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高脂飲食+STZ誘導的2型糖尿病模型大鼠表征及其證候動態(tài)演變研究*

2011-09-12 02:28:02黃黎明郭淑貞
關(guān)鍵詞:動物模型水平模型

吳 晏,韓 靜,黃黎明,郭淑貞,王 偉

(北京中醫(yī)藥大學,北京 100029)

高脂喂養(yǎng)合并腹腔注射小劑量鏈脲佐菌素(STZ)是目前應(yīng)用較多的2型糖尿病大鼠模型的制備方法。采取2次注射 STZ法,成模率高,死亡率低,且成模穩(wěn)定[1、2]。本研究復制此種動物模型設(shè)計觀察量表,連續(xù)12周全面、動態(tài)觀察動物的表征變化并判定其證候?qū)傩裕耘袛啻朔N動物疾病模型在不同病變階段是否存在不同的表征和證候特點。

1 材料

1.1 動物

健康雄性5周齡 SD大鼠40只,體質(zhì)量120g±10g,由北京維通利華實驗動物中心提供(許可證號為SCXK(京)2006-0001),飼養(yǎng)于北京中醫(yī)藥大學清潔級實驗動物中心,室溫18℃ ~25℃,相對濕度50% ~60%,大鼠適應(yīng)性飼養(yǎng)1周。

1.2 飼料

普通飼料和高脂飼料均由中國醫(yī)學科學院實驗動物研究所加工提供。高脂飼料配方:豬油12%,蛋黃粉10%,蔗糖10%,維持飼料68%。

1.3 試劑

檸檬酸(批號 0602102),檸檬酸鈉(批號20070403),購自北京化學試劑公司;STZ,Sigma公司。

2 方法

2.1 STZ 配制

配制0.1mol/L檸檬酸-檸檬酸鈉緩沖液,調(diào)節(jié)pH為4.4;配制 1%STZ溶液,溶于檸檬酸-檸檬酸鈉緩沖液,在冰浴中操作。

2.2 分組

按體質(zhì)量將40只大鼠隨機分為正常組和模型組2組,每組20只。

2.3 造模方法

正常組給予普通飼料,模型組適應(yīng)性飼養(yǎng)1周后,給予高脂飼料喂養(yǎng)。4周后,模型組第1次腹腔注射 STZ溶液35mg/kg,正常組腹腔注射同等劑量0.1mol/L檸檬酸-檸檬酸鈉緩沖液。第 1次注射STZ后2周,模型組大鼠再次腹腔注射 STZ溶液35mg/kg;正常組腹腔注射同等劑量 0.1mol/L檸檬酸-檸檬酸鈉緩沖液。尾靜脈采血測定空腹血糖(FBG),并進行口服葡萄糖耐量試驗(oral glucose tolerance test,OGTT)[3],凡空腹血糖值≥7.8mmol/L者納入實驗[2]。空腹血糖值 <7.8mmol/L者按照原劑量再腹腔注射1次STZ。

2.4 指標檢測

2.4.1 表征采集 表1顯示,課題組根據(jù)大鼠表征采集表對2組大鼠逐一觀察并判斷,從STZ注射前1周開始每周觀察1次。如遇分歧采用其中2人的相同觀點。

2.4.2 觀察指標 各組每2周測量1次體質(zhì)量、24h飲食量、飲水量;注射 STZ前1d各組經(jīng)尾靜脈采血測定空腹血糖(FBG)、空腹胰島素(FIN)、總膽固醇(TG)、甘油三酯水平(TC),并測定 OGTT。2次STZ注射后第2、6周,各組大鼠尾靜脈采血測定FBG并測定 OGTT。2次STZ注射后第10周測定各組動物的 OGTT,然后經(jīng)腹主動脈取血檢測 FBG、FIN、TG、TC水平,并處死所有動物。血糖采用美國強生公司的onetouch隨手測血糖儀及血糖試紙測定。血清胰島素采用中國原子能科學研究院I1252胰島素放射免疫分析藥盒測定,用大鼠標準品繪制標準曲線。血清 TC、TG由全自動生化分析儀完成測定。

2.4.3 OGTT 大鼠禁食 15h后,灌胃給予20%的葡萄糖溶液2g/kg。檢測0min及葡萄糖灌胃后30、60、120min的血糖,計算葡萄糖曲線下面積(AUC)=(血糖值0min+血糖值 30min)×0.5/2+(血糖值30min+血糖值 60min)×0.5/2+(血糖值60min+血糖值120min)×1/2。

2.5 統(tǒng)計學方法

采用 SPSS13.0統(tǒng)計軟件處理,數(shù)據(jù)用 珋x±s表示,組間比較用 One Way Anova方差分析。

2.6 判斷標準

大鼠表征屬性判斷標準參照《中醫(yī)診斷學》[4]。

3 結(jié)果

3.1 糖尿病大鼠的一般特征

表1 大鼠表征觀察量表

表2、3顯示,注射 STZ之前,模型組大鼠 FIN、TG水平明顯高于正常組大鼠水平(P<0.05);同正常對照組相比,模型組大鼠 FBG、空腹血清 TC水平無明顯差異(P >0.05)。

2次STZ注射后第2、6周,模型組大鼠FBG值均顯著高于正常組大鼠水平(P<0.01)。2次 STZ注射后第10周,模型組大鼠 FBG、空腹血清 TG、TC值均明顯高于正常組水平(P<0.05,P<0.01),模型組大鼠FIN值與正常組相比無明顯差異(P>0.05)。

3.2 大鼠葡萄糖耐量結(jié)果的比較

表4顯示,注射STZ之前,模型組大鼠與正常組大鼠的AUG水平無明顯差異(P>0.05);2次 STZ注射后第2周直至第10周,模型組大鼠的 AUG水平均顯著高于正常組大鼠(P<0.01)。

表2 大鼠 FIN、TG和 TC水平的比較

表3 大鼠FBG水平的比較

表4 大鼠葡萄糖耐量結(jié)果的比較

3.3 大鼠的體質(zhì)量變化

表5顯示,注射STZ之前,模型組大鼠與正常組大鼠的體質(zhì)量水平無明顯差異(P>0.05);第1次 STZ注射后7d直至2次 STZ注射后第10周,模型組大鼠的體質(zhì)量水平均顯著低于正常組大鼠(P<0.01)。

表5 不同時間2組大鼠體質(zhì)量、24h進食量、24h飲水量的比較

3.4 大鼠24h進食量和飲水量的變化

表5顯示,注射STZ之前,模型組大鼠與正常組大鼠24h進食量和飲水量無明顯差異(P>0.05);第1次STZ注射后7d直至2次STZ注射后第10周,模型組大鼠的24h進食量和飲水量均明顯高于正常組大鼠(P <0.05,P <0.01)。

3.5 2組大鼠表征變化的比較

模型組大鼠在2次 STZ注射后第1~4周出現(xiàn)活動次數(shù)增加比率、背溫升高比率、各自爬臥比率、舌色鮮紅比率、舌干少津比率、爪干燥或脫屑比率升高,并與正常組有統(tǒng)計學差異(P<0.05,P<0.01)。

模型組大鼠在2次注射STZ后6~10周出現(xiàn)活動次數(shù)減少比率、毛潮濕比率、舌色鮮紅比率、舌干少津比率升高,并與正常組有統(tǒng)計學差異(P<0.05,P<0.01)。

表6顯示,在第 1次注射 STZ后7d直至2次STZ注射后10周,模型組大鼠的尿量增加比率始終顯著高于正常組(P<0.01)。

表6 2組大鼠表征比率的比較

4 討論

動物模型是中醫(yī)藥基礎(chǔ)研究的橋梁和重要載體,在中醫(yī)理論研究以及中藥新藥研究中,迫切需要能夠達到現(xiàn)代醫(yī)學疾病診斷標準的同時又能充分體現(xiàn)中醫(yī)辨證論治理論特點的新型動物模型,目前此項研究工作尚處于起步階段。以往的研究報道中,關(guān)于動物表征采集方面的內(nèi)容報道較少,尤其是連續(xù)、全面地對不同疾病階段動物的表征進行采集的研究更為鮮見。本課題組拓展實驗動物表征觀察項目并進一步完善觀察方法,制訂出一套較為系統(tǒng)和全面的觀察量表。依據(jù)臨床病證結(jié)合條件下的證候診斷標準,按照相同或相似病理生理意義的原則,在動物模型將表征進行等效病理生理意義的轉(zhuǎn)化,以動物表征作為部分臨床四診信息的替代,然后根據(jù)中醫(yī)臨床證候診斷標準對模型動物的證型進行初步判定。

本研究結(jié)果提示,模型動物從2次 STZ注射2周后至 2次 STZ注射后 10周觀察結(jié)束,F(xiàn)BG、TG、TC、AUG值均明顯高于正常組水平;FIN值先升高后與正常組水平相似,同時出現(xiàn)模型動物體質(zhì)量降低、尿量增加、24h進食量和飲水量增加。由此認為,本研究中2型糖尿病大鼠模型復制成功。在2次STZ注射后1~4周,與正常組相比,活動次數(shù)增加,背溫升高,各自爬臥,舌色鮮紅、舌干少津、爪干燥或脫屑比率均明顯升高,且多飲、多食、多尿、體質(zhì)量降低。根據(jù)《中醫(yī)診斷學》中對于消渴陰虛內(nèi)熱證咽干口燥、心煩畏熱、渴喜冷飲、多食易饑、溲赤便秘、舌紅苔黃的描述,認為在2次 STZ注射后1~4周,模型大鼠與陰虛內(nèi)熱證的表現(xiàn)基本相符,故判定為陰虛內(nèi)熱證型。在2次注射 STZ后6~10周,與正常組相比,模型大鼠的活動次數(shù)減少、毛潮濕、舌色鮮紅、舌干少津比率均明顯升高,且多飲、多食、多尿、體質(zhì)量降低。根據(jù)《中醫(yī)診斷學》中對于消渴氣陰兩虛證咽干口燥、倦怠乏力、氣短懶言、多食易饑、口渴喜飲、溲赤便秘、舌紅少津的描述,認為在2次注射STZ后6~10周,模型大鼠與氣陰兩虛證的表現(xiàn)基本相符,故判定為氣陰兩虛證型。

由本研究結(jié)果可見,模型動物在同一疾病的不同階段其表征特點確有變化,并出現(xiàn)了統(tǒng)計學意義。由此,對同一時間點出現(xiàn)的多個表征進行匯總分析,將使對疾病模型動物進行中醫(yī)證型的判定成為可能。由本研究結(jié)果可見,在動物疾病模型中同樣存在著證型的階段性,即每種證型都具有一定的持續(xù)時間(時間窗),如陰虛內(nèi)熱證在2次 STZ注射后1~4周出現(xiàn),而氣陰兩虛證在2次STZ注射后6~10周出現(xiàn)。

病證結(jié)合動物模型的創(chuàng)建是中藥新藥對證治療評價的關(guān)鍵和基礎(chǔ)。建立病證結(jié)合動物模型日益受到關(guān)注并逐漸成為中醫(yī)實驗動物模型發(fā)展的新方向[5]。在疾病模型基礎(chǔ)上,動態(tài)觀察模型動物的宏觀表征和微觀指標,綜合結(jié)果進行證候判定,在此思路上構(gòu)建的病證結(jié)合動物模型,具有客觀性強、可信度高以及更貼近臨床等特點,是證候動物模型發(fā)展的必然趨勢[6]。本課題組在高脂飼料合并注射 STZ所致的2型糖尿病大鼠模型中觀察到不同疾病階段的表征變化特點,用中醫(yī)診斷學的方法分別判定為陰虛內(nèi)熱證和氣陰兩虛證,并初步確定了2種證型的時間窗。在下一步的研究中,本課題組將采用糖尿病陰虛內(nèi)熱證和氣陰兩虛證的代表性方劑對模型動物進行方劑反證,以進一步驗證本研究所判定的動物證型的準確性,旨在探討并創(chuàng)建2型糖尿病病證結(jié)合動物模型研究的規(guī)律和方法。

[1]郭學軍,鄒移海,吳 凌,等.鏈脲佐菌素誘導 SD和 Wistar大鼠糖尿病模型的影響因素[J].中國實驗動物學報,2008,16(4):4-7.

[2]Ming Zhang,Xiao-Yan Lv,Jing Li,et al. The Characterization of High-Fat Diet and Multiple Low-Dose Streptozocin Induced Type 2 Diabetes Rat Model[J]. Experimental Diabetes Research,2008,704045:1-9.

[3]周迎生,高 妍,李 斌,等.高脂喂養(yǎng)聯(lián)合鏈脲佐菌素注射的糖尿病大鼠模型特征[J].中國實驗動物學報,2005,13(3):154-158.

[4]朱文鋒.中醫(yī)診斷學[M].上海:上海科學技術(shù)出版社,1995:149-153.

[5]許穎智,張軍平.病證結(jié)合在中醫(yī)辨證論治中的地位[J].中華中醫(yī)藥學刊,2008,26(11):2362.

[6]劉 濤,王 偉.證候動物模型研究的思索[J].中華中醫(yī)藥雜志,2006,21(9):550-551.

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