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基于SNP標記的種子純度高效檢測分析模型的建立

2012-06-08 07:54:16李歐靜張桂華蘭青闊郭永澤
湖南農業科學 2012年19期

李歐靜,張桂華,蘭青闊 ,王 永 ,趙 新 ,朱 珠 ,陳 銳,郭永澤

(1.天津市農業質量標準與檢測技術研究所,天津 300381;2.天津科潤農業科技股份有限公司,天津 300192)

蔬菜種子純度是種子質量的重要指標,其鑒定方法有田間形態試驗、RAPD、SSR、同工酶標記等,但這些方法在操作性、穩定性、多態性等方面不能滿足目前的需要。單核苷酸多態性(Single nucleotide polymorphism,SNP)是指基因組水平上由單個核苷酸的變異所引起的DNA序列多態性。近年來,SNP標記以其二態性、等位基因性、高密度性以及高遺傳穩定性等優點成為研究熱點,被廣泛應用于農作物遺傳學研究[1]和品種鑒定當中[2]。

焦磷酸測序技術(Pyrosequencing)是實時、定量分析DNA序列的新一代測序技術,是基于引物引導的多聚酶延伸下的核酸合成的新型DNA測序技術[3],具有操作簡單、費用低、通量高、結果準確和自動化程度高等優點,特別適合SNP、small InDel等短序列分析,具有較高的靈敏性和準確性。Pyrosequencing技術的另一突出優勢在于與DNA池(DNA Pooling)技術的結合應用。Pooling技術的原理是將已知對照樣本和多個未知樣本混合在一起進行PCR擴增,PCR產物經基因分型、最后用統計學方法對數據進行分析,得到已知樣本在總樣本中的比例[4]。Pyrosequencing和Pooling聯用技術兼有Pyrosequencing的定量測序優點和Pooling高通量的優點,特別適用于大規模樣品的等位基因頻率分析[5],能滿足種子純度鑒定大樣本量的需求。

筆者分析了黃瓜SNP位點CLA13(C/G)在16個黃瓜育種材料中的多態性,結合Pyrosequencing和DNA Pooling技術,建立3Pooling SNP Pyrosequencing標準曲線,快速、高效的鑒定黃瓜種子純度,旨在為后續的品種鑒定及大批量的蔬菜種子純度鑒定奠定基礎。

1 材料和方法

1.1 材料

供試材料:16個黃瓜雜交種及其母本、父本的基因組DNA由天津科潤農業科技股份有限公司黃瓜研究所提供。

1.2 方法

1.2.1 SNP位點的選擇及引物設計 經網絡數據庫檢索、驗證獲得黃瓜SNP位點CLA13(C/G),利用PSQ Assay Design軟件設計用于焦磷酸測序的PCR引物、測序引物以及需要分析的目標序列(Sequence to Analyze),其中前引物5’加生物素(Biotin)標記修飾見表1。引物由上海生工生物工程有限公司合成。

表1 CLA13(C/G)位點焦磷酸測序引物序列

1.2.2 焦磷酸測序反應 包括用于制備測序反應模板的PCR擴增和焦磷酸測序反應[6]。PCR擴增采用50μL反應體系,其中2×GoTaq Green Master Mix(Promega)25μL,上下游引物(10 μmol/L)各 1μL,DNA模板100 ng,滅菌去離子水補足至50μL。反應程序為94℃預變性5min;50個循環反應(94℃30 s,50℃ 30 s,72℃ 40 s);72℃延伸 7 min;4℃保存。PCR儀為ABIverity 96 well Thermal cycler。

焦磷酸測序反應在PyroMark ID焦磷酸測序儀(Biotage)上進行。PCR產物中加入47μL Binding buffer(Biotage)和 3 μL Sepharose beads(Biotage),1 300 r/min渦旋混勻 15 min,經 Vacuum prep workstation單鏈分離,釋放到預先加入38.8μL Annealing buffer(Biotage)和1.2μL測序引物(10 μmol/L)的PSQ 96測序反應板中,80℃金屬加熱塊(Labnet)上加熱2min后冷卻至室溫。將酶、底物和A、T、C、G 成分(Qiagen)加入試劑倉,即可上機測序。測序結果可通過分型分析模式(Genotyping)直接獲得樣品SNP類型,或者通過等位基因頻率AQ(Allele Quantification)模式分析C基因型頻率C%和G基因型頻率G%。

1.2.3 DNA Pooling最適數量的確定 取3號雜交種(基因型記為C/G)及其父本(基因型記為C/C)基因組DNA,精確稀釋至20 ng/μL,按照C/C與C/G 的比例為 1∶1、1∶2、1∶3、1∶4、1∶5、1∶6、1∶7、1∶8、1∶9 和1∶19 進行混合,模擬 2、3、4、5、6、7、8、9、10、20 個雜交種Pooling中混雜1個C/C的情況。將上述10種充分混勻DNA模板進行PCR擴增及焦磷酸測序分析,獲得C等位基因頻率C%和G等位基因頻率G%(G%=1-C%)。試驗設置10次重復。

1.2.4 3 Pooling SNPPyrosequencing標準曲線的建立 取3號雜交種(C/G)及其母本(G/G)、父本(C/C)的基因組 DNA(20 ng/μL),按照 C3(3C/C)、C2(2C/C∶1C/G)、C1(1C/C∶2C/G)、Hybrid(3C/G)、G1(1G/G∶2C/G)、G2(2G/G∶1C/G)、G3(3G/G)的梯度比例混合DNA模板,進行PCR擴增和焦磷酸測序,分析等位基因頻率C%,并建立C%與不同梯度的標準曲線。

1.2.5 3 Pooling SNPPyrosequencing分析模型樣品檢驗 選擇SNP位點為C/G分型的黃瓜雜交品種8號進行樣品檢驗試驗。選顆粒飽滿、大小均勻籽粒30粒,浸泡、萌發、每3個種子DNA等量混合,進行PCR擴增、焦磷酸測序以及等位基因頻率分析。根據建立的標準曲線模型,換算出其中來自親本的污染。

1.2.6 數據分析 SNP多態信息量PIC值使用PIC_CALC軟件計算,TTEST和標準曲線制定使用office excel軟件完成。

2 結果與分析

2.1 CLA13(C/G)位點分型及多態信息量分析

對16個黃瓜雜交種及其親本的CLA13(C/G)位點進行PCR擴增及焦磷酸測序分析,分型結果見表2。在16個子代中,7個檢測為C/G雜合,因此CLA13(C/G)位點適合7個品種做黃瓜種子純度鑒定試驗。進一步對CLA13(C/G)位點多態信息量(PIC)分析表明,在16個黃瓜雜交種的群體中該SNP位點PIC達0.556,處于高度多態。

2.2 DNA Pooling最適數量的確定

為提高種子純度檢測效率,研究引入DNA Pooling技術,通過分析DNA Pooling中SNP位點的等位基因頻率,確定樣品的雜合程度,并轉換為種子純度。按一定梯度比例混合C/C基因型和C/G基因型DNA,模擬不同DNA Pooling,并通過比較不同DNA Pooling下等位基因頻率差異顯著性,確定最適DNA Pooling。

表2 16個黃瓜雜交種及其親本CLA13(C/G)位點分型分析

如表3所示,隨著Pooling數量的增加,C%平均值逐漸下降并接近50%。對2~20 Pooling C%值進行TTest分析顯示,4 Pooling以下呈顯著差異水平,3 Pooling以下呈極顯著差異水平。考慮試驗的準確性和可靠性,選擇3 Pooling作為最佳Pooling數量,即在種子純度檢測過程中,將3粒種子作為1個Pooling進行檢測具備較高的效率和準確度。

2.3 3 Pooling SNPPyrosequencing標準曲線的建立

為了把C等位基因頻率轉換為3 Pooling中雜交種的數量,需建立3 Pooling SNPPyrosequencing標準曲線。結果顯示,隨著C3-G3七個梯度樣品中C基因降低和G基因升高,焦磷酸測序峰圖(圖1A)中C堿基峰高從后續堿基T、C、G的1倍峰高逐步降低為0,G堿基峰高從0逐漸升高到與后續堿基T、C、G的峰高持平;建立C%與C3-G3七個梯度樣品標準曲線(圖1B),兩者呈線性關系,R2達0.998 2。參考該標準曲線,可通過畫圖比較或計算的方法將C%轉換出3 Pooling樣品中是否含有或含有幾粒C/C或G/G類型種子。

表3 不同DNA Pooling數量C等位基因頻率分析

圖1 3Pooling下C梯度測序結果及標準曲線

2.4 3 Pooling SNPPyrosequencing分析模型樣品檢驗

如表4所示,10個Pooling中第1 Pooling C%值為65.3%,第7 PoolingC%值為66.2%,說明第1 Pooling和第7 Pooling的3粒種子中含有1個C/C類型的種子,而其他8個Pooling均為C/G類型的種子。因此,該30粒種子中含有2粒非雜交種,純度可記為93.3%。

表4 3Pooling檢驗黃瓜雜交品種種子純度結果

3 討論與結論

種子純度是指雜交種后代表型的一致性,是黃瓜種子質量的重要指標。造成黃瓜種子純度低的主要原因有親本純度不夠高、生物混雜和機械混雜等原因,其中來自母本的混雜較為普遍。因此,雜交種中母本基因型的檢測是分子檢測的重點。SNP分子標記是繼SSR標記以后的第三代分子標記,具有高密度和高度遺傳穩定性等優點,而且大多數只有兩種等位基因型,所以也被稱為雙等位基因標記(biallelic marker),能夠明顯區分出母本、父本及雜交種基因型。因此,SNP分子標記適合于黃瓜品種真實性和純度檢測的要求。

研究將SNP標記技術、Pyrosequencing技術和DNA Pooling技術有機結合,建立3 Pooling SNP Pyrosequencing種子純度檢測分析模型,克服了RAPD、SSR等分子標記技術必須凝膠電泳的瓶頸,提高了黃瓜雜交種純度鑒定效率。同時,3 Pooling SNPPyrosequencing分析模型可應用于其他作物種子純度鑒定,具有推廣價值和應用前景。

[1] 李兆波,吳 禹,王 巖,等.SNP標記技術及其在農作物育種中的應用[J].遼寧農業職業技術學院學報,2010,5(12):8-9.

[2] Jung JK,Park SW,Liu W Y,et al.Discovery of single nucleotide polymorphism in Capsicum and SNPmarkers for cultivar identification[J].Euphytica,2010,175(1):91-107.

[3] Pati N,Schowinsky V,Kokanovic O,et al.A comparison between SNa Pshot,pyrosequencing,and biplex invader SNP genotyping methods:accuracy,cost,and throughput[J].J Biochem Biophys Methods,2004 ,60(1):1-12.

[4] 李樹珍,萬慧榮,楊 光.DNA池結合DHPLC和直接測序技術在江豚 SNPs檢測中的應用[J].獸類學報,2009,29(2):185-190.

[5] Lin Y S,Liu FG,Wang T Y,et al.A simplemethod using PyrosequencingTM to identify de novo SNPs in pooled DNA samples[J].Nucleic Acids Research,2011,39(5):28.

[6] 蘭青闊,張桂華,王 永,等.基于InDel標記快速檢測黃瓜津優38 種子純度[J].種子,2011,30(6):19-23.

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