豬偽狂犬病病毒的分離鑒定

楊慶芳，寧官保，李俊達

（1.晉中職業技術學院，山西晉中030600；2.山西農業大學，山西太谷030801；3.武鄉縣畜牧獸醫中心，山西武鄉046300）

2008年2月以來，山西多個規模化豬場出現妊娠母豬流產、木乃伊胎、死胎和產弱仔，初生仔豬出現神經癥狀，給生產造成巨大損失。為查明引起該疫病發生的根本原因，我們采集了病死豬的腦、肺、肝、脾、腎等組織病料，對其進行了研磨與過濾處理，并對其病原菌進行了分離。最終從病死仔豬的腦、肺、肝組織病料中分離出1株疑似偽狂犬病病毒（PRV）的毒株，并對其進行了系統的鑒定。

1 材料和方法

1.1 試驗材料

1.1.1 細胞 倉鼠腎傳代細胞（BHK-21），購于中國獸醫藥品監察所。

1.1.2 血清 豬偽狂犬病中和試驗標準陽性血清，購于中國獸醫藥品監察所；陰性豬血清，采自規模豬場非免疫健康豬，經gE鑒別ELISA診斷試劑盒檢測均為陰性。

1.1.3 病料 無菌采集病死仔豬、流產胎兒的腦、肺、肝、脾、腎等組織置-70℃保存，供分離病毒用。用前將上述組織混合在一起于滅菌過的研缽內剪碎，用組織研磨器研磨，加入含青霉素、鏈霉素（終濃度各1 000單位/mL）的Hank’s液制成1∶5乳劑，置15 mL的離心管中反復凍融3次，3 000 r/min離心30 min，取病料上清液經0.22 μm微孔濾膜過濾，-70℃保存作為接種材料。

1.1.4 試劑 （1）DMEM培養基，Gibco12100-046，購自華美生物工程公司；（2）新生牛血清，杭州四季青生物工程材料有限公司產品；（3）青霉素160萬單位，鏈霉素100萬單位，山東魯抗醫藥股份有限公司產品；（4）Taq DNA聚合酶（2.5 U/μL），4 dNTP 混合液（各 2.5 mmol/L），DL2 000 DNA Marker，天根生化科技（北京）有限公司產品；（5）胰酶，蛋白酶 K，EDTA，Tris液，SDS，瓊脂糖，生工生物工程（上海）有限公司產品。

1.2 試驗方法

1.2.1 細胞培養

1.2.1.1 細胞復蘇 從液氮中取出裝有BHK-21細胞的凍存管，迅速放入37～40℃溫水中，同時不斷晃動，使凍存細胞盡快融化，在超凈工作臺中無菌打開凍存管，用吸管把凍存液緩慢加入放有10 mL無血清的DMEM離心管中，800 r/min離心10 min，吸去上清，用含10%血清DMEM懸浮細胞，加入細胞瓶中再加7 mL生長液，復蘇。顯微鏡下觀察細胞形態并檢測細胞活力。置于37℃，5%CO2，飽和濕度條件下培養，待生長正常后進行試驗（一般在48 h左右長成單層）[1]。

1.2.1.2 細胞凍存 選取生長良好的細胞瓶，棄去培養液，加入1 mL左右的消化液（25 cm2細胞培養瓶），靜置，待細胞之間出現小裂隙時，棄去消化液，加入3 mL無血清的DMEM培養基，用吸管吹打使細胞散開，吸15 mL到離心管中，800 r/min離心10 min，棄上清，用3 mL凍存液輕輕吹開細胞，移入凍存管中，緩慢凍存于4℃0.5 h，-20℃2 h，-80℃過夜，第2天放入液氮中凍存。

1.2.2 病毒的增殖 當BHK-21細胞鋪滿單層時，按10%的量接種處理好的病料，每份接種2瓶，并設2瓶正常為對照。37℃溫箱中吸附2 h，期間每隔30 min晃動接種的培養瓶，使接種液和細胞充分接觸。孵育2 h后，傾去接種液，加入8 mL含2%血清的維持液。置37℃，5%CO2培養箱培養，逐日觀察細胞病變（2～3次/d），待細胞病變達80%時，收獲病毒，-20℃保存備用。若第1次接種不出現細胞病變，則將細胞培養物反復凍融3次后，4℃，1 000 r/min離心10 min，取上清液用0.22 μm微孔濾膜過濾除菌，盲傳3代，有細胞病變者繼續傳代，直至第4代，收取細胞瓶，反復凍融3次，經3000r/min離心10min，收獲上清液作為種毒于-70℃保存。

1.2.3 病毒的毒價測定 取種毒100 μL用維持液900 μL連續做10倍稀釋，從10-4稀釋到10-11，接種于長成單層的96孔培養板，每稀釋度8孔，每孔100 μL，同時設2組細胞對照，37℃，5%CO2培養。連續觀察5 d，記錄結果，按Karber法計算毒株的TCID50。

1.2.4 病毒的鑒定

1.2.4.1 病毒的中和試驗 采用固定病毒稀釋血清法，將偽狂犬病病毒標準陽性血清用50 μL無血清的DMEM作倍比稀釋，從20到29，分別與50 μL含200個TCID50的分離病毒液混勻，置37℃作用1.5 h，接種于長成單層的96孔培養板，每個稀釋度8孔，每孔100 μL，并設陽性血清和正常細胞作為對照。5%CO2，37℃培養，連續觀察5 d，按Reed-Muench法計算血清中和效價[2]。

1.2.4.2 病毒PCR鑒定

（1）引物的設計與合成。運用Primer premier 5.0軟件，參考Genbank上已發表的PRV序列，針對PRV的保守序列設計1對引物，擴增片段為237 bp。上游引物：5′-CACGGAGGACGAGC TGGGGCT-3′，下游引物：5′-GTCCACGCCCC GCTTGAAGCT-3′。

引物由南京金思特科技有限公司合成。使用前，用高壓滅菌超凈水溶解，濃度20 pmol/μL，置于-20℃保存備用[3]。

（2）病毒核酸的提取。取病毒液SX09及陰性對照各500 μL，加入10%SDS、蛋白酶K至終濃度分別為0.5%和50 μg/mL，水浴2 h。用等體積的苯酚、苯酚∶氯仿（1∶1）、氯仿各抽提1次，取上清。向上清液中加入1/10體積的3 mol/L NaAc（pH值為5.2）和等體積的異丙醇，室溫放置30 min，4 ℃ 13 000 r/min 離心 15 min，棄上清，用75%乙醇洗滌沉淀，待干燥后，用30 μL滅菌水溶解DNA沉淀，-20℃保存備用。

（3）PCR 鑒定。反應體系：10×PCR buffer 2.5 μL，dNTP（2.5 mmol/L）2.0 μL，上下游引物各 10 pmoL，DNA模版 2.0 μL，Taq DNA聚合酶0.3 μL，加 ddH2O至 25 μL。反應條件：95 ℃預變性 5 min；94 ℃變性 30 s，55 ℃退火 45 s，72℃延伸45 s，35個循環；72℃延伸7 min。PCR產物鑒定：取7 μL PCR產物，加2 μL 6×Loding buffer混勻后進行1%瓊脂糖凝膠電泳。

2 結果與分析

2.1 細胞病變觀察

病料SX09接種BHK-21細胞，盲傳4代。36 h后，細胞開始收縮、變圓，聚攏（圖1-A）。細胞層形成空洞狀病變，至70 h可見成片脫落（圖1-B）；對照細胞沒有變化，正常（CK）（圖 1-C）。

2.2 分離病毒的TCID50

對分離的PRV SX09毒株接種96孔細胞培養板進行毒價測定，進行3次重復試驗。試驗結果如表1所示。

表1 PRV病毒滴度的測定

將試驗測得的數據代入Karber法計算公式lgTCID50＝L＋d（S－0.5）（其中，L 為最低稀釋度的對數，為-4；d為稀釋系數，10倍遞進稀釋時，d為-1；S為死亡比值之和，即各組感染數/試驗數的相加）。根據此公式計算該病毒的TCID50分別為 10-8.0/0.1 mL，10-8.125/0.1 mL，10-8.0/0.1 mL，得平均值為10-8.042/0.1 mL。

2.3 中和試驗

PRVSX09與標準陽性血清中和試驗結果如表2所示。根據Reed-Muench法計算，病毒分離株的200個TCID50能被標準陽性血清10-1.93所中和，表明病毒分離株具有PRV的抗原性。

表2 PRV SX09與標準陽性血清中和試驗

2.4 PCR鑒定產物電泳結果

用從SX09病毒液中提取的基因組DNA作為模板，進行PCR引物擴增，產物經1%的瓊脂糖凝膠電泳檢測，以DL2 000 DNA Marker為標準，擴增出的特異性片段，與預期的大小一致，模板PCR擴增產物大小近似237 bp（圖2）。

3 討論

據文獻報道[4]，PRV可在多種動物細胞中生長繁殖，如在豬腎細胞、兔腎細胞、牛睪丸細胞等原代細胞以及PK-15，Vero，BHK-21等傳代細胞中都能很好地增殖。本試驗充分驗證了PRV可在BHK-21細胞上增殖，并出現典型的皰疹病毒的細胞病變，毒價（TCID50）為 10-8.042/0.1 mL；病毒能被PRV標準陽性血清中和；用PCR方法鑒定分離的病毒液為PRV陽性；以上結果表明所分離的病毒株為偽狂犬病病毒。并命名為SX09株。

查閱文獻發現，偽狂犬病病毒株間毒力存在差異[5]。在本試驗中，以微量法測得分離病毒株在BHK-21細胞上的TCID50為10-8.042/0.1 mL，與國內其他分離毒株相比，病毒毒力較強。另外，分離病毒株能被PRV標準陽性血清中和，這與目前各國學者認為的PRV僅有一個血清型相吻合[6]。

在對SX09株進行TCID50測定時發現，病毒液在最大稀釋倍數時，沒有任何一孔發生細胞病變，而在最小稀釋倍數時，8孔細胞全部出現細胞病變，說明該試驗是成立的且試驗結果可信；中和試驗的過程中，血清在最小稀釋倍數時，沒有任何一孔發生細胞病變，而在最大稀釋倍數時，8孔細胞全部出現細胞病變，說明該試驗仍然是成立的且試驗結果可信。

本試驗首次對山西省豬偽狂犬病病毒進行了分離鑒定，填補了山西在此方面研究的空白，也為今后開展該病的診斷和防治研究奠定了基礎。

［1］Maes R K，Sussman MD.Recent develop-ments in latency and recombination ofPRV[J].Vet Microbiol，1997，55：13-27．

［2］李學伍，陳煥春.PCR法對偽狂犬病病豬不同部位的檢測及敏感性試驗[J].中國畜禽傳染病，1998，20（6）：365-368.

［3］陳陸，查光明，王川慶，等.偽狂犬病病毒gE/gB PCR鑒別方法的建立及其應用[J].中國獸醫科技，2005，35（5）：346-348.

［4］方萬榮，陳煥春，何啟蓋，等.應用微量中和試驗進行豬偽狂犬病血清學調查[J].中國畜禽傳染病，1998，20（3）：24-26.

［5］ Talmagc T B，Kwang O S，Frcdcrick J F.Dctcction of PR Viral DNAin tonsillar epithelial cells oflatecntiyinfected pigs[J].Am J Vet Res，1995，56（5）：587-594．

［6］Cheung A K.Investigation of PRV DNA and RNA in trigeminal ganglia tonsil tissues of latentlyinfected swine[J].AmJ Vet Res，1995，56（1）：45-50.