
摘 要 木質(zhì)素是高等陸生植物細胞壁的主要結(jié)構(gòu)成分,除了加強細胞壁,還對植物直立生長、水分運輸十分重要,并起著天然物理屏障作用,可以抵御生物和非生物脅迫。植物木質(zhì)素的合成是一個復雜的生化過程。主要介紹了木質(zhì)素生物合成途徑中轉(zhuǎn)錄因子NST對木質(zhì)素生物合成的功能及研究進展。通過對NST轉(zhuǎn)錄因子進行梳理,以期能更好地理解NST轉(zhuǎn)錄因子在植物木質(zhì)素生物合成過程中的作用,為今后木質(zhì)素的研究及應用奠定理論基礎(chǔ)。
關(guān)鍵詞 木質(zhì)素;生物合成;NST轉(zhuǎn)錄因子
中圖分類號:Q943.2 文獻標志碼:A DOI:10.19415/j.cnki.1673-890x.2025.03.018
木質(zhì)素最初出現(xiàn)在維管植物中,并認為在植物陸地化過程中發(fā)揮了關(guān)鍵作用。木質(zhì)素在植物生長發(fā)育和逆境響應中發(fā)揮著重要作用,研究發(fā)現(xiàn),木質(zhì)素不僅可以為植物提供機械支持,促進水和溶質(zhì)在維管系統(tǒng)中的運輸,還在植物的被動和主動防御中發(fā)揮重要作用[1],可以作為一種物理屏障,防止病原體入侵和生物寄生[2]。在植物木質(zhì)素生物合成調(diào)控網(wǎng)絡(luò)中,NAC、MYB、WRKY轉(zhuǎn)錄因子家族是被研究最多的家族。木質(zhì)素合成調(diào)控網(wǎng)絡(luò)的上游主要為NAC家族的VND亞族和NST亞族,有研究表明,NST亞族的NST1、NST2、NST3這3個轉(zhuǎn)錄因子是激活次生細胞壁生物合成的轉(zhuǎn)錄開關(guān)[3]。
1" 木質(zhì)素合成途徑
木質(zhì)素通常由對羥基苯基(H)、愈創(chuàng)木酰基(G)和丁香酰基(S)單元聚合組成,分別衍生自3種主要的羥基肉桂醇:對香豆醇、松柏醇和芥子醇;此外,還有2種非典型的木質(zhì)素單體,咖啡醇和5-羥基松柏醇在某些物種中被發(fā)現(xiàn)[4]。木質(zhì)素含量和組成在不同的植物種類、組織、細胞類型和細胞壁層之間差異很大,并受生長發(fā)育和環(huán)境因素的影響。在裸子植物中,H、G木質(zhì)素是主要的木質(zhì)素成分,單子葉植物則含有3種木質(zhì)素,而雙子葉植物則以G、S木質(zhì)素為主。其中,苯丙烷代謝途徑是木質(zhì)素合成的重要途徑,也是其代謝產(chǎn)物的重要來源,為木質(zhì)素的生物合成提供了前體[5]。木質(zhì)素生物合成過程中涉及多個關(guān)鍵結(jié)構(gòu)基因和轉(zhuǎn)錄因子,基于最近對模式植物的研究,已經(jīng)確定了11種木質(zhì)素生物合成途徑的基因[6]:L-苯丙氨酸解氨酶(PAL)、肉桂酸4-羥化酶(C4H)和4-羥基肉桂酸輔酶A連接酶(4CL)是木質(zhì)素和黃酮類化合物生物合成所共有的一般苯丙烷類途徑的3個基因;其他8個基因?qū)儆谀举|(zhì)素特異性途徑,包括肉桂酰輔酶A還原酶(CCR)、肉桂醇脫氫酶(CAD)、香豆酰莽草酸3'-羥化酶(C3'H)、阿魏酸/松柏醛5-羥化酶(F5H)、咖啡酸/5-羥基松柏醛3/5-O-甲基轉(zhuǎn)移酶(COMT)、咖啡酰輔酶A3-O甲基轉(zhuǎn)移酶(CCoAOMT)和羥基肉桂酰輔酶A:莽草酸羥基肉桂酰轉(zhuǎn)移酶(HCT)和咖啡酰莽草酸酯酶(CSE)。
2" 木質(zhì)素生物合成的調(diào)控網(wǎng)絡(luò)
木質(zhì)素生物合成途徑除了結(jié)構(gòu)基因還包括轉(zhuǎn)錄因子,轉(zhuǎn)錄調(diào)控著結(jié)構(gòu)基因的表達,在木質(zhì)素的生物合成中起著重要作用。MYBs和NACs是參與木質(zhì)素生物合成的2個主要的轉(zhuǎn)錄因子家族,包括3個層次的轉(zhuǎn)錄調(diào)控網(wǎng)絡(luò)(見圖1)。
第一層主開關(guān)轉(zhuǎn)錄因子是NAC家族的VNS(即VND和NST/SND)亞家族,包括VND1~7和NST1~3。VND單獨顯示特定的表達模式和功能。例如,VND1~5在莖的導管中表達,但在束間纖維中不表達。最近,Lin等人發(fā)現(xiàn),在木材形成過程中VND6經(jīng)歷了選擇性剪接,PtrVND6-C1也可被PtrSND1-A2IR抑制,兩者共同作用,相互交叉調(diào)節(jié)VND和SND成員,以維持木質(zhì)部分化和植物發(fā)育的穩(wěn)態(tài)[7]。在擬南芥nst1-1nst3-1雙突變體中,次生木質(zhì)部和束間纖維中SCW(Secondary Cell Wall,SCW)增厚完全被抑制,卻不影響導管細胞[8]。類似于莖中NST1和NST3的功能冗余,NST1和NST2在花藥SCW形成中冗余地起作用[9]。Lee等人通過研究纖維突變體lbd29-1的功能,發(fā)現(xiàn)缺失突變體lbd29-1顯示束間纖維區(qū)域的細胞壁發(fā)育增強,表明LBD29基因在纖維中具有特異性功能;并且發(fā)現(xiàn)LBD29負調(diào)控纖維細胞中NST1、NST2和NST3的表達,從而抑制細胞壁生物合成基因的表達[10]。
木質(zhì)素生物合成調(diào)控網(wǎng)絡(luò)的第二層開關(guān)是MYB家族的MYB46和MYB83,其在SCW增厚的纖維和導管中特異性表達,主要調(diào)控其他參與木質(zhì)素生物合成的MYB基因及木質(zhì)素合成相關(guān)結(jié)構(gòu)基因的表達[11]。MYB46和MYB83直接受SND1及其近同源物(NST1、NST2、VND6和VND7)的調(diào)節(jié)[12]。木質(zhì)素生物合成調(diào)控網(wǎng)絡(luò)第三層的轉(zhuǎn)錄因子受到MYB46/83的調(diào)控,這些TFs大多屬于MYB家族。MYB家族的一些成員在木質(zhì)素的生物合成中發(fā)揮負調(diào)控作用,如MYB4、MYB7和MYB32等[13-14]。
3" NST轉(zhuǎn)錄因子對木質(zhì)素生物合成的調(diào)控
NST轉(zhuǎn)錄因子隸屬于NAC家族,是最早被鑒定的參與植物次生細胞壁合成的NAC家族轉(zhuǎn)錄因子。2005年Mitsuda等人在對擬南芥NAC轉(zhuǎn)錄因子進行研究時發(fā)現(xiàn),當利用嵌合抑制因子沉默技術(shù)將其中一個NAC轉(zhuǎn)錄因子轉(zhuǎn)變?yōu)轱@性抑制因子并在擬南芥中進行過表達時,會導致擬南芥花藥不能正常開裂;進一步分析發(fā)現(xiàn),轉(zhuǎn)基因植株花藥不能正常開裂是由于藥室內(nèi)壁SCW缺失造成的,說明該基因可以調(diào)控藥室內(nèi)壁SCW的生物合成,因此將該基因命名為NST1(NAC secondary wall thickening promoting factor 1) [9]。NST2是NST1的同源基因,過表達NST2的顯性抑制形式同樣會導致轉(zhuǎn)基因擬南芥花藥不能正常開裂,表明NST2也參與調(diào)控藥室內(nèi)壁SCW的生物合成[9]。在NAC家族中,NST1(ANAC043)、NST2(ANAC066)和NST3/SND1(ANAC012)在植物SCW生物合成的調(diào)控網(wǎng)絡(luò)中起開關(guān)作用[9]。
3.1" NST1和NST2轉(zhuǎn)錄因子對木質(zhì)素生物合成的調(diào)控
在擬南芥中NST1和NST2促進花粉囊內(nèi)層細胞SCW的合成,nst1nst2雙T-DNA標記的品系花藥內(nèi)皮層缺乏SCW且花藥不正常開裂[9]。在其他植物中也驗證了NST1和NST2的功能跟花藥及SCW相關(guān)。例如在蒺藜苜蓿中,MtNST1編碼AtNST1/2/3的同源物,且是花粉囊開裂所需的[15]。在野生大豆中,GsNST1A/B是AtNST1/2的同源物,并作為SCW生物合成的激活劑發(fā)揮作用。GsNST1A/B的過表達通過誘導擬南芥正常薄壁細胞中大量SCW的異位沉積而破壞整個植物發(fā)育[16]。在野草莓中,F(xiàn)vNST1b與AtNST1同源,野生型擬南芥中FvNST1b的過表達誘導各種組織中SCW的異位增厚,并上調(diào)與SCW合成相關(guān)基因的表達[17]。蠟菊中的HbNST1、HbNST1A與AtNST1、AtNST3(SND1)同源,HbNST1過表達促進SCW中木質(zhì)素的積累,表明HbNST1與SCW生物合成和木質(zhì)化有關(guān)[18]。Lyu等人對裸籽南瓜進行研究時發(fā)現(xiàn),在CpNST1基因中插入14 bp序列會導致CpNST1翻譯提前終止,導致無殼種皮中SCW生物合成的缺乏[19]。南瓜轉(zhuǎn)錄組測序分析表明,CmNST1是種皮發(fā)育過程中木質(zhì)素生物合成途徑的主要調(diào)節(jié)因子[20]。在浙江紅山茶中,CcNST1在木質(zhì)化的種皮和內(nèi)果皮組織中高表達,對轉(zhuǎn)基因表達品系進行分析發(fā)現(xiàn),CcNST1在調(diào)節(jié)果實木質(zhì)化的木質(zhì)素生物合成中起著關(guān)鍵作用[21]。在水稻中報道了ONAC066(NST2)在干旱和氧化脅迫下的功能,過表達ONAC066基因可提高轉(zhuǎn)基因水稻對干旱和氧化脅迫的耐受性,增強ABA的敏感性,上調(diào)干旱脅迫下相關(guān)基因的表達。相比之下,RNAi抑制ONAC066基因表達后,干旱脅迫下相關(guān)基因表達下調(diào),干旱和氧化脅迫耐性減弱,ABA敏感性降低[22]。NST1基因和NST2基因與植物SCW的增厚相關(guān),在植物抗逆中起重要作用。
Zhang等發(fā)現(xiàn),NST1的活性由NAC結(jié)構(gòu)域轉(zhuǎn)錄因子XND1來調(diào)節(jié),在擬南芥中NST1調(diào)控SCW形成的活性受到XND1的調(diào)節(jié)[23]。在花藥發(fā)育過程中,MYB26在決定細胞發(fā)育或SCW加厚能力中起調(diào)節(jié)作用,并且可能通過NST1和NST2在木質(zhì)素生物合成途徑的上游起作用[6]。WRKY12作為負調(diào)節(jié)因子,可以直接結(jié)合NST2啟動子以抑制其表達,從而抑制髓細胞中的SCW增厚[24]。
3.2" NST3轉(zhuǎn)錄因子對木質(zhì)素生物合成的調(diào)控
NST3/SND1最早在擬南芥中被鑒定為SCW相關(guān)合成基因,功能與NST1冗余,在纖維細胞中特異表達[25]。在擬南芥nst1nst3雙突變體中,植株束間纖維細胞SCW缺失,不能直立生長;突變體中纖維素和木質(zhì)素含量顯著下降[26]。在蒺藜苜蓿中,NST3功能的缺失會使F5H及木質(zhì)素合成相關(guān)基因的表達量減少,導致S型木質(zhì)素大量減少,從而使維管束間的纖維無法木質(zhì)化,導致花藥開裂失敗[15]。進一步研究發(fā)現(xiàn),擬南芥NST3可以與蒺藜狀苜蓿的F5H基因的啟動子區(qū)結(jié)合,并激活其表達[15]。水稻次生壁NAC結(jié)構(gòu)域蛋白1(OsSWN1),是擬南芥NST3/SND1的直系同源物,調(diào)節(jié)水稻中的SCW形成[27]。在擬南芥中,OsSWN1過表達能誘導SND1調(diào)節(jié)的下游轉(zhuǎn)錄因子和SCW生物合成基因的表達,并伴隨著SCW的異位沉積[27]。當OsSWN1在nstlnst3雙突變體中異源表達時,可恢復莖表型和花序纖維細胞的SCW形成,表明OsSWN1在功能上等同于擬南芥NST3/SND1[27]。山楂中的SND1與AtSND1同源,過表達該基因會導致植株生長受阻、葉片向上卷曲、萼片發(fā)育異常及不育等表型,并顯著上調(diào)其下游MYB基因及木質(zhì)素、纖維素和木聚糖合成相關(guān)基因的表達[28]。冉書瑤等對甘藍型油菜中的BnaA9.NST3進行研究,發(fā)現(xiàn)其調(diào)控木質(zhì)部發(fā)育和開花時間。過表達BnaA9.NST3使油菜木質(zhì)部發(fā)育增厚,同時伴隨早花現(xiàn)象[29]。Jeong等人研究發(fā)現(xiàn),SND1在擬南芥中具有雙重作用,即SND1能激活MYB46途徑,促進木質(zhì)素生物合成,同時SND1能維持低ABA濃度抑制植株生長,SND1的雙重功能有效調(diào)節(jié)植物的生長發(fā)育[30]。
木質(zhì)素與植物的適應性、抗病性、抗倒伏等能力有關(guān)。廖芳等人對甘藍型油菜中NST3基因進行基因編輯及超表達載體構(gòu)建得到抗倒伏能力強,且高抗菌核病的甘藍型油菜[31]。BpNAC012(NST3)轉(zhuǎn)基因白樺的鹽和滲透脅迫耐受性增強,并且鹽和滲透脅迫能引起木質(zhì)素生物合成基因的表達水平更高及BpNAC012過表達株系中木質(zhì)素積累更多[32]。蘋果中確定了MdSND1與擬南芥AtSND1具有功能相似性,均能促進次生細胞壁的形成,促進SCW中木質(zhì)素的積累,并且過表達MdSND1可以提高蘋果對滲透脅迫和鹽脅迫的耐受性[33]。
4" 展望
NST是一類在植物中廣泛存在的轉(zhuǎn)錄因子,參與調(diào)控植物的生長發(fā)育和次生壁的生物合成等過程。目前,NST轉(zhuǎn)錄因子對木質(zhì)素生物合成的調(diào)控機制研究仍存在一些問題亟需解決。1)盡管有關(guān)NST轉(zhuǎn)錄因子的結(jié)構(gòu)與功能研究已有一些進展,但主要以模式植物為對象,如擬南芥、苜蓿、水稻及楊樹等,其在不同植物中的功能有所差異,目前NST轉(zhuǎn)錄因子在其他物種的功能尚不清楚,需要進一步研究。2)NST轉(zhuǎn)錄因子的調(diào)控網(wǎng)絡(luò)尚不明晰,其上游調(diào)控因子及下游靶標基因有待驗證。3)植物激素及受體激酶等多重因素影響著NST轉(zhuǎn)錄因子對木質(zhì)素生物合成的調(diào)控,并且是否存在其他信號影響其調(diào)控,具體的作用機制需要未來進行深入探討。4)NST轉(zhuǎn)錄因子與植物抗性息息相關(guān),之后的研究可以聚焦在NST在植物抗性中的具體調(diào)控機制,不僅可以為植物應對環(huán)境脅迫提供分子層面的見解,還有利于人們理解植物對環(huán)境的適應性。
研究NST轉(zhuǎn)錄因子的功能,可以明確其對植物生長發(fā)育的影響,揭示其對木質(zhì)素代謝的調(diào)控機制,為培育新品種提供理論依據(jù)。以NST轉(zhuǎn)錄因子為靶點,利用基因工程和遺傳改良等技術(shù)提高植物抗性,將其應用于作物及易倒型作物,進而使植物適應氣候變化引起的干旱、高溫等脅迫。因此,對NST轉(zhuǎn)錄因子的深入研究具有重要的理論與實踐價值。
參考文獻:
[1] RENSING S A. Great moments in evolution: the conquest of land by plants[J]. Current opinion in plant biology, 2018, 42: 49-54.
[2] LI M, PU Y, RAGAUSKAS A J. Current Understanding of the Correlation of Lignin Structure with Biomass Recalcitrance[J]. Front Chem, 2016, 4: 45.
[3] ZHONG R, YE Z H. Complexity of the transcriptional network controlling secondary wall biosynthesis[J]. Plant science, 2014, 229: 193-207.
[4] DIXON R A, BARROS J. Lignin biosynthesis: old roads revisited and new roads explored[J]. Open Biol, 2019, 9(12): 190215.
[5] 李元玉, 陳萬生, 肖瑩. 植物咖啡酸-O-甲基轉(zhuǎn)移酶COMT的研究進展[J/OL]. 生物工程學報, 2022,38(6): 2187-2200.
[6] ZHANG J, TUSKAN G A, TSCHAPLINSKI T J, et al. Transcriptional and post-transcriptional regulation of lignin biosynthesis pathway genes in Populus[J]. Frontiers in Plant Science, 2020, 11: 534575.
[7] LIN Y C, LI W, SUN Y H, et al. SND1 transcription factor-directed quantitative functional hierarchical genetic regulatory network in wood formation in Populus trichocarpa[J]. The Plant Cell, 2013, 25(11): 4324-4341.
[8] MITSUDA N, OHME T M. NAC transcription factors NST1 and NST3 regulate pod shattering in a partially redundant manner by promoting secondary wall formation after the establishment of tissue identity[J]. The Plant Journal, 2008, 56: 768-778.
[9] MITSUDA N, SEKI M, SHINOZAKI K, et al. The NAC transcription factors NST1 and NST2 of Arabidopsis regulate secondary wall thickenings and are required for anther dehiscence[J]. The plant cell, 2005, 17(11): 2993-3006.
[10] LEE K H, DU Q, ZHUO C, et al. LBD29-involved auxin signaling represses NAC master regulators and fiber wall biosynthesis[J]. Plant physiology, 2019, 181(2): 595-608.
[11] 黃成, 李來庚. 植物次生細胞壁加厚調(diào)控研究進展[J]. 植物生理學報, 2016, 52(1): 8-18.
[12] ZHONG R, RICHARDSON E A, YE Z H. Two NAC domain transcription factors, SND1 and NST1, function redundantly in regulation of secondary wall synthesis in fibers of Arabidopsis[J]. Planta, 2007, 225: 1603-1611.
[13] XIAO S, HU Q, SHEN J, et al. GhMYB4 downregulates lignin biosynthesis and enhances cotton resistance to Verticillium dahliae[J]. Plant Cell Reports, 2021, 40(4): 735-751.
[14] XU Q, YIN X R, ZENG J K, et al. Activator- and repressor-type MYB transcription factors are involved in chilling injury induced flesh lignification in loquat via their interactions with the phenylpropanoid pathway[J]. J Exp Bot, 2014, 65(15): 4349-4359.
[15] ZHAO Q, WANG H Z, YIN Y B. Syringyl lignin biosynthesis is directly regulated by a secondary cell wall master switch[J]. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America, 2010, 107(32): 14496-14501.
[16] DONG Y, WANG B H, WANG Y Z. Functional characterization of the orthologs of AtNST1/2 in Glycine soja(Fabaceae) and the evolutionary implications[J]. Journal of Systematics and Evolution, 2013, 51(6): 693-703.
[17] DANG X, ZHANG B, LI C, et al. FvNST1b NAC protein induces secondary cell wall formation in strawberry[J]. International Journal of Molecular Sciences, 2022, 23(21): 13212.
[18] AIWAILI P, DENG Y J, LIU W W , et al. HbNST1 is a positive regulator of the lignin accumulation in strawflower bracts[J]. Horticultural Plant Journal, 2023, 9(5):1013-1023.
[19] LYU X L , SHI L , ZHAO M , et al. A natural mutation of the NST1 gene arrests secondary cell wall biosynthesis in the seed coat of a hull-less pumpkin accession[J]. Horticulture Research, 2022, 9:136.
[20] SHEN Q, WENG Y. Alternative splicing of NAC transcription factor gene CmNST1 is associated with naked seed mutation in Pumpkin, Cucurbita moschata[J]. Genes, 2023, 14(5): 962-973.
[21] YAN C, NIE Z, HU Z, et al. Tissue-specific transcriptomics reveals a central role of CcNST1 in regulating the fruit lignification pattern in Camellia chekiangoleosa, a woody oil-crop[J]. Forestry Research, 2022, 2(1):256-267.
[22] YUAN X, WANG H, CAI J, et al. Rice NAC transcription factor ONAC066 functions as a positive regulator of drought and oxidative stress response[J]. BMC plant biology, 2019, 19: 1-19.
[23] ZHANG Q, LUO F, ZHONG Y, et al. Modulation of NAC transcription factor NST1 activity by XYLEM NAC DOMAIN1 regulates secondary cell wall formation in Arabidopsis[J]. Journal of Experimental Botany, 2020, 71(4):1449-1458.
[24] WANG H, AVCI U, NAKASHIMA J, et al. Mutation of WRKY transcription factors initiates pith secondary wall formation and increases stem biomass in dicotyledonous plants[J]. Proceedings of the National Academy of Sciences, 2010, 107(51): 22338-22343.
[25] ZHONG R, LEE C, YE Z H. Evolutionary conservation of the transcriptional network regulating secondary cell wall biosynthesis[J]. Trends in plant science, 2010, 15(11): 625-632.
[26] MITSUDA N, IEASE A, YAMAMOTO H, et al. NAC transcription factors, NST1 and NST3, are key regulators of the formation of secondary walls in woody tissues of Arabidopsis[J]. Plant Cell, 2007, 19:270-280.
[27] CHAI M, BELLIZZI M, WAN C, et al. The NAC transcription factor OsSWN1 regulates secondary cell wall development in Oryza sativa[J]. Journal of plant biology, 2015, 58(1): 44-51.
[28] CHEN K, GUO Y, SONG M, et al. Isolation and characterization of the secondary wall-related SND1 gene in hawthorn[J]. Journal of integrative agriculture, 2018, 17(9): 2007-201.
[29] 冉書瑤.甘藍型油菜BnaA9.NST3調(diào)控木質(zhì)部發(fā)育及開花的功能研究[D]. 重慶:西南大學, 2022.
[30] JEONG C Y, LEE W J, TRUONG H A, et al. Dual role of SND1 facilitates efficient communication between abiotic stress signalling and normal growth in Arabidopsis[J]. Scientific reports,2018,8(1): 10114.
[31] 廖芳. 甘藍型油菜轉(zhuǎn)錄因子NST3基因編輯和超表達載體構(gòu)建[D]. 重慶:西南大學, 2017.
[32] HU P, ZHANG K, YANG C. BpNAC012 positively regulates abiotic stress responses and secondary wall biosynthesis[J]. Plant Physiology, 2019, 179(2): 700-717.
[33] 陳可欽. 蘋果SND1與MYB46轉(zhuǎn)錄因子的功能及作用機制[D]. 沈陽:沈陽農(nóng)業(yè)大學, 2019.
(責任編輯:敬廷桃)
作者簡介:楊夢情(2000—),在讀碩士,研究方向為植物資源與應用,主要從事木質(zhì)素相關(guān)轉(zhuǎn)錄因子研究。E-mail:yangmq@swfu.edu.cn。