曾希珂,易 姿,楊麗霞,黃小貝,2,趙 佳
(1 長沙市食品藥品檢驗所,湖南 長沙 410036;2 國家酒類產品質量檢驗檢測中心,湖南 長沙 410036)
氯霉素(CAP)是一種廣譜抗生素,具有殺菌消炎的作用,使用后能明顯改善皮膚狀態[1]。然而,長期使用添加氯霉素的化妝品會產生嚴重的副作用,可能引起皮疹、過敏等不良反應,表現為紅斑、水腫、糜爛、灼熱、脫屑等,還會誘發再生障礙性貧血、骨髓抑制[2-5]等疾病,對人體健康構成嚴重危害。因此,我國《化妝品安全技術規范》[6]規定氯霉素為化妝品禁用組分。目前,檢測化妝品中氯霉素的常用方法有高效液相色譜法[7-8]、液相色譜-質譜聯用法[9-10]、酶聯免疫法[11]等,這些方法可以實現對氯霉素高靈敏度檢測,但大都依賴大型精密貴重儀器,樣品前處理復雜,基質干擾較強,分析時間長,不利于快速篩查。因此,尋找一種簡單快速且可靠的方法檢測氯霉素具有重要意義。
貴金屬納米簇由于其發光效率高、合成簡便、低毒性及生物相容性好等優點,為生物傳感領域提供了一種新型高效的分析方法[12]。其中,金納米簇光學穩定性好、發光性能優良,具有廣泛的應用前景。Wang等[13]以聚A(腺嘌呤)為模板的單鏈DNA可以簡單快速的合成金納米簇,且發光性能良好。歐麗娟等[14]利用聚A單鏈DNA為模板合成金納米簇,建立了一種檢測汞離子的熒光方法,該方法簡單快速,靈敏度高,選擇性好。
基于此,本文利用聚A單鏈DNA為模板合成的金納米簇作為熒光探針,構建一種新的熒光生物傳感方法用于檢測化妝品中的氯霉素,以期為化妝品中氯霉素的快捷檢測提供參考。
A30-DNA單鏈、氯金酸(HAuCl4)、10×PBS緩沖液:生工生物工程(上海)股份有限公司;
青霉素、頭孢氨芐、鏈霉素、卡那霉素、鹽酸林可霉素:USP級,生工生物工程(上海)股份有限公司;
五水合硫酸銅、檸檬酸三鈉、甘氨酸、精氨酸、葡萄糖、麥芽糖、蔗糖、氯化鈣、氯化鎂等:分析純,國藥集團化學試劑有限公司;
試驗用水:超純水(電阻率>18.2 MΩ·cm),超純水系統SMARTPLUS-N;
LS-55型熒光分光光度計,珀金埃爾默股份有限公司;
ME204電子天平,瑞士Mettler Toledo公司。
取10 μmol/L A30-DNA模板40 μL,1 mmol/L氯金酸溶液60 μL,50 mmol/L檸檬酸鈉溶液100 μL混合后,加入800 μL超純水,最終反應總體積為1 mL。將混合液置于90 ℃水浴鍋里反應30 min后迅速放入4 ℃冰箱里避光保存,得到熒光金納米簇溶液。
由于反應溫度、加入氯霉素的反應時間、緩沖液pH值是影響氯霉素檢測的重要參數,采用單一變量原則,對3個參數進行了優化。
1.3.1 反應溫度的優化
取AuNCs溶液80 μL,3 mmol/L氯霉素溶液10 μL,10×PBS緩沖液10 μL混合均勻成100 μL體系,考察反應溫度(5,15,25,35,45,55 ℃)對體系熒光強度的影響。
1.3.2 反應時間的優化
取AuNCs溶液80 μL,3 mmol/L氯霉素溶液10 μL,10×PBS緩沖液10 μL混合均勻成100 μL體系,考察加入氯霉素反應時間(0,1,2,3,4,5,6,7,8 min)對體系熒光強度的影響。
1.3.3 緩沖液pH值的優化
取AuNCs溶液80 μL,3 mmol/L氯霉素溶液10 μL,10×PBS緩沖液10 μL混合均勻成100 μL體系,考察緩沖液pH值(5,5.5,6,6.5,7,7.5,8)對體系熒光強度的影響。
按照1.2的方法合成熒光金納米顆粒,再按照1.3最優條件對終濃度為0,0.01,0.1,10.0,20.0,30.0,40.0,50.0,60.0,80.0,100.0,150.0,200.0,300.0,400.0 μmol/L的氯霉素進行測定。使用熒光分光光度計測量熒光,激發波長290 nm,狹縫寬度10 nm,掃描范圍400~560 nm,發射波長475 nm。
為了驗證方法的特異性,按照1.4的試驗方法對濃度為50 mmol/L的青霉素、頭孢氨芐、鏈霉素、卡那霉素、鹽酸林可霉素、甘氨酸、精氨酸等多種目標物進行測定,使用熒光分光光度計測量熒光。
化妝品樣品前處理方法參照標準GB/T 24800.1-2009[15]略作修改:稱取1 g化妝品樣品置于50 mL離心管中,加入20 mL甲醇,超聲提取20 min后于渦旋混勻儀上混勻1 min,以6 000 r/min離心5 min,吸取1 mL上清液氮吹至干,加純水定容至10 mL,過0.22 μm濾膜后用于樣品分析。采用標準加入法進行化妝品樣品中氯霉素的分析。
試驗方法的檢測原理如圖1所示,以聚A單鏈DNA為模板,氯金酸為金源,檸檬酸鈉為還原劑,將金離子還原成零價金后富集在聚A-DNA單鏈上,形成強熒光的金納米簇穩定存在于溶液中。加入氯霉素后,氯霉素與金納米簇結合,通過強吸電子作用阻礙電子轉移進程,從而淬滅金納米簇熒光強度,實現對氯霉素的檢測[16]。

圖1 基于聚A單鏈DNA模板金納米簇檢測氯霉素的原理圖Fig.1 Schematic of CAP detection based on A30-DNA template AuNCs
為了檢驗該方法用于化妝品中氯霉素檢測的可行性,即判斷氯霉素的加入對金納米簇熒光強度的影響,分別測定了氯霉素存在與不存在時金納米簇的熒光值。如圖2所示,不存在氯霉素時,檢測到強熒光值(a),而加入氯霉素后,熒光值顯著降低(b)。由此表明該方法適用于氯霉素的檢測。

圖2 不同條件下A30-DNA模板金納米簇的熒光發射光譜圖Fig.2 Fluorescence emission spectra of AuNCs under different conditions
2.3.1 反應溫度的優化
如圖3所示,金納米簇的熒光強度隨溫度的升高先下降后升高,當溫度為25 ℃時,熒光強度最低。因此,選擇25 ℃為最佳反應溫度。

圖3 溫度對金納米簇熒光強度的影響Fig.3 The effect of temperature on the fluorescence intensity of AuNCs
2.3.2 反應時間的優化
如圖4所示,加入氯霉素后金納米簇的熒光強度迅速下降,當反應時間超過5 min后熒光強度趨于平穩。因此,選擇5 min為最佳反應時間。

圖4 時間對金納米簇熒光強度的影響Fig.4 The effect of time on the fluorescence intensity of AuNCs
2.3.3 緩沖液pH值的優化
如圖5所示,緩沖液pH值為5.5時,加入氯霉素后,金納米簇的熒光強度降到最低,因此,選擇pH值為5.5作為后續試驗的緩沖體系。

圖5 pH值對金納米簇熒光強度的影響Fig.5 The effect of pH on the fluorescence intensity of AuNCs
在優化的試驗條件下,對0.01~400 μmol/L范圍內的氯霉素濃度進行了檢測,結果見圖6。由圖6(a)所示,隨著氯霉素濃度的增加,金納米簇熒光強度逐漸降低。圖6(b)顯示了氯霉素濃度與475 nm處的熒光強度之間的關系。在0.01~80 μmol/L的濃度范圍內,金納米簇熒光強度和氯霉素濃度之間呈良好的線性關系,線性回歸方程為:y=-3.419 5CCAP+318.88,線性回歸系數R2=0.996 6,根據空白響應的3倍標準偏差原則確定檢測限為7.0 nmol/L。

圖6 不同濃度氯霉素的熒光發射光譜圖Fig.6 Fluorescence emission spectra with different concentration of CAP
為了驗證檢測方法的特異性,檢測了其他可能產生干擾的抗生素、氨基酸、金屬離子、糖類等對金納米簇熒光強度的影響,結果如圖7所示。從圖7可以明顯看出,只有氯霉素能有效的淬滅金納米簇的熒光,其他干擾物對熒光強度基本無影響,說明該方法對氯霉素的檢測具有高選擇性。

圖7 傳感器的特異性Fig.7 Specificity analysis of the sensor for CAP
為探討化妝品實際樣品中氯霉素測定方法的可行性,對爽膚水、面膜、玻尿酸三種化妝品樣品采用標準加入法評價該方法的實用性,結果見表1,爽膚水樣品中,3個加標水平的平均回收率在98.22%~108.40%,相對標準偏差(RSD,n=6)為3.28%~8.82%;面膜樣品中,3個加標水平的平均回收率在98.12~105.28%,相對標準偏差(RSD,n=6)為2.32%~8.57%;玻尿酸樣品中,3個加標水平的平均回收率在98.55%~107.23%,相對標準偏差(RSD,n=6)為3.21%~7.57%,方法的準確度和精密度較好,可以用于樣品中氯霉素的檢測。

表1 實際樣品中氯霉素的加標回收率Table 1 Recovery of CAP in real samples
本研究以A30單鏈DNA為模板,制備了具有強熒光的金納米簇探針。基于氯霉素和金納米簇之間強的結合作用可以猝滅金納米簇的熒光,提出了以金納米簇為熒光探針快速檢測化妝品中氯霉素的方法。該方法選擇性好,靈敏度高,操作簡單快速,檢測成本低,時間短,在化妝品實際樣品中的檢測具有良好的應用前景。