水菖蒲內生菌分離與抗菌活性菌株篩選

周曉坤，陳 鈞,*，韓邦興,2，何 佳，劉長風

(1.江蘇大學藥學院，江蘇 鎮江 212013；2.植物細胞工程安徽省工程技術研究中心，安徽 六安 237012)

水菖蒲內生菌分離與抗菌活性菌株篩選

周曉坤1，陳 鈞1,*，韓邦興1,2，何 佳1，劉長風1

(1.江蘇大學藥學院，江蘇 鎮江 212013；2.植物細胞工程安徽省工程技術研究中心，安徽 六安 237012)

對水菖蒲內生真菌進行分離，并進行抗菌活性的篩選。采用改良氯化三苯四氮唑顯色(TTC)微量稀釋法篩選抗菌活性菌株。以18種常見導致食品腐敗的細菌、酵母菌和霉菌為指示菌研究活性菌株的抗菌能力。結果顯示，水菖蒲內存在廣泛的具有抗菌活性的內生菌，占內生菌總數的40.7%，高活性菌株占內生菌總數的12.39%。其中S9菌株發酵液具有抗細菌、酵母菌和絲狀真菌的廣譜抗菌能力，是潛在的食品防腐抗菌資源。

水菖蒲；內生菌；抗菌活性

植物內生菌是指那些在其生活史的一定階段或全部階段生活在健康植物組織或器官內部的并不引起宿主植物出現明顯病害癥狀的真菌[1-2]。由于內生菌與宿主植物協同進化，可以產生和宿主相同或相似的生理活性成分[3-4]，因此，從傳統藥用植物及一些特殊環境植物內生菌中篩選活性菌株，已成為微生物領域的研究熱點[5-6]。

水菖蒲(Acorus calamus L.)為天南星科植物，藥用根莖，具有化痰開竅、殺蟲止癢之功效[7]。現代研究表明水菖蒲具有抗炎、抑菌殺蟲、抗糖尿病等多種藥理活性[8-9]。目前，關于水菖蒲的研究多集中于化學成分和藥理作用等方面[8-10]，尚未見對水菖蒲內生菌分離及其代謝產物活性方面的報道。本實驗對水菖蒲內生菌進行分離純化，并對其抗菌活性菌株進行篩選，以為水菖蒲內生菌資源的開發利用提供參考。

1 材料與方法

1.1 材料

在鎮江江蘇大學內采摘無可見病斑的健康水菖蒲根莖和葉，原植物由江蘇大學藥學院韓邦興博士鑒定，確認為水菖蒲(Acorus calamus L.)。

1.2 指示菌

常見食品腐敗菌：銅綠假單胞菌(Pseudomonas aeruginos，P.a)ATCC27853、大腸桿菌 (Escherichia coli，E.c)、金黃色葡萄球菌(Staphyloccus au reus，S.a)、枯草芽孢桿菌 (Bacillus su btilis，B.s)、普通變形桿菌 (Proteus vulgar is，P.v)、產氣桿菌(Bacillus aerogenes，B.a)、納豆芽孢桿菌Bacillus natto，B.n)蠟狀芽孢桿菌 (Bacillus cereu s，B.c)、熱帶假絲酵母(Candida tropicalis，C.t)、釀酒酵母 (Saccharomyces cerevisiae，S.c)、黑曲霉(Aspergillus niger，A.n)、康

寧木霉(Trichoderma koningii，T.k)11種指示菌均由江蘇大學藥學院制藥工程系保存。

常見農業病原菌：水稻紋枯病菌 (C o r t i c i u m sasakii，C.s)AS3.2872、亞麻刺盤孢(Colletotrichum lini，C.l)AS3.4486、禾谷鐮孢 (Fusarium graminearum，F.g)AS3.4598由中國科學院微生物研究所提供；棉灰星盤多毛孢菌Pestalotia gossypii Hori，P.g)由江蘇農業科學院植物保護研究所提供。

常見人體病原真菌：新型隱球菌(Cryptococcus neoformans，C.n)、白色念珠菌(Candida albicans，C.a)由江蘇大學醫學技術學院提供。

1.3 培養基

分離培養基：馬鈴薯葡萄糖液體培養基配方為：馬鈴薯2g/100mL、葡萄糖0.2g/100mL，其中加入0.15g/100mL瓊脂為固體培養基(PDA)；加入150μg/mL青霉素鉀和120μg/mL硫酸鏈霉素為雙抗培養基；真菌培養基、沙堡氏培養基 南京博爾迪生物科技有限公司。

1.4 試劑

二甲基亞砜(DMSO)、吐溫-80、次氯酸鈉溶液(活性氯含量5.2%) 國藥集團化學試劑有限公司；兩性霉素B(AmB) Sunshine公司；青霉素鉀、硫酸鏈霉素、硫酸阿米卡星(Ak) 華北制藥有限公司；氯化三苯四氮唑(TTC) 上海試劑三廠。

1.5 儀器與設備

TS100倒置顯微鏡 Nikon公司；SPX-250B生化培養箱 上海躍進醫療器械廠；QYC-211全控溫搖床 上海福瑪試驗設備有限公司；SW-CJ-2FD超凈工作臺 江蘇蘇凈集團有限公司；U410-86超低溫冷凍冰箱 New Brunswick Scientific公司；96孔微量板 Corning公司。

1.6 方法

1.6.1 內生菌的分離純化

水菖蒲洗凈晾干后，摘下葉和根莖。在超凈工作臺上進行以下操作：75%乙醇浸泡根莖、葉120s后，用不同濃度次氯酸鈉溶液浸泡2～600s，無菌水漂洗4次。去根莖兩頭褐變部分，并剪成0.5cm小段，將葉剪成0.5cm×0.5cm小片。上述材料植入馬鈴薯葡萄糖雙抗固體培養基、10%馬鈴薯葡萄糖雙抗培養基平板中，每皿4～5片(段)，22～28℃倒置培養。待根莖、葉培養基切面處長出菌絲后，挑取其尖端部分移至PDA平板上，28℃培養，反復純化得水菖蒲內生真菌純培養物，根據形態學特征去除相同菌株。各菌株編號后于4℃冰箱保藏備用。設置環境對照、組織印跡對照和漂洗對照確保各環節無菌操作。

1.6.2 分類鑒定

根據內生真菌主要的群體形態特點和個體形態特點,參考文獻[11]進行分類鑒定。

1.6.3 內生真菌發酵液的制備

于250mL三角瓶中加入50mL馬鈴薯葡萄糖液體培養基，滅菌，接入內生菌，28℃、120r/min振蕩培養7d。將內生菌發酵液在－70℃和20℃條件下反復凍融3次，以釋放胞內產物，濾去菌絲體，濾液過細菌過濾器得供試藥液。

1.6.4 指示菌菌懸液制備

各細菌在牛肉膏蛋白胨培養基中增菌至108CFU/mL后，用牛肉膏蛋白胨培養基稀釋至含菌量為106CFU/mL。

用沙堡氏斜面培養基活化酵母樣真菌，以液體培養基稀釋至菌含量為104CFU/mL。

絲狀真菌在PDA斜面上28℃培養7～10d，產生孢子。加入含有0.1%吐溫-80的沙堡氏液體培養基制備懸液，懸液靜置3～5min，取上層均質液體(含孢子以及菌絲片段)至無菌試管，振蕩5s，鏡檢，用沙堡氏液體培養基調整菌懸液至104CFU/mL。

1.6.5 抗菌活性菌株的篩選

參考NCCLSM38-A和M27實驗方案[12-14]，采用微量稀釋法，以金黃色葡萄球菌為革蘭氏陽性菌初篩指示菌、大腸桿菌為革蘭氏陰性菌初篩指示菌，對內生菌進行抗細菌活性初篩。

1.6.6 高活性菌株的抗菌活性研究

參考NCCLSM38-A和M27實驗方案[12-14]，采用微量稀釋法，測定內生菌S9、S15、S24、S70菌株最小抑菌濃度(MIC)、最小殺菌濃度(MBC)。以硫酸阿米卡星為抗細菌實驗陽性對照或加入兩性霉素B為抗真菌實驗陽性對照，以無菌水為陰性對照。

2 結果與分析

2.1 水菖蒲內生真菌分離結果

表1 水菖蒲內生真菌的種群、數量與種類分布Table 1 Genera, quantity and compositions of endophytes isolated fromAcorus calamusL.

根據菌落培養特征，先后8次共從水菖蒲根莖和葉中分離出內生菌113株，經微生物形態觀察，初步鑒定為2綱4目5科15屬(表1)，種類繁多，其中以從梗科居多，為48株，占所有菌株的42.5%。根莖、葉中均有分布，葉中的內生菌數量明顯少于根莖中。

2.2 抑菌活性菌株初篩選

經反復篩選，從113株內生菌中篩選出了46株對大腸桿菌或金黃色葡萄球菌有抗菌活性的菌株，占所有菌株的40.7%。其中42株對金黃色葡萄球菌有抗菌能力，占所有菌株的37.2%；30株對大腸桿菌有抗菌活性，占所有菌株的26.5%；26株對金黃色葡萄球菌和大腸桿菌都有抑菌活性，占所有菌株的23.0%。有14株表現出了較強的抑菌效果，在發酵液體積分數為25%時，對金黃色葡萄球菌和大腸桿菌有明顯的抑制效果。其中S9、S15、S24、S70抑菌效果最強(表2)，故對以上4株菌抗菌能力進一步研究。

表2 46株對細菌有抗菌活性的水菖蒲內生真菌及抗菌活性Table 2 Antibacterial activities of 46 active endophytic strains

2.3 S9、S15、S24、S70 抑菌活性菌株的能力研究

2.3.1 抑制細菌活性菌株的能力

表3、4表明，S9、S15、S24、S70都具有不同程度的廣譜抑菌、殺菌能力。其中，S 9抑菌、殺菌能力較強，對大腸桿菌和納豆芽孢桿菌的MIC僅為發酵原液的0.75%，對其余6種指示菌的MIC也僅為發酵原液的1.5%。S15、S24、S70的MIC(除部分未測出外)在12.5%發酵原液到25%發酵原液之間。S9的MBC也普遍較低，在發酵原液的1.5%～6.2%之間，對大腸桿菌和納豆芽孢桿菌的殺菌作用尤為突出，僅為1.5%發酵原液。其他3株菌的殺菌濃度在25%～50%發酵原液之間，部分未測出，對納豆芽孢桿菌都無殺菌作用。綜合以上實驗結果，S9具有很好的抑菌、殺菌能力，效果明顯優于S15、S24、S70。

表3 抑菌活性菌株對細菌指示菌的MICTable 3 MICs of active endophytic strains

表4 抑菌活性菌株對細菌指示菌的MBCTable 4 MBCs of active endophytic strains

2.3.2 抑制酵母樣真菌活性菌株的能力

表 5 抑菌活性菌株對酵母樣真菌指示菌的MICTable 5 MICs of active endophytic strains

如表5所示：S9、S15、S24、S70 4種內生菌對4種酵母樣指示菌有不同程度的抑制作用。其中S9和S15

對4種酵母樣真菌有一定的抑制作用，其中對釀酒酵母的抑制作用明顯，MIC分別為6.2%發酵原液和3.1%發酵原液。S70對除釀酒酵母以外的3株酵母樣指示菌均有抑制作用，對白色念珠菌的抑制作用明顯，M I C為6.2%發酵原液。S24對白色念珠菌的最小抑菌濃度為50%發酵原液，對其余3種酵母樣真菌基本無抑制作用。

2.3.3 抑制絲狀真菌活性菌株的能力

表 6 抑菌活性菌株對絲狀真菌指示菌的MICTable 6 MICs of active endophytic strains to filamentous fungi

如表6所示，S9、S15、S24、S70 4種內生菌對6 種農業病原菌有不同程度的抑制作用。S9除對木霉沒有抑制作用外，對其他5種絲狀真菌有明顯的抑制作用，對水稻紋枯病菌的抑制作用最強，MIC為0.75%發酵原液；S15和S70對3種絲狀真菌有抑制作用，S70對稻瘟霉的抑制作用較強，MIC為6.2%發酵原液；S24對稻瘟霉的最小抑菌濃度為50%發酵原液，對其他真菌無明顯抑制作用。

2.4 S9、S15、S24、S70 的形態學鑒定

圖1 分離菌株的顯微形態(×40)Fig.1 Micro-morphology of S9, S15, S24 and S70 strains (×40)

S9菌落灰綠色，邊緣菌絲白色，菌絲不光滑，分隔，大量分生孢子，分生孢子梗，孢子串生。鑒定為木霉屬(Trichoderma sp.)。

S15菌落具有不規則的放射狀皺紋，絨狀，產生大量的分生孢子，暗褐至黑色，反面呈較暗的黃褐色。分生孢子梗發生于基質；孢梗莖壁平滑；頂囊球形或近球形，分生孢子球形或近球形。鑒定為為曲霉屬(Aspergillus sp.)。

S24菌落白色，菌絲密集，基質白色。顯微特征為分生孢子梗分枝，分生孢子聚生成葡萄穗狀，球形、橢圓形或圓筒形，單細胞，無色，菌核黑色。鑒定為葡萄孢屬(Botrytis sp.)。

S70菌落為白色，菌絲長絨毛狀，可見綠色孢子,菌絲有隔膜，孢子著生在樹枝狀分生孢子梗上。鑒定為青霉屬(Penicillium sp.)。

3 討 論

植物內生菌可以工業化發酵培養，大規模生產有效成分，開發出新的農藥、醫藥和食品防腐劑等。如Strobel研究小組從錫蘭肉桂(Cinnam omumzeylanicum)、心葉船形果木(Eucryphia cordifolia)等植物分離到內生菌Muscodor albus和黏帚霉(Gliocladium sp.)，能夠產生抗菌活性較強的揮發性物質，并成功開發出真菌熏蒸劑[15]。

本實驗選用大腸桿菌和金黃色葡萄球菌作為初篩指示菌，分別代表了G＋、G－菌，對分離得到的113株水菖蒲內生菌進行了抗菌活性初篩，選用18種常見導致食品腐敗的細菌、酵母菌和霉菌為指示菌研究活性菌株的抗菌能力。結果表明，有40.7%的菌株對至少一種指示菌有抗菌活性，12.39%的菌株具有較高的抗菌活性，尤其是S9具有明顯的抗細菌、酵母菌和絲狀真菌的廣譜抗菌能力，表明水菖蒲中有豐富的內生菌資源，其代謝產物有潛在的抗菌物質存在。在此基礎上，可以針對性地分離有效活性物質，開發成食品防腐抗菌資源。

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Screening and Inhibitory Activity of Endophytic Fungi from Acorus calamus L.

ZHOU Xiao-kun1，CHEN Jun1,*，HAN Bang-xing1,2，HE Jia1，LIU Chang-feng1
(1.College of Pharmacy, Jiangsu University, Zhenjiang 212013, China；2. Anhui Engineering Technology Research Center of Plant Cell Engineering, Lu’an 237012, China)

In order to isolate and screen endophytic fungi with inhibitory activity from Acorus calamus L., active strains were screened through modified TTC micro-dilution method. MIC (minimum inhibitory concentration) and MBC (minimum bactericidal concentration) were detected using 18 food spoilage strains. Results indicated that 40.7% endophytes exhibited antimicrobial activity and 12.39% endophytes exhibited higher antimicrobial activity. In addition, strain S9 exhibited the broadspectrum antimicrobial activity to bacteria, yeast and mycelia fungi. Active endophytic strains from A. calamus L. are potential resources for food preservation.

Acorus calamus L.；endophytic fungi；antibacterial activity

Q933

A

1002-6630(2010)09-0211-05

2009-07-09

周曉坤(1984—)，女，碩士研究生，主要從事微生物來源活性物質研究。E-mail：zhouxiaokun1984@126.com

*通信作者：陳鈞(1967—)，男，教授，博士，主要從事微生物來源活性物質研究。 E-mail：syxchenjun@126.com