾塊染,丙酮梯度脫水、浸透,環(huán)氧樹脂812 包埋劑包埋聚合的順序依次進(jìn)行,然后超薄切片,最后透射電鏡下觀察并拍攝。

3.7 RT-PCR 檢測Nrf2 的mRNA 表達(dá) 使用Trizol法提取細(xì)胞總RNA。將RNA 逆轉(zhuǎn)錄成cDNA,然后進(jìn)行PCR 擴(kuò)增。擴(kuò)增結(jié)束用2.0%瓊脂糖凝膠對其進(jìn)行電泳,然后全自動凝膠成像系統(tǒng)曝光成像半定量分析。Nrf2 的上游引物序列為5'-GAAAAGAAGTGGGCAACTGTGG-3',下游引物序列為5'-GGTGGGATTTGAGTCTAAGGAGGT-3',擴(kuò)增產(chǎn)物長度為117 bp;內(nèi)參照GAPDH 的上游引物序列為5'-ATTGCCGACAGGATGCAGAA-3',下游引物序列為5'-GAATGTGGATAGGCTGGCGA-3'。

3.8 Western blot 檢測Nrf2 蛋白表達(dá) 造模結(jié)束后立即按照VPMSF∶VRAPI裂解液=1∶100 配制裂解混合液,冰上裂解細(xì)胞30 min 后收集6 孔板裂解液,超聲后離心收集細(xì)胞上清液并用BCA 法測定蛋白濃度,加入上樣緩沖液后金屬孵育器(100 ℃)孵育10 min變性。依次經(jīng)電泳儀電泳,轉(zhuǎn)膜(濕轉(zhuǎn))、10%脫脂牛奶封閉2 h,Tris-HCl 緩沖鹽溶液+Tween 20 (TBST)洗膜3次,Nrf2 抗體(1∶1 000)4 ℃孵育過夜。TBST 充分洗滌后,Ⅱ抗(1∶10 000)室溫孵育1 h,TBST 洗膜3 次,滴加適量ECL 發(fā)光液(VA液∶VB液=1∶1),用化學(xué)發(fā)光成像系統(tǒng)進(jìn)行曝光拍攝,半定量分析。

4 統(tǒng)計(jì)學(xué)處理

采用GraphPad Prism 9 統(tǒng)計(jì)軟件進(jìn)行數(shù)據(jù)分析。所有計(jì)量資料以均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差(mean±SD)表示。數(shù)據(jù)服從正態(tài)分布,則多組樣本均數(shù)間的比較使用單因素方差分析評估統(tǒng)計(jì)意義;否則,使用Kruskal-Wallis檢驗(yàn)來評估統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。以P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

結(jié) 果

1 免疫熒光標(biāo)記法鑒定AECII

用免疫熒光標(biāo)記法檢測AECII 的特異性表達(dá)標(biāo)志物SP-A。熒光顯微鏡觀察結(jié)果顯示:藍(lán)色熒光為細(xì)胞核,紅色熒光為SP-A蛋白位置,定位于AECII細(xì)胞核周邊,證實(shí)本實(shí)驗(yàn)細(xì)胞為AECII,見圖1。

Figure 1. Identification of type II alveolar epithelial cells. Blue arrow: nucleus; yellow arrow: surfactant protein A(SP-A).圖1 免疫熒光標(biāo)記法鑒定II型肺泡上皮細(xì)胞的結(jié)果

2 CCK-8檢測AECII活力

與C組比較,其余四組細(xì)胞的A值可見顯著下降(P<0.05);與HR 組比較,RA 組的A值顯著升高(P<0.05);與RA 組比較,HX 組的A值顯著降低(P<0.05);而HR、HD 和HX 三組兩兩相比,A值無顯著差異(P>0.05),見圖2。

Figure 2. The changes of absorbance value in all groups. Mean±SD. n=5. ▲P<0.05 vs C group; #P<0.05 vs HR group; *P<0.05 vs RA group.圖2 CCK-8檢測結(jié)果

3 免疫熒光標(biāo)記法檢測AECII中RXRα表達(dá)

與C組相比,其余四組細(xì)胞中的RXRα含量顯著增加(P<0.01);與HR 組相比,RA 組的RXRα含量增加(P<0.01);與RA 組對比,HX 組細(xì)胞的RXRα含量顯著降低(P<0.01);而HR、HD、HX 三組兩兩相比,細(xì)胞中RXRα含量無顯著差異(P>0.05),見圖3。

Figure 3. The RXRα expression was detected by immunofluorescence staining (scale bar=100 μm). Mean±SD. n=5. ▲▲P<0.01 vs C group; ##P<0.01 vs HR group;**P<0.01 vs HD group; △△P<0.01 vs RA group.圖3 免疫熒光標(biāo)記法檢測RXRα表達(dá)結(jié)果

4 AECII中的SOD活性和MDA含量

與C 組相比,HR、HD、RA 和HX 這4 組在相應(yīng)處理后細(xì)胞的SOD 活性均下降(P<0.05),而此4 組細(xì)胞MDA 的表達(dá)上升(P<0.05);與HR 組相比,RA 組的SOD 活性增高(P<0.05),而MDA 表達(dá)下降(P<0.05);與RA 組相比較,HX 組細(xì)胞的SOD 活性減少(P<0.05),細(xì)胞中MDA 表達(dá)增加(P<0.05);而HR、HD 和HX 三組兩兩相比,SOD 活性及MDA 含量的變化無顯著差異(P>0.05),見圖4。

Figure 4. Changes of SOD activity (A) and MDA content (B) in each group. Mean±SD. n=5. ▲P<0.05 vs C group; #P<0.05 vs HR group; *P<0.05 vsRA group.圖4 SOD活性和MDA含量檢測結(jié)果

5 透射電鏡觀察AECII超微結(jié)構(gòu)

透射電鏡下看見,C組肺泡細(xì)胞結(jié)構(gòu)未見明顯異常,可見豐富的板層小體;與C 組相比,剩余四組肺泡細(xì)胞內(nèi)部可見結(jié)構(gòu)出現(xiàn)不同程度的紊亂。其中HR、HD 和HX 三組AECII 內(nèi)線粒體發(fā)生高度腫脹,線粒體嵴線溶解甚至消失,偶見變異性的增生,板層小體變性,出現(xiàn)空泡化現(xiàn)象;RA 組相較于HR、HD 和HX三組,AECII損傷減弱,板層小體數(shù)目增多且空泡化現(xiàn)象減少,線粒體結(jié)構(gòu)相對較為完整,線粒體僅出現(xiàn)輕微腫脹且線粒體嵴清晰。見圖5。

Figure 5. Ultrastructure of the cells under electron microscope.n=5. Scale bar=0.5 μm. The yellow arrow indicates mitochondria, and the blue arrow indicates lamellar bodies.圖5 透射電鏡觀察結(jié)果

6 AECII中Nrf2表達(dá)

RT-PCR 檢測結(jié)果顯示,與C 組相比,HR、HD、RA 和HX 這四組的Nrf2 mRNA 表達(dá)均顯著減少(P<0.01);與HR和HD組相比,RA組的Nrf2 mRNA表達(dá)顯著增加(P<0.01);與RA 組相比,HX 組表達(dá)下降(P<0.01);HR、HD 和HX 三組兩兩相比,各組細(xì)胞Nrf2 mRNA表達(dá)改變無顯著差異(P>0.05),見圖6。

Figure 6. The mRNA expression of Nrf2 in each group. Mean±SD. n=5. ▲▲P<0.01 vs C group; ##P<0.01 vs HR group; **P<0.01 vs HD group; △△P<0.01 vs RA group.圖6 RT-PCR檢測結(jié)果

與C 組相比,剩余四組細(xì)胞中Nrf2 蛋白的表達(dá)下降(P<0.05);與HR 和HD 組相比,RA 組的Nrf2 蛋白表達(dá)顯著升高(P<0.01);與RA 組相比,HX 組表達(dá)下降(P<0.01);HR、HD 和HX 三組兩兩相比,Nrf2蛋白表達(dá)變化無顯著差異(P>0.05),見圖7。

Figure 7. The protein expression of Nrf2 in each group. Mean±SD. n=5. ▲P<0.05, ▲▲P<0.01 vs C group; ##P<0.01 vs HR group; **P<0.01 vs HD group; △△P<0.01 vs RA group.圖7 Western blot檢測結(jié)果

討 論

氧化應(yīng)激反應(yīng)是肺缺血再灌注損傷重要的發(fā)生機(jī)制,其產(chǎn)生病理性損害的直接原因是ROS的積聚,ROS 是一種高度不穩(wěn)定的氧分子,肺內(nèi)大量自由基的增加,使導(dǎo)致肺細(xì)胞結(jié)構(gòu)以及功能的異常,伴隨細(xì)胞通透性增加、腫脹甚至溶解壞死,肺毛細(xì)血管通透性異常,大量組織液無法及時被系統(tǒng)吸收,最終發(fā)展為肺水腫[11]。在病理?xiàng)l件下,大量自由基的迅速堆積引起自由基清除系統(tǒng)超負(fù)荷工作而被迫"癱瘓",必然引起細(xì)胞的損傷[12]。目前研究認(rèn)為,Nrf2 在細(xì)胞介導(dǎo)的抗氧化應(yīng)激防御反應(yīng)中發(fā)揮著不可或缺的重要作用[13]。另外, SOD是一種抗氧化酶,在氧化應(yīng)激反應(yīng)的緩沖中占有關(guān)鍵地位,具有清除ROS 的特殊功能。機(jī)體發(fā)生氧化應(yīng)激反應(yīng)時,抗氧化機(jī)制無法滿足機(jī)體的正常運(yùn)轉(zhuǎn)需求,必然造成脂質(zhì)過氧化反應(yīng),從而生成降解產(chǎn)物MDA,引起細(xì)胞結(jié)構(gòu)的損傷[14]。MDA的含量也可以反映機(jī)體內(nèi)脂質(zhì)氧化的程度。本實(shí)驗(yàn)通過測定細(xì)胞SOD、MDA 和Nrf2 來檢測細(xì)胞損傷程度,結(jié)果表明,與C 組比較,HR、HD、RA和HX 四組的MDA 含量均升高,SOD 活性和Nrf2 mRNA 及蛋白表達(dá)水平均下降。另外,細(xì)胞活力呈下降趨勢,細(xì)胞超微結(jié)構(gòu)也發(fā)生損傷性改變,表明缺氧/復(fù)氧作為誘因引發(fā)了氧化應(yīng)激反應(yīng),最終導(dǎo)致大鼠AECII損傷性改變。

RXR 是細(xì)胞核激素受體超家族中的重要成員之一,已經(jīng)證實(shí)RXR 是由位于人類9 號染色體(RXRA,又稱NR2B1)、6號染色體(RXRB、NR2B2)和1號染色體(RXRG,NR2B3)三個不同基因編碼[15]。RXR 可以與甲狀腺素受體(thyroid hormone receptor, TR)、維生素D 受體(vitamin D receptor, VD)等受體結(jié)合形成二聚體,發(fā)揮不同的生物學(xué)效應(yīng)。RXRα作為其重要的分型之一,廣泛表達(dá)于多個臟器,參與多種疾病的發(fā)生發(fā)展。RXRα的抗氧化應(yīng)激效應(yīng),維護(hù)細(xì)胞穩(wěn)定等特性已被得到證實(shí)[6]。本實(shí)驗(yàn)通過運(yùn)用RXR 激動劑9-RA 和RXR 拮抗劑HX531 來干預(yù),結(jié)果顯示,與HR、HD 和HX 組相比,RA 組的MDA 含量顯著降低,SOD 活性、Nrf2 mRNA 及蛋白表達(dá)水平升高,細(xì)胞活力上升,細(xì)胞損傷程度減輕。而在應(yīng)用RXR 拮抗劑HX531 后,上述作用被成功阻斷。這些結(jié)果證明激動RXR 在一定程度上可通過抑制氧化應(yīng)激反應(yīng),對HR損傷的大鼠AECII起到一定保護(hù)作用。

綜上所述,HR 可加劇大鼠AECII 的氧化應(yīng)激反應(yīng),而激動RXR 在一定程度上減輕了大鼠AECII 的HR 損傷,提示其機(jī)制可能與抑制氧化應(yīng)激反應(yīng)有關(guān)。本研究為在體肺缺血/再灌注損傷的防治提供了新的有效干預(yù)靶點(diǎn)。

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