張城,鄭建峰,李孝輝
(1.杭州正興牧業有限公司,浙江 杭州 311301; 2.浙江省農業科學院 植物保護與微生物研究所,浙江 杭州 310021)
仔豬斷奶后生產效率下降、腹瀉率高等問題嚴重影響生豬生產效益,飼用高劑量抗生素及氧化鋅能提高仔豬生產性能,降低腹瀉率,但是長期使用會造成耐藥性及環境污染等負面影響,“無抗、低鋅”飼糧是畜牧業發展的趨勢。益生菌是一種可通過改變宿主腸道菌群而對動物施加有利影響的活性微生物[1],可改善宿主腸道功能,提高免疫[2-3]。酵母是益生菌的一種,被我國農業部批準為允許在飼料中添加的益生菌。大量研究表明,活性酵母能促進動物生產、提高胃腸道消化率、改善腸道菌群、增強機體免疫功能、提高抗應激能力等,具有廣闊的研究和發展前景[4-5]。本試驗旨在研究飼糧中添加活性酵母對斷奶仔豬生產性能,血液免疫、抗氧化力、炎癥等指標的影響,為其在斷奶仔豬飼糧中的應用提供依據。
活性酵母由浙江省農業科學院植物保護與微生物研究所提供的釀酒酵母,菌數為2×109個·g-1。斷奶仔豬由杭州正興牧業有限公司提供。
血清中免疫球蛋白A(immunoglobulin A,IgA)、免疫球蛋白G(immunoglobulin G,IgG)、免疫球蛋白M(immunoglobulin M,IgM)、炎癥因子白介素6(interleukin 6,IL-6)、白介素1β(interleukin 11β,IL-1β)、腫瘤壞死因子-α(tumor necrosis factorα,TNF-α)ELISA試劑盒購自北京華英生物技術有限公司;過氧化氫酶(catalase, CAT)、總抗氧化力(total antioxidant capacity,T-AOC)、二胺氧化酶(diamine oxidase,DAO)、內毒素(lipopolysaccharide,LPS)試劑盒購自南京建成生物科技有限公司。
選取48頭健康狀況良好的體質量(7.42±0.85)kg仔豬(公母各半),同一性別的仔豬按體質量排序,從大到小分成4個區組,每個區組2欄共12頭仔豬(公母各半)。每個區組內的2個欄將隨機分配到對照組和酵母組中。對照組飼喂基礎飼糧,酵母組在基礎飼糧中添加0.3%活性酵母,試驗期28 d。參考NRC(2012)7~11、11~25 kg仔豬營養需要配置基礎飼糧,其組成及營養水平見表1,按試驗設計要求配制試驗飼糧。

表1 基礎飼糧組成及營養水平(風干基礎)
注:1)預混料為每1 kg飼糧提供Cu 25 mg(以硫酸銅形式),Zn 100 mg(以硫酸鋅形式),ZnO 1 600 mg·kg-1(以氧化鋅形式),Fe 100 mg(以硫酸亞鐵形式),Mn 30 mg(以硫酸錳形式),Se 0.3 mg(以亞硒酸鈉形式),10.4 mg(以碘酸鈣形式),VA7 500 IU,VD3750 IU,VE 25 IU,VK32.0mg,VB11.875mg,VB23.75 mg,VB62.19 mg,VB12,0.025 mg,煙酸25 mg,泛酸15.6 mg,葉酸2.0 mg,生物素0.1 875 mg,金霉素75 mg,吉他霉素20 mg。營養水平含量為計算值。
試驗仔豬以重復為單位進行圈養,采用群飼,自由采食和飲水。免疫消毒程序按豬場常規方法進行。試驗期觀察和記錄豬只健康狀況,發現死淘豬只后及時進行結料并稱重。
1.4.1 生長性能測定
以重復為單位記錄耗料量。分別于試驗第0、14、28天仔豬空腹稱重,統計階段耗料量及總耗料量。以重復為單位分別計算1~14 d、15~28 d及全期(1~28 d)平均日增重、平均日采食量(ADFI)及料重比(F/G)。
1.4.2 腹瀉率測定
試驗開始后,每天早晚2次記錄試驗豬腹瀉頻數,每欄全期頻次數與每欄總頭次數之比即為該欄仔豬腹瀉率。
1.4.3 血清生化指標測定
試驗第28天稱重后,每重復隨機選擇2頭仔豬(公母各1頭)前腔靜脈采血。靜置血樣至析出血清,3 000 r·min-1離心10 min,分裝上清于Eppendorf管中,-20 ℃冰箱中保存,待測。ELISA法測定血清中IgA、IgG、IgM含量。鉬酸銨法、FRAP法、硫代巴比妥酸法分別測定血清中CAT、T-AOC、MDA含量。紫外比色法、鱟試劑法、酶比色法分別測定血清中DAO、LPS、MPO含量。ELISA法測定血清中炎癥因子IL-6、IL-1β、TNF-α含量。
試驗數據用Excel 2007進行初步處理,用SPSS 17.0軟件進行差異顯著性檢驗。其中生長性能指標采用以處理為固定因子、區組為隨機因子進行一般線性模型分析,血液生化指標進行LSD單因素分析。
試驗全期仔豬均較為活躍,精神狀態良好,采食及飲水情況均正常。生產性能指標如表2所示,與對照組相比,試驗1~14 d、1~28 d,飼喂酵母能顯著提高仔豬體質量、平均日增重(ADG)、平均日采食量,14~28 d平均日采食量顯著提高。對照組和酵母組對仔豬料重比及腹瀉率的影響未見顯著差異。

表2 活性酵母對仔豬生產性能及腹瀉率的影響
注:同行數據中肩標字母表示差異顯著(P<0.05),相同字母或無字母表示差異不顯著(P>0.05)。表3~4同。
如表3所示,在免疫指標方面,飼喂活性酵母較對照組顯著提高了血清IgA含量,但是IgM、IgG含量各組間差異不顯著。抗氧化指標上,與對照組相比,飼喂活性酵母能顯著提高血清總抗氧化力,顯著降低血清MDA含量,血清中過氧化氫酶活性雖未見顯著差異,但有增加趨勢,增幅達27.8%(P=0.11)。
如表4所示,與對照組相比,飼喂活性酵母能顯著降低血清MPO活性,但DAO及LPS含量未見顯著差異。在炎癥相關指標上,飼喂活性酵母較對照組顯著降低了血清IL-1β含量,TNF-α含量也有降低趨勢(P=0.054),降幅為12.5%,但活性酵母對IL-6含量未見顯著影響。

表3 活性酵母對仔豬血清免疫、抗氧化指標的影響

表4 活性酵母對仔豬血清粘膜屏障及炎癥相關指標的影響
仔豬斷奶后幾周的生產性能對其全期生產表現有著至關重要的作用,活性酵母能夠在宿主腸道內調節腸道菌群,其自身的酵母細胞壁、甘露寡糖等物質還能吸附毒素,激活免疫,降低炎癥,對宿主生長起到積極作用[6-8]。羅世乾[9]研究表明,添加釀酒酵母或布拉迪酵母均能顯著提高仔豬末重、ADG、ADFI。陳生龍等[10]也發現,飼喂中等劑量(1×107、2×107g-1)酵母能顯著提高仔豬ADG和ADFI,但低劑量(0.5×107g-1)或高劑量(4×107g-1)酵母對生產性能的影響并不顯著。在新生仔豬中也發現,飼喂活酵母直至斷奶后,仔豬體質量、ADFI及ADG較對照組均顯著提高[11]。本試驗條件下,飼喂活性干酵母后仔豬ADG、ADFI均顯著提高,與之前研究結果一致,但F/G無顯著差異,這提示本試驗中酵母是通過提高仔豬采食量來達到促生長作用,對飼料利用率影響并不明顯,與陳生龍等[10]、劉化偉等[12]的研究結果一致。
活性酵母被認為可以吸附腸道毒素,減少有害菌吸附,對降低腹瀉率具有較好的效果[13-14]。本研究中對照組和酵母組腹瀉率均處于較低水平,未見顯著差異,這可能是因為試驗實施階段為6~7月份,氣溫在30 ℃左右且未出現明顯波動,較適宜仔豬生長,所以所有仔豬腹瀉率均未見差異。
IgA、IgG、IgM是動物機體重要的免疫球蛋白。IgM多見于免疫初期,持續時間較短;IgA為局部免疫主要抗體,主要由漿細胞分泌;IgG為體液免疫主要抗體。羅士乾[9]研究表明,酵母能顯著提高了IgM的含量,但對IgA、IgG無顯著影響。Trckova等[5]對仔豬進行大腸桿菌攻毒后,飼喂活性酵母(5×107g-1)能顯著提高IgA含量。本研究中,飼喂酵母后血清IgA含量顯著增加,與之前研究一致,但IgM和IgG未見顯著差異,不同結果中的略微差異可能是由仔豬生理階段及所處的免疫階段不同造成的。
MDA間接反映機體細胞受自由基攻擊的嚴重程度,過氧化氫酶和總抗氧化能力則是機體內重要的抗氧化酶,參與自由基的清除。本研究中飼喂酵母顯著降低了血清MDA含量,增加了血清總抗氧化能力,結果表明酵母具有一定的抗氧化功效。肖旭等[15]研究也發現的活性干酵母能顯著提高仔豬血清中SOD含量,降低MDA含量,與本研究基本一致。
仔豬斷奶應激常會引起腸道功能紊亂,粘膜屏障破壞,炎癥加劇。MPO是中性粒細胞的功能標志和激活標志,常被作為監測腸道炎癥及粘膜完整性的生物標記物。TNF-α及IL-1β是炎癥反應過程中重要的炎性介質,其濃度升高提示體內炎癥的增加。徐琴[16]研究表明,在致病性大腸桿菌攻毒仔豬中發現灌服100 mL活性酵母(1×109g-1)能顯著降低IL-6及豬MAP濃度,先天免疫Toll樣受體信號通路的關鍵基因表達顯著降低。在正常仔豬中,也發現類似結果,仔豬血清中抑炎因子IL-4、IL-10隨著酵母添加量的增加出現增長趨勢[10]。本試驗中,飼喂0.3%酵母顯著降低了MPO及IL-1β含量,TNF-α也有降低趨勢,這提示雖然仔豬生活環境溫度較高,腹瀉未大量出現,但斷奶后仍因為飼糧等因素仔豬腸道造成應激損傷,而0.3%添加量的酵母能降低仔豬體內炎癥,提高粘膜功能。
綜上所述,在斷奶仔豬日糧中添加0.3%活性酵母能通過提高采食量來促進仔豬生長,提高仔豬免疫功能及抗氧化力,降低體內炎癥,在斷奶仔豬飼糧中有良好的應用前景。